Через тернии к звездам материалы 64-й итоговой межвузовской научной студенческой конференции Издательство «Челябинская государственная медицинская академия» Челябинск, 2010

Вид материалаДокументы

Содержание


Изменение функциональной активности нейтрофилов венозной крови после взаимодействия с бактериями, входящими в состав резидентной
М.С. Вейнгарт (5-й курс, леч. ф-т) ГОУ ВПО ЧелГМА Росздрава Кафедра микробиологии, вирусологии, иммунологии
Влияние воздействий, сопровождающихся снижением устойчивости к гипоксии, на состояние свободнорадикального окисления в строме эр
Кафедра биохимии Научный руководитель — д.б.н., проф. В.Э. Цейликман
Подобный материал:
1   ...   4   5   6   7   8   9   10   11   ...   51
^

Изменение функциональной активности нейтрофилов венозной крови после взаимодействия с бактериями, входящими в состав резидентной и факультативной микрофлоры

^

М.С. Вейнгарт (5-й курс, леч. ф-т)

ГОУ ВПО ЧелГМА Росздрава

Кафедра микробиологии, вирусологии, иммунологии

Научный руководитель — к.м.н., ст. преп. Е.В. Плеханова



Актуальность. На сегодняшний день остается не полностью изученной роль фагоцитирующих клеток (нейтрофилов и макрофагов) в защите слизистых оболочек. Мы полагаем, что нейтрофилы, покидая ткани и выходя в слизистый биослой, погибают. При этом они выделяют биоцидные продукты, которые участвуют в регуляции микробиоцинозов, заселяющих соответствующие биотопы, в том числе и нижний отдел гениталий. В этой связи возникло предположение, что функциональные свойства нейтрофилов изменяются под влиянием микроорганизмов, содержащихся в цервикальном секрете.

Цель работы: изучить влияние факторов цервикального секрета резидентной и факультативной микрофлоры на функциональную активность нейтрофилов.

Материалы и методы. Обследовано 40 практически здоровых женщин в возрасте от 18-25 лет. В работе использовали следующие методы: классический метод определения жизнеспособности нейтрофилов при окраске трипановым синим; метод определение апоптоза с помощью люминисцентной микроскопии по методу окраски клеток; метод оценки апоптоза с помощью проточной цитометрии; метод изучения способности нейтрофилов к захвату частиц (проводили на модели поглощения частиц латекса); метод определения внутриклеточного кислородозависимого метаболизма нейтрофилов периферической крови с помощью НСТ-теста; метод определения активности лизосомальных ферментов нейтрофилов периферической крови; статистические методы.

Результаты и их обсуждение. Полученные данные показывают, что после действия Lactobacterium spp., Bifidobacterium spp., E. сoli жизнеспособность клеток значительно снижается до 41,21 ± 4,54 и 39,82 ± 2,42% соответственно. При инкубации клеток с Lactobacterium spp. и Bifidobacterium spp. в течение 30 минут уровень апоптоза резко увеличивался, до 51 и 56% соответственно, и достоверно отличался от результатов других опытов. При взаимодействии нейтрофилов с E. сoli и S. aureus уровень апоптоза этих клеток достоверно не отличался от показателей интактных нейтрофилов, их уровень апоптоза составил 11,27 и 14,49% соответственно. Взаимодействие нейтрофилов с E. сoli и S. aureus приводит к достоверному увеличению показателей кислородзависимого метаболизма клеток и повышению лизосомальной активности нейтрофилов.

Выводы:

1. Активация нейтрофилов периферической крови взвесью S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17), Lactobacterium spp., Bifidobacterium spp. и латексом приводит к гибели значительного числа гранулоцитов и изменению функционального статуса жизнеспособных клеток.

2. В экспериментальной модели in vitro показано, что после инкубации нейтрофилов со всеми изученными агентами увеличивается число погибших клеток. При этом после культивирования со взвесью Lactobacterium spp. и Bifidobacterium spp. значимо возрастает число нейтрофилов, ушедших в апоптоз. S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17).

3. Нейтрофилы, инкубированные in vitro с культурой Bifidobacterium spp., обладают меньшей фагоцитарной активностью, чем после их активации взвесью S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17) и Lactobacterium spp.

4. Инкубация нейтрофилов с Lactobacterium spp. и Bifidobacterium spp. приводит к снижению НСТ и лизосомальной активности нейтрофилов, в то время как контакт гранулоцитов с S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17) сопровождается повышением продукции кислородных радикалов и активности лизосом.

^

Влияние воздействий, сопровождающихся снижением устойчивости к гипоксии, на состояние свободнорадикального окисления в строме эритроцитов

Е.В. Вождаев (6-й курс, леч. ф-т), С.Г. Богданов (4-й курс, пед. ф-т),

И.В. Трыдуль (1-й курс, леч. ф-т)

ГОУ ВПО ЧелГМА Росздрава

^

Кафедра биохимии

Научный руководитель — д.б.н., проф. В.Э. Цейликман



Согласно традиционным представлениям, после завершения действия на организм экстремального раздражителя первоначальная катаболическая фаза стресса сменяется постстрессорной анаболической, обусловливающей формирование структурного следа адаптации Меерсон Ф.З., 1993. Поэтому для оптимизации адаптивных эффектов при повторных стрессорных воздействиях считалось целесообразным удлинение временного интервала между отдельными стрессорными эпизодами Волчегорский И.А. и др., 2002; Меерсон Ф.З., 1993. Ранее было показано, что увеличение промежутка между одночасовыми иммобилизациями с 24 до 72 ч не только устраняет стресс-индуцированную анемию, но ещё и приводит к развитию эритроцитоза, сопровождающегося повышением содержания гемоглобина Цейликман В.Э., 1993. Данное противоречие объяснялось как результат повышенного кислородного запроса тканями, повлекшего за собой компенсаторное увеличение мощности кислородтранспортных систем. Причём факт сниженной устойчивости к гипоксическому воздействию свидетельствует о неэффективности подобной компенсации.

Целью настоящей работы явилось изучение влияния режима редко чередующихся одночасовых иммобилизаций (РЧИМ) на чувствительность организма к острой гипоксической гипоксии и на состояние свободнорадикального окисления в строме эритроцитов.

Исследование выполнено на 40 беспородных крысах-самцах. Был использован режим иммобилизационного стресса, приводящий к доминированию резистентной стратегии адаптации (повторная четырёхкратная иммобилизация с интервалом между воздействиями 72 ч). Остальные крысы использовались в качестве контроля. Животные умерщвлялись через 24 ч после завершения последней иммобилизации под лёгким эфирным наркозом. В сыворотке крови определяли содержание окислительно-модифицированных белков (по методике Дубининой Е.Е.) и продуктов перекисного окисления липидов.

Результаты исследования. Через 24 ч после завершения РЧИМ в эритроцитах наблюдалось увеличение содержания окислительно-модифицированных белков. Это проявлялось в увеличении в 2,7 раза содержания нейтральных карбонилированных белков при одновременном возрастании в 2,5 раза содержания основных карбонилированных белков. Одновременно снижалось в 4 раза содержание общего белка эритроцитарной стромы у животных, подвергнутых редко чередующимся иммобилизациям. Важно отметить, что усиление окислительной деструкции белка в эритроцитах сопряжено со снижением содержания стромальных белков. Также выявлено увеличение первичных молекулярных продуктов ПОЛ в изопропанольной фазе, представленной преимущественно фосфолипидами. Поскольку в сыворотке крови ПОЛ осуществляется в основном в липопротеидных частицах, то усиление липопероксидации в данном случае может быть связано с появлением модифицированных липопротеидов.

Таким образом, усиление свободнорадикального окисления белков и липидов в эритроцитах может существенно снижать функциональные возможности этих клеток, что может негативно повлиять и на кислородтранспортную функцию красных клеток крови и тем самым способствовать снижению устойчивости к гипоксии при повторных иммобилизациях.