Федеральной целевой программы «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» на 2009-2013 годы (г. Уфа, 29 сентября 5 октября 2010 г.) Уфа 2010

Вид материалаПрограмма

Содержание


Цель работы.
Материал и методика исследований.
Результаты исследований.
Генетическая трансформация половых клеток самцов сельскохозяйственных животных
Выявление связи отельных аллелей днк-микросателлитов с показателями молочной продуктивности коров
Хранение влажного кормового зерна
Использование препарата нупро в гусеводстве
Подобный материал:
1   ...   19   20   21   22   23   24   25   26   ...   29

Введение. В настоящее время всё большее внимание уделяется изысканию и совершенствованию средств, направленных на повышение защитных сил организма, включая комплексные препараты различного происхождения в качестве стимуляторов или модуляторов специфического и неспецифического иммунитета. Поиск альтернативы стимуляторам роста был вызван опасениями потребителей, связанными с остатками антибиотиков в мясе и возможным возникновением бактериальной резистентности к антибиотикам, используемым в лечении людей (Савченко C., 2005; А. Тардатьян, 2002; Н. Андрущенко, 2003; П.Р. Феркет, 2003).

Исследования зарубежных авторов (К.Е. Newman, 1994; G. Tibor, 1995; T.F. Savage и др., 1997; P.R. Ferket, 2002; Дэнни M. Хуге, 2003) указывают, что наиболее впечатляющие результаты были получены в опытах с олигосахаридами, особенно с маннанолигосахаридами (Био-Мос), выделенные из клеточных стенок дрожжей Saccharomyces cerevisae.

Био-Мос входит в состав кормов для птицы, свиней, телят, коров, мелких домашних животных и рыб более, чем в 80 странах мира, включая Россию, и доказал свою эффективность и безопасность в различных хозяйственных и климатических условиях.

Био-Мос является единственной научно-обоснованной, утвержденной в Евросоюзе и США (в странах с наиболее строгими правилами регистрации кормовых добавок и лекарственных средств) безопасной альтернативой антибиотикам и служит надежным инструментом контроля субклинических инфекции желудочно-кишечного тракта.

После отъема поросята перестают получать лактозу, содержащуюся в материнском молоке. Углеводы кормов не содержат галактозу (молекула лактозы состоит из глюкозы и галактозы), являющуюся питательной средой для молочнокислых бактерий. Как следствие, молочнокислые бактерии начинают использовать галактозу, содержащуюся в муцине. При наличии в организме больших колоний патогенной микрофлоры, галактоза муцина используется именно последней, и молочнокислые бактерии прекращают свой рост. Био-Мос оказывает опосредованное положительное влияние на рост бактерий, производящих молочную кислоту, таких как Bifido bacterium и Lactobacilus путем блокировки колонизации кишечника патогенами.

При раннем и сверхраннем отъёме поросят, учитывая их биологическую неполноценность, особенно в первые три недели после рождения, отход их может быть значительным. В этой связи большой интерес представляют пробиотики и, в частности, Био-Мос, повышающий иммунный статус организма за счёт мобилизации иммунных клеток кишечника и их всасывающую способность.

Цель работы. Изучение данного вопроса должно быть в тесной взаимосвязи с принятой технологией на комплексе, условиями кормлениями и содержания. В этой связи целью исследований явилось – повышение продуктивных и технологических качеств поросят (конверсия корма, сохранность, энергия роста и др.) на подсосе и доращивании в условиях промышленной технологии.

В задачу исследований входило – установить оптимальную дозу использования Био-Моса в комбикормах для свиноматок, а также поросят-сосунов и его влияние на репродуктивные показатели, рост, развитие поросят, их сохранность на подсосе и доращивании в условиях ГУСП совхоз «Рощинский» Республики Башкортостан.

Материал и методика исследований. Для опыта использовались свиноматки – аналоги в отношении возраста, породы, развития, продуктивности и числа опросов.

Опытные группы маток к основному рациону получали Био-Мос в сутки на голову, в среднем за опыт: опытная 1 – 4,65 г, опытная 2 – 2,32 г, опытная 3 – 1,15 г или, соответственно, 1,0; 0,50 и 0,25 кг/т комбикорма. В качестве основного рациона свиноматки получали комбикорм рецепта СК-2.

Результаты исследований. На фоне принятой технологии кормления и содержания подопытных животных были получены следующие результаты (табл. 1).


Таблица 1 Репродуктивные качества свиноматок

(в среднем на голову, по группе)

Группа

Доза Био-Моса, кг/т комбикорма

Многоплодие, гол.

Крупноплодность, кг

Молочность, кг

Сохранность поросят к отъёму, %

Контрольная



8,8±0,74

1,35±0,07

31,5±0,46

95,7

Опытная 1

1,0

10,6±0,51

1,40±0,04

35,0±±0,37***

98,0

Опытная 2

0,50

9,8±0,66

1,45±0,06

35,4±0,42***

99,5

Опытная 3

0,25

10,6±0,81

1,40±0,07

33,8±0,48**

98,0

Примечание: ** – P<0,01; *** – P<0,001


Свиноматки опытных групп превосходили контрольную по всем учитываемым показателям в среднем на 12,0%, в т.ч. по многоплодию – на 17,0%, крупноплодности поросят – на 5,2%, молочности маток – на 10,1% (P<0,01-0,001), сохранности поросят к отъёму – на 2,8%. Значительнее эти различия отмечены у свиноматок первой и второй опытных групп, получавших к основному рациону Био-Мос в дозе 1,0; 0,5 кг/т комбикорма.

По энергии роста поросята опытных групп превосходили контроль на 7,2-12,8%, соответственно, аналогия сохранилась и по развитию, о чём свидетельствуют индексы телосложения.

Экономические расчёты свидетельствуют о целесообразности использования Био-Моса в указанных дозах (0,5-1,0 кг/т) в кормлении подсосных свиноматок.

Использование Био-Моса в аналогичных дозах на поросятах при доращивании проводилось с 30- до 86-дневного возраста. В качестве основного рациона использовался комбикорм рецепта СК-4 (табл. 2).


Таблица 2 Динамика живой массы поросят на доращивании

(в расчёте на голову, по группе)

Группа

Живая масса, кг

Сроки доращивания, сут.

Абс. прирост за период, кг

Ср. суточный прирост, г

В %% к контролю

при постановке

при снятии

Контрольная

6,28±0,14

26,9±0,25

56

20,6±0,23

367,5±4,09

100,0

Опытная 1

6,14±0,43

27,0±0,33

56

20,8±0,65

371,8±11,7

101,2

Опытная 2

6,36±0,25

27,3±0,24

56

20,9±0,27

373,9±4,85

101,7

Опытная 3

6,48±0,23

27,5±0,32

56

21,0±0,50

375,4±8,92

102,1


Из таблицы 2 видно, что по энергии роста поросята опытных групп превосходили контрольную на 1,7%; значительнее отклонения по данному признаку у животных второй и третьей опытных групп (на 1,7 и 2,1%), получавших к основному рациону Био-Мос в дозах 0,5-0,25 кг/т комбикорма. Аналогия сохраняется и по развитию поросят: по длине туловища – на 3,0%, обхвату груди – на 1,12%, высоте в холке – на 3,55%. У животных 2 и 3 опытных групп они были значительнее по сравнению с контрольной.

Экономические расчёты (по стоимости дополнительной продукции) свидетельствуют о целесообразности использования Био-Моса при доращивании поросят в дозах 0,25 и 0,5 кг/т комбикорма.

Следовательно, в условиях промышленной технологии, с целью повышения продуктивности и сохранности поросят целесообразно использование Био-Моса в составе комбикормов в указанных дозах.

УДК 636:636.082.12:575.113

ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ТРАНСФОРМАЦИЯ ПОЛОВЫХ КЛЕТОК САМЦОВ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

GENETIC TRANSFORMATION OF AGRICULTURAL ANIMAL GENERATIVE CELLS

Томгорова Е.К., Лоцманова Н.С., Волкова Н.А.

Tomgorova E.K., Lozmanova N.S., Volkova N.A.

ГНУ ВНИИ животноводства Россельхозакадемии, Московская область, п. Дубровицы, Россия, е-mail natavolkova@inbox.ru

Ретровирусные векторы, сперматогонии, кролики, свиньи, куры.

Retrovirus vectors, spermatogonia cells, rabbit, pig, chicken.


Использование клеток гонад сельскохозяйственных животных в качестве генетического вектора рассматривается в последние годы как один из перспективных приемов получения трансгенных животных. Вместе с тем, несмотря на наличие ряда методов, используемых для генетической трансформации половых клеток, на сегодняшний день не разработано системы, позволяющей эффективно доставлять рекомбинантную ДНК в клетки сперматогонии.

В этой связи, нами были проведены эксперименты по оценке эффективности генетической трансформации сперматогоний сельскохозяйственных животных и птицы, в частности, кроликов, свиней и петухов, ретровирусными генными конструкциями.

В экспериментах были использованы ретровирусные векторы с интегрированными генами человека: инсулина (конструкция pX-Ins) и гормона роста (pX-RSVhgh). В качестве источника конструкций использовали клетки-упаковщицы и вирусный препарат (среда культивирования клеток-упаковщиц), введение которых осуществляли непосредственно в семенники взрослых животных (in vivo) методом множественной инъекции (5-8 инъекций).

Иммуногистохимический анализ сперматогенного эпителия опытных кроликов, свиней и петухов выявил наличие в семенных канальцах клеток с характерным окрашиванием практически у всех исследованных животных. При этом процент трансформированных клеток в семенных канальцах варьировал в зависимости от типа используемого препарата (клетки-упаковщицы, вирусный препарат) и периода времени, прошедшего после инъекции генных конструкций в семенники. Высокая результативность трансгенеза была установлена при использовании в качестве источника генных конструкций суспензии клеток-упаковщиц: доля трансформированных клеток от общего их числа в семенном канальце достигала 3,5-4,1%. При введении вирусного препарата в семенники подопытных животных данный показатель был 2,1-2,7 раза ниже. При этом с удлинением периода времени, прошедшего с момента инъекции генной конструкции, отмечалось увеличение количества трансформированных сперматогоний почти в 2 раза, что свидетельствует о возможности использования ретровирусных векторов для генетической трансформации половых клеток самцов сельскохозяйственных животных с целью получения трансгенных животных с заданными свойствами.




УДК 636.2.082:575

ВЫЯВЛЕНИЕ СВЯЗИ ОТЕЛЬНЫХ АЛЛЕЛЕЙ ДНК-МИКРОСАТЕЛЛИТОВ С ПОКАЗАТЕЛЯМИ МОЛОЧНОЙ ПРОДУКТИВНОСТИ КОРОВ

IDENTIFICATION OF INDIVIDUAL DNA MIKROSATELLITES ALLELES CORRELATE WITH PARAMETERS OF MILK PRODUCTION

Траспов А.А.1, Зиновьева Н.А.2, Долматова И.Ю.1

Traspov A.A.1, Zinovieva N.A.2, Dolmatova I.Y.1

1Башкирский государственный аграрный университет, г.Уфа, Россия

2 ГНУ ВИЖ, г.Подольск, Россия

Микросателлитный анализ, аллели, полиморфизм, продуктивность, генетические маркеры.

Microsatellite analysis, alleles, polymorphism, productivity, genetic markers.


Генетический контроль происхождения животных и оценка структуры популяций приобретает все большее значение в селекционно-племенной работе. В стадах крупного рогатого скота генетический анализ представляет особенную ценность при формировании массивов, в которых используют животных, полученных от нескольких производителей [1].

Микросателлиты (МС) являются удобными генетическими маркерами генома сельскохозяйственных животных благодаря относительно несложной методике определения, высокому уровню полиморфизма и стабильному аутосомному кодоминантному наследованию. Микросателлиты представлют собой короткие (ди-, три- и тетрануклеотиды) тандемно расположенные участки ДНК с размером повторяющейся области 100-200 пар оснований, обладающие высокой степенью полиморфизма. [3,4,5]. Микросателлиты также служат инструментом для определения степени родства индивидуумов или групп.

Целью данной работы являлась оценка возможности использования ДНК-микросателлитов как маркеров фенотипических признаков продуктивности черно-пестрой породы крупного рогатого скота Республики Башкортостан.

В ГНУ ВНИИЖ была разработана система, позволяющая выявлять различия, как между отдельными индивидуумами, так и между популяциями скота, на основе полиморфизма ДНК-микросателлитов. Экспериментальная часть работы проводилась по стандартным методам. [2]. Определение микросателлитного профиля коров по 13-и МС (TGLA126, TGLA122, TGLA227, INRA023, ILST005, ILST006, ETH185, ETH10, ETH225, BM1818, BM1824, BM2113, SPS115) проводили с использованием ДНК-анализатора ABI3130x1 по методикам Центра Биотехнологии и молекулярной диагностики животных ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии. Для статистической обработки данных был использован пакет MS Excel 2007.

Материалом исследования служили коровы чёрно-пёстрой породы маточного поголовья ООО Агрофирмы «Стерлитамакская» (n=104), ГУСП «Стерлитамакское» (n=108) Республики Башкортостан.

По данным первичного анализа в исследуемой выборке выявлено четыре микросателлитных локуса, достоверно коррелирующих с показателями молочной продуктивности (табл. 1). Достоверные корреляции выразились в тенденции повышения уровня удоя, количества молочного жира и белка в группах животных, у которых в геноме присутствуют следующие аллели: аллель 262 локуса BM1818, аллель 217 локуса ETH10, аллель 127 локуса BM2213, аллель 99 локуса TGLA227.


Таблица 1 Достоверные корреляции между наличием или

отсутствием аллелей МС и показателями молочной

продуктивности коров чёрно-пёстрой породы РБ

Локус

Аллель

Удой, кг

Мол. Жир, кг

Мол белок, кг

BM1818

262

60

1,7

1,8

p>0,999

p>0,999

p>0,999

ETH10

217

91

2,91

2,94

p>0,999

p>0,999

p>0,999

BM2213

127

198

7,5

5,39

p>0,999

p>0,999

p>0,999

TGLA227

99

309

5,14

10,2

p>0,999

p>0,999

p>0,999


Литература
  1. Волкова Н.А., Зиновьева Н.А., Волкова Л.А., Эрнст Л.К. Изучение факторов, влияющих на эффективность создания соматических трансгенных сельскохозяйственных животных продуцентов рекомбинантых белков человека с молоком.// Биотехнология. - 2006.- № 4.- С. 36-44.
  2. Зиновьева Н.А. и др., Методические рекомендации по использованию ПЦР в животноводстве, ВИЖ, 1998.
  3. Зиновьева Н.А., Стрекозов Н.И., Молофеева Л.А. Оценка роли ДНК-микросателлитов в генетической характеристике популяции чёрно-пёстрого скота. //Зоотехния. -2009. -№ 1.- С. 2-4.
  4. De Woody J.A, Avise J.C. Microsatellite variation in marine, freshwater, and anadromous fishes compared with animals // Journal of Fish Biology. – 2000. -V.56. – P.461-473.
  5. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers // Nucleic. Acids. Res. – 1989. –N.17. – P.6463-6471.



УДК 636.084.004.4

ХРАНЕНИЕ ВЛАЖНОГО КОРМОВОГО ЗЕРНА

БЕЗ СУШКИ

KEEPING OF HUMID FODDER GRAIN

WITHOUT DRYING

Фаритов Т.А.

Faritov T.А.

Башкирский государственный аграрный университет, г. Уфа, Россия

Энергосберегающие технологии, химическое консервирование влажного кормового зерна карбамидом.

Resource-saving technologies; keeping of humid fodder grain without drying; chemical conservation fodder green urea.

В условиях дефицита и дороговизны топливно-энергетических ресурсов важное значение приобретает разработка и внедрение ресурсосберегающих технологий производства, и хранения кормов. Развитие интенсивного животноводства неразрывно связано с производством достаточного количества концентрированных кормов. По данным Всероссийского НИИ зерна, затраты на послеуборочную обработку и хранение составляют 25-30% от общих затрат на производство зерна, из них до 60-70% приходится на сушку, что связано с энергоёмкостью процесса [1].

Взамен сушки влажного кормового зерна до стандартной влажности для длительного хранения важно разрабатывать технологию хранения его без сушки путем обработки специальными добавками, которые гарантируют не только надежную сохранность, но и снижение затрат энергетических ресурсов. Такой технологией является химическое консервирование фуражного зерна. Оно основано на смешивании зерновой массы с химическими веществами, обладающими фунгицидными и бактерицидными свойствами. Традиционными консервантами влажного зерна считаются органические кислоты (пропионовая, муравьиная, уксусная и другие) и их соли. Однако они дороги и дефицитны. В последние годы установлена возможность использования карбамида для консервирования влажного кормового зерна. Во влажной среде под действием фермента уреазы карбамид гидролизуется до аммиака и двуокиси углерода. Фунгицидные и бактерицидные свойства аммиака предотвращают развитие плесени и гнилостных бактерий. Следует подчеркнуть, что консервирование влажного зерна карбамидом обеспечивает не только надежную сохранность влажного зерна, что само по себе очень важно, но и повышение протеиновой питательности корма за счёт азота аммиака.

Нами в течение нескольких лет изучено и внедрено в производство обработка карбамидом влажного фуражного зерна для жвачных животных (за исключением молодняка молочного периода) и хранение без сушки. Всего было законсервировано более 700 т зерна различных культур влажностью от 19 до 30%. Во всех случаях при внесении карбамида с учётом влажности зерна (2,5-3,5% от массы зерна) консервированный корм хорошо сохранялся. В зависимости от дозы карбамида содержание сырого протеина корме увеличивалось на 30-80%). Обработанное карбамидом зерно можно скармливать только жвачным животным после приучения животных в течение 10-12 дней, начиная с малых доз. Использование консервированного мочевиной зерна взамен высушенного, благодаря повышению протеиновой полноценности рациона, позволяет добиваться более высоких показателей продуктивности. Скармливание обработанного карбамидом зерна в условиях СПК «Стерлитамакский», Стерлитамакского района за счет повышения протеиновой питательности рациона, позволяло увеличить среднесуточный удой с 12,36 до 13,63 кг. При этом отмечено повышение содержания белка с 2,98 до3,14%

В зависимости от влажности кормового зерна и других факторов, обработка влажного зерна карбамидом более чем в 2,5-3,5 раза дешевле, чем сушка его с помощью сушильного агрегата. Кроме того, за счет повышения продуктивности коров обеспечивается получение дополнительной прибыли.


Литература
  1. Сорочинский В.Ф. Послеуборочная обработка и хранение зерна. // Механизация и электрификация сельского хозяйства. 2003.– №1.– С. 10-12.



УДК 636.598

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПРЕПАРАТА НУПРО В ГУСЕВОДСТВЕ

USE OF PREPARATION nupro IN GOOSE BREEDING

Фаррахов А.Р., Гадиев Р.Р., Юнусов В.Р.

Farrahov A.R., Gadiev R.R, Junusov C.R.

Башкирский государственный аграрный университет, г. Уфа, Россия

Птицеводство, дрожжевые культуры, яйценоскость, гусыня

Poultry, yeast, egg, goose


Гусеводство – одно из направлений птицеводства, позволяющее производить мясо птицы. По скороспелости, оплате корма, жизнеспособности и возможности откорма – гуси занимают особое место. Из всех биологических особенностей гусей птицеводы отдают предпочтение тем, которые способствуют эффективному производству гусиного мяса

Важнейшей проблемой современного птицеводства остается повышение продуктивности и удешевление продукции за счет более высокой эффективности использования питательных веществ корма.

В настоящее время в птицеводстве начали широко применять препараты, произведенные на основе дрожжевых культур, одним из таких является дрожжевой экстракт НуПро. Богатый источник переваримых аминокислот с уровнем сырого протеина 50%.

Целью наших исследований явилось изучение воспроизводительных качеств гусей родительского стада при включении в состав комбикормов различных доз дрожжевого экстракта НуПро.

Исследования проведены на гусях белой итальянской породы в период 2010 г. в условиях ООО «Башкирская птица» Благоварского района Республики Башкортостан.

Уровень кормления и содержания птицы соответствовали рекомендациям ВНИТИП.

Для изучения воспроизводительных качеств гусей по принципу аналогов были сформированы 3 опытные и контрольная группы по 50 голов взрослых гусей. В контрольной и опытной группах гуси находились в одинаковых условиях кормления и содержания за исключением изучаемого фактора. В рацион 1 опытной группы добавляли НуПро в количестве 2% от массы комбикорма, во 2 и 3 опытных группах по 4 и 6% соответственно. Продолжительность опыта составила 130 дней.

Показатели яйценоскости гусей по месяцам продуктивного цикла при включении в состав комбикормов различных доз препарата НуПро представлены в табл. 1.

Из анализа данной таблицы можно отметить, что яйценоскость гусей итальянской породы находилась на довольно высоком уровне и колебалась от 35,54 до 37,38 шт.