Получение и применение моноклональных антител и рекомбинантных белков для иммунодиагностики опасных инфекций человека 03. 01. 06. биотехнология

Вид материалаАвтореферат

Содержание


E.coli; 6 – лизат клеток E.coli
E.coli, обработан МКА 7Н10 (отрицательный контроль); 8 - лизат E.coli
Подобный материал:
1   2   3   4   5   6   7



Таблица 4

Исследование антигенных и иммуногенных свойств рекомбинантных белков вируса Марбург


№ п/п

ПАТ

Взаимодействие ПАТ с ВМ и рекомбинантными белками в ИБ

Титры рекомбинантных белков при

специфическом взаимодействии с ПАТ

(обратные величины) в ТИФА

ВМ

рек. GP

рек. NP

рек. VP40

рек.

VP35

рек.

VP24

рек. GP

рек. NP

рек. VP40

рек.

VP35

рек.

VP24

1

ЧС

(1/500)

+

-

+

+

+

+

800

12800

8100

8100

6400

2

IgG

лошади

(1/1500)

+

-

+

+

+

+

1600

72900

40500

13500

1600

3

МАС-ВМ

№ 2

(1/1000)

+

+

+

+

+

+

900

24300

8100

8100

1600

4

МАС-рек. GP

(1/1000)

+

+

-

-

-

-

72900

<100

<100

<100

<100

5

МАС-рек. NP

(1/5000)

+

-

+

-

-

-

<100

218700

<100

<100

<100

6

МАС-рек. VP35

(1/5000)

+

-

-

-

+

-

<100

<100

656100

<100

<100

7

МАС-рек. VP40

(1/10000)

+

-

-

+

-

-

<100

<100

<100

1087500

<100

8

МАС-рек. VP24

(1/5000)

+

-

-

-

-

+

<100

<100

<100

<100

202400


Примечания: ПАТ – поликлональные антитела иммунных сывороток; r – рек. белок;

ЧС - сыворотка человека, переболевшего ГЛМ (разведение); МАС-ВМ № 2 - пул сывороток от 3 мышей, иммунизированных АГ ВМ и используемых для гибридизации на 21-е сутки от начала иммунизации в разведении ; МАС-рек. - сыворотки мышей, иммунизированных рек. белками GP, NP, VP40, VP35, VP24 ВМ.


Таблица 5

Исследование антигенных и иммуногенных свойств рекомбинантных белков вируса Эбола


Источник антител

Титры специфических антител (обратные величины) и взаимодействие

в ИБ

Антигены (концентрация для ТИФА 1 мкг/мл )

Инактивирован-ный ВЭ

рек.VP35

рек.VP40

рек.NP

рQE

ИФА

ИБ

ИФА

ИБ

ИФА

ИБ

ИФА

ИБ

ИФА

ИБ

IgG лошади - ВЭ

656100

+

121500

+

656100

+

656100

+

<100

-

МАС - ВЭ

218700

+

218700

+

218700

+

656100

+

<100

-

АС крысы - ВЭ

218700

+

24300

+

218700

+

218700

+

<100

-

АС кролика - ВЭ

218700

+

218700

+

218700

+

656100

+

<100

-

МАС – рек. VP35

729000

+

729000

+

<100

-

<100

-

<100

-

МАС – рек. VP40

656100

+

<100

-

1968300

+

<100

-

<100

-

МАС – рек. NP – ВЭ

656100

+

<100

-

<100

-

1968300

+

<100

-

отрицательные контроли**

<100

-

<100

-

<100

-

<100

-

<100

-

Примечание: МАС – мышиные антисыворотки; рQE – лизат E.coli (отрицательный контроль для рек. белков); * – проводили обработку (истощение) исследуемых моноспецифических МАС в присутствии 1 %-го раствора лизата E.coli клеток 20 мин при 37 0С; ** – в качестве отрицательного контроля использовали нормальные сыворотки лошади, мыши, крысы и кролика.


Изучение возможности использования инактивированного вируса Марбург и рекомбинантных белков для выявления специфических иммуноглобулинов класса IgG в сыворотках крови животных и человека

Описанные выше исследования рек. белков - GP, NP, VP35, VP40 и VP24 ВМ показали сходство их антигенных свойств с природными вирусными белками, что указывает на возможность использования данных препаратов в тест-системах для выявления специфических АТ.

Для анализа уровня АТ к каждому вирусному белку использовали в качестве АГ отдельные рек. белки. Это позволило определить уровень и спектр АТ к отдельным белкам ВМ (табл. 6). Наиболее высокая концентрация специфических АТ в сыворотке крови реконвалесцента была зарегистрирована к NP (1/24300) и, по убывающей, к VP40 (1/8100) и к VP35 (1/2700). Уровень специфических АТ к GP был ниже, чем к другим белкам и вообще не определялся в сыворотке, взятой у пациента через шесть лет после болезни. Такая же тенденция, по уровню АТ к индивидуальным белкам, была обнаружена и для АТ в сыворотках крови иммунизированных животных.

В случае применения в качестве АГ комбинации четырех рек. белков ВМ - GP, NP, VP35 и VP40, повышался уровень титров выявления специфических АТ исследуемых сывороток по сравнению с использованием инактивированного АГ ВМ.

Таблица 6

Использование рекомбинантных белков в качестве антигена в ТИФА для выявления IgG, специфичных к вирусу Марбург


Источник

антител

Титры специфических IgG (обратные величины)

Антигены (концентрация нг/лунку)

вирус

Марбург

(200)

рек.GP

(200)

рек.NP

(200)

рек.VP40

(200)

рек.VP35

(200)

рек. белки

(400)***

рQE

(400)

ЧС (1990 г.)

24300

900

24300

8100

2700

24300

<100

ЧС (1996 г.)

200

<100

400

400

<100

800

<100

IgG лошади

218700

13500

121500

40500

13500

364500

<100

МАС–ВМ № 1

8100

<100

2700

2700

<100

8100

<100

МАС-ВМ № 2

24300

900

24300

24300

8100

72900

<100

МАС–рек.GP*

8100

656100

<100

<100

<100

72900

<100

МАС–рек.NP*

72900

<100

72900

<100

<100

24300

<100

МАС–рек.VP35*

24300

<100

<100

<100

656100

218700

<100

МАС–рек.VP40*

72900

<100

<100

1968300

<100

218700

<100

отрицательные

контроли**

<100

<100

<100

<100

<100

<100

<100


Примечание: ЧС – сыворотка человека, переболевшего ГЛМ (в скобках указана дата забора крови); МАС мышиные антисыворотки; рQE – лизат E.coli (отрицательный контроль для рек. белков);

* – проводили обработку (истощение) исследуемых моноспецифических МАС в присутствии 1 %-го раствора лизата E.coli клеток 20 мин при 37 0С; ** – в качестве отрицательного контроля использовали нормальные сыворотки человека (5 сывороток), лошади (1 сыворотка), мыши (5 сывороток); *** – смесь рек. белков GP, NP, VP35, VP40 по 100 нг/лунку каждого.


Изучение антигенных свойств рекомбинантных белков вируса Марбург с помощью панели МКА

По исследованию рек. белков ВМ имеется два сообщения - об использовании рек. NP, экспрессированного в виде полноразмерных копий в бакуловирусной системе и в виде С-концевых фрагментов в E.coli, для выявления противовирусных АТ в сыворотках крови реконвалесцентов людей (M. Saijo et al., 2001) и о получении МКА, специфичных к этому рек. белку и выявляющих вирусный АГ в реакции иммунофлюоресценции (M. Saijo et al., 2005).

Для изучения рек. белков NP, VP35, VP40 ВМ, получили панель гибридомных МКА, специфичных к гомологичным вирусным белкам. Панель содержит - 3 вида МКА к NP, 3 вида МКА к белку VP35 и 9 видов МКА к VP40 (табл. 7). Для одного вида МКА 3А5 белок-мишень в ИБ не определялся, хотя он имел высокий титр в ТИФА, видимо эпитопы для этого вида МКА имеют конформационную структуру.

Специфическое взаимодействие МКА с рек. белками ВМ оценивали в ТИФА и ИБ. Как видно из представленных данных (см. табл. 7), большинство МКА активно взаимодействовали с рек. белками – аналогами вирусных белков в ТИФА. Специфическое взаимодействие рек. белков с МКА в ИБ для примера представлено на рис. 5-7. Так же было показано, что МКА, специфичные к ВМ, не имеют перекрестного взаимодействия с рек. белками гетерологичного ВЭ в ИБ и ТИФА, в отличие от данных по перекрестному взаимодействию противовирусных ПАТ с гетерологичными вирусными белками, как это было показано ранее (см. табл. 3).



Рис. 5. Иммуноблоттинг рекомбинантных белков NP вируса Марбург с МКА, специфичными к вирусному нуклеопротеину

Цельная мембрана, содержащая:

1 – лизат клеток 293 (отрицательный контроль);

2 - лизат клеток 293, инфицированных vTF7-3 (отрицательный контроль);

3 – инактивированный ВМ;

4 – рек. NP, экспрессированный в эукариотических клетках 293;

5 – рек. NP, экспрессированный в прокариотических клетках ^ E.coli;

6 – лизат клеток E.coli (отрицательный контроль);

обработана смесью МКА 5F1, 5H7 и 9С7 в разведении 1/1000 каждого.









Рис. 6. Иммуноблоттинг рекомбинантного белка VP40 с МКА, специфичными к матриксному вируса Марбург, обработан МКА 7Н10 (положительный контроль);

2 - препарат ВМ, обработан МКА 7D8 (положительный контроль);

3 – рек. белок VP40, обработан МКА 7Н10;

4 – рек. белок VP40, обработан МКА 7D8;

5 - препарат ВЭ, обработан МКА 7Н10 (отрицательный контроль);

6 - препарат ВЭ, обработан МКА 7D8 (отрицательный контроль);

7 - лизат ^ E.coli, обработан МКА 7Н10 (отрицательный контроль);

8 - лизат E.coli, обработан МКА 7D8 (отрицательный контроль); МКА использовали в разведении (1/500).




Таблица 7

Анализ специфичности рекомбинантных белков вируса Марбург




п/п

Назва-

ние

МКА

Иммуно-ген

Вирусный белок-

мишень

в ИБ

Взаимо-

действие

с рек.

белком-

аналогом

в ИБ

Титры антител в ТИФА с вирусными антигенами

и рекомбинантными аналогами



вирус

Марбург

рек.NP –

ВМ


рек.VP40-

ВМ

рек.VP35-

ВМ

1

3F9

ВМ

VP35

+

656100

-

-

729000

2

9D8

ВМ

VP35

+

729000

-

-

656100

3

8G3

ВМ

VP35

-

218700

-

-

72900

4

5G9

ВМ

VP40

+

729000

-

72900

-

5

7H10

ВМ

VP40

+

729000

-

729000

-

6

9G6

ВМ

VP40

+

218700

-

218700

-

7

6B7

ВМ

VP40

+

656100

-

656100

-

8

1C12

ВМ

VP40

+

24300

-

24300

-

9

10E11

ВМ

VP40

+

24300

-

24300

-

10

7D8

ВМ

VP40

+

2187000

-

243000

-

11

5G8

ВМ

VP40

+

656100

-

656100

-

12

7С4

ВМ

VP40

+

2187000

-

729000

-

13

5F11

ВМ

NP

+

2187000

24300

-

-

14

9C7

ВМ

NP

+

6561000

6561000

-

-

15

5H7

ВМ

NP

+

2187000

2187000

-

-

16

3A5

ВМ

NP (?)

-

218700

-

-

-

Примечания: для иммунизации мышей-доноров иммунных спленоцитов был использован инактивированный ВМ; NP (?) – белок – мишень не определяется этим видом МКА в ИБ и не взаимодействует с рек. белком, но по результатам КИФА имеет сродство к NP ВМ (Е.И. Казачинская, 2002); + есть реакция в данном методе; - нет реакции в данном методе; 100 нг/лунка – концентрация антигенов.




Рис. 7. Иммуноблоттинг с вирусных и рекомбинантных белков VP35 вируса Марбург с моноклональными антителами

1 – препарат ВМ (10 мкл), стрелкой обозначен вирусный белок VP35;

2 - препарат ВЭ (отрицательный контроль на антиген);

3 – лизат E.coli. (отрицательный котроль для рек. белка);

4 – очищенный рек. белок VP35 ВМ (10 мкл) обозначен стрелкой;

все полоски мебраны обработаны препаратом очищенных МКА 3F9 в разведении 1/500;

5 – значения молекулярной массы белковых маркеров.