Методическая разработка по проведению практических занятий для студентов 5, 6 курса По учебной дисциплине: «Эпидемиология»

Вид материала

Содержание

Подобный материал:

1 2 3 4 5 6 7 8 9 ... 12

Вопросы для самоподготовки:

1.Понятие о дезинфекции, стерилизации.

^ 2.Значение дезинфекции и стерилизации для предупреждения возникновения внутрибольничных инфекций среди пациентов и профессиональных заражений в ЛПУ.

3.Профилактическая дезинфекция в ЛПУ.

4.Очаговая дезинфекция в ЛПУ.

^ 5.Особенности дезинфекционного режима и режима стерилизации с учетом особенностей возбудителей инфекционных заболеваний.

6. Асептика и антисептика. Инфекционная безопасность.

7.Методы и средства дезинфекции.

8.Методы и средства стерилизации.

^ 9. Кожные антисептики. Виды обработки рук.

10. Обеззараживания воздуха, обеззараживание вентиляционных систем.

11.Контроль эффективности предстерилизационной подготовки.

12.Контроль качества стерилизации. Тесты.

^ 13.Контроль качества дезинфекционного режима.

14.Инфекционный контроль (микробиологический).

15.Принципы зонирования функциональных помещений ЛПУ по классам чистоты.

Ситуационная задача 1.

В терапевтическом отделении стационара и на дому выявлены больные кишечной инфекцией с фекально-оральным механизмом передачи. До изоляции больного из терапевтического отделения и госпитализации больного, выявленного на дому, необходимо проводить текущую дезинфекцию. Кто проводит текущую дезинфекцию? Основные направления дезинфекционных мероприятий? На какое звено эпидемического процесса направлена текущая дезинфекция?

^ Ситуационная задача 2.

Из инфекционного отделения выписан больной брюшным тифом после выздоровления. Какие мероприятия следует провести до и после выписки?

^ Кто организует и проводит эти мероприятия?

Ситуационная задача 3.

Ежедневно во всех отделениях не инфекционного стационара проводится профилактическая дезинфекция при отсутствии обнаруженных источников инфекции, но предполагая их наличие. Цель профилактической дезинфекции? Основные направления профилактической дезинфекции? Кто проводит профилактическую дезинфекцию

^ Ситуационная задача 4.

В палату госпитализировали больных с ослабленным иммунитетом. Перед клиническим осмотром этих пациентов необходимо провести гигиеническую обработку рук. С какой целью эта процедура выполняется и техника выполнения процедуры?

^ Ситуационная задача 5.

В соматическом стационаре выявлен случай внутрибольничной инфекции.

Какие дезинфекционные мероприятия и в какой последовательности следует провести в палате?

Ситуационная задача 6.

Для проведения текущей дезинфекции в очаге необходимо приготовить растворы дезсредств.

^ Какие правила необходимо выполнять для обеспечения качества дезинфекции и безопасности работы при приготовлении дезинфицирующих растворов?.

Ситуационная задача 7.

При работе в процедурном кабинете невозможно знать об инфекционном статусе пациента. Какие ежедневные профилактические мероприятия необходимо проводить?

Ситуационная задача 8.

Какие дезинфекционные мероприятия следует провести при загрязнении рабочего стола кровью во время выполнения манипуляции?

Ситуационная задача 9.

Инфекционная безопасность после оказания помощи ВИЧ-инфицированному или больному СПИДом пациенту?

Тестовый контроль по дезинфекции

Вариант 1

^ 1.Дезинфекция это:

А. Комплекс мер, направленный на уничтожение возбудителей инфекционных болезней в окружающей человека среде;

Б. Комплекс мер, направленный на уничтожение членистоногих;

^ В. Комплекс мер, направленный на уничтожение грызунов;

Г. Комплекс мер, направленный на уничтожение промежуточных хозяев (гидробионтов) гельминтов.

^ 2.Средства дезинфекции:

А. Дезинфекция это уничтожение микроорганизмов дезинфицирующими средствами;

Б. Дезинфекция это уничтожение микроорганизмов моющими средствами;

В. Дезинфекция это уничтожение микроорганизмов фитонцидными средствами;

Г. Дезинфекция это уничтожение микроорганизмов лекарственными препаратами;

^ 3.Виды дезинфекции:

А. Очаговая текущая;

Б. Очаговая заключительная;

В. Очаговая профилактическая;

Г. Профилактическая.

^ 4.Профилактическая дезинфекция проводится:

А. В парикмахерских (инструменты, белье), родильных домах;

Б. На водопроводной станции;

В. В квартире больного дизентерией, оставленного дома;

Г. В банях, прачечных, гостиницах, общественных туалетах.

^ 5.Заключительная дезинфекция проводится:

А. В очаге при выявлении инфекционного больного;

Б. В очаге после госпитализации инфекционного больного;

В. В очаге после выздоровления инфекционного больного;

Г. В квартире после смерти инфекционного больного.

^ 6.Заключительную дезинфекцию выполняют работники дезинфекционной службы в очаге:

А.Дизентерии, эшерихиоза;;

Б. Дифтерии;

В. Грибковых заболеваний кожи, волос, ногтей, чесотки;

Г. Туберкулеза, холеры, чумы.

^ 7.Физический метод дезинфекции предусматривает использование:

А.Кипячения;

Б. Горячего воздуха;

В. Паровоздушной смеси, ультрафиолетовых лучей;

Г. Фильтрации, проветривания, пылесоса.

^ 8.Требования к химическим средствам, используемых для дезинфекции:

А. Нетоксичность;

Б. Широкий спектр антимикробного действия, хорошая растворимость в воде;

В.Активность при комнатной температуре, в присутствии белка и других органических веществ;

Г.Достаточно бактериостатического действия.

^ 9. Эффективность дезинфектантов зависит:

А. От температуры раствора дезинфектанта в окружающей среде:

Б. От концентрации дезинфектанта, экспозиции;

В. От атмосферного воздуха;

Г. От присутствия активаторов..

^ 10. В качестве дезинфектантов используют:

А.Хлорсодержащие вещества;

Б. Фосфорорганические соединения;

В. Йод, бром и их соединения;

Г. Окислители, гуанидины, альдегиды, щелочи.

Вариант 2

^ 1.Для дезинфекции используют следующий электрохимически активированный раствор натрия хлорида, получаемый на установках СТЭЛ:

А.Католит;

Б.Анолит.

^ 2.Методы контроля стерилизации, Найдите соответствие: 1, 2, 3, 4.

А.Биологический метод 1. Биотест- культура микроорганизмов

Б.Химический метод 2. Температура, давление

В. Физический метод 3.Термоиндикаторные краски

Г. Микробиологический 4.Контроль стерильности изделий

метод.

^ 3. Медицинский инструментарий из коррозионно-неустойчивых материалов стерилизуют методом:

А.Паровым;

Б. Воздушным;

В. Газовым.

^ 4.Обработка посуды в пищеблоке больницы следующая:

А. Освободить от остатков пищи;

Б. Вымыть моющим раствором;

В. Кипятить;

Г. Замочить в растворе фенола;

Д. Замочить в растворе дезсредства;

Е. Вымыть, удалив дезинфектанты.

^ 5. Средства для обработки хирургического инструментария:

А. Моющие средства;

Б. Хлорамин;

В. Пар;

Г. Горячий воздух;

Д. Перекись водорода;

Е. Пары формалина;

Ж. Оксид этилена с бромистым метилом;

З. Анолит нейтральный.

^ 6.Эффективность стерилизации растворами дезинфектантов определяется:

А. Концентрацией раствора, его температурой;

Б. Ph и временем стерилизационной выдержки;

В. Давлением;

Г. Температурой окружающего воздуха в помещении

^ 7.Стерилизация медицинская - это:

А. Уничтожение только вегетативных патогенных микроорганизмов;

Б. Уничтожение только споровых патогенных форм;

В. Полное освобождение объекта от всех микроорганизмов.

^ 8. Дезинсекция- это:

А. Уничтожение только насекомых, имеющих санитарно- гигиеническое значение;

Б. Уничтожение только насекомых, мешающих труду и отдыху людей;

^ В. Уничтожение только насекомых и клещей, являющихся переносчиками инфекционных болезней;

Г. Уничтожение насекомых и клещей, являющихся переносчиками инфекционных болезней, а также других насекомых, имеющих санитарно-гигиеническое значение и мешающих труду и отдыху людей.

^ 9.Комплекс мер при дезинсекции включает:

А. Профилактические мероприятия, препятствующие размножению и сохранению переносчиков;

Б. Истребительные мероприятия- уничтожение переносчиков на всех стадиях их развития;

В.Мероприятия по ограничению численности переносчиков инфекционных заболеваний.

^ 10. Назовите экологически безопасные методы борьбы с насекомыми и клещами:

А. Биологический;

Б. Физический;

В. Механический;

Г. Химический

Дезинфекция, стерилизация - составные части противоэпидемической работы. Они направлены на устранение путей и факторов передачи возбудителя, т. е. на второе звено эпидемического процесса.

Дезинфекция и стерилизация медицинского инструментария

Медицинский инструментарий немедленно после работы с пациентом должен подвергаться дезинфекции. Некоторые изделия медицинского назначения, такие как зеркала (стоматологические и ЛОР), после дезинфекции и отмывки от дезинфектанта готовы к последующему использованию, т. е. не требуют стерилизации.

Дезинфекцию инструментов осуществляют физическим или химическим методом. Среди физических методов наиболее распространенным является кипячение в воде в течение 30 мин, а с добавлением питьевой соды (20 г/л) в течение 15 мин. Однако чаще применяют химический метод дезинсекции при полном погружении инструментов в емкость с дезинфицирующим раствором.

^ Эту операцию проводят сразу после использования инструментов, не допуская их подсушивания. Разъемные изделия погружают в разобранном виде. Каналы изделий должны быть заполнены раствором без образования воздушных пробок.

После окончания дезинфекции все инструменты промывают проточной водой или отмывают методом погружения в емкости с водой, соблюдая минимальное время экспозиции и соотношение воды к объему, занимаемому изделиями (3:1). Все полости и каналы инструментария должны быть тщательно промыты от дезинфектанта, последние — с помощью шприца или водоструйного насоса.

Изделия медицинского назначения или части некоторых изделий, не соприкасающиеся непосредственно с пациентом, дезинфицируют методом протирания тампоном, смоченным в дезинфектанте.

^ Широкое использование химических средств дезинфекции требует проведения контроля качества дезинфектантов.

Контроль качества дезинфектантов состоит в определении содержания активнодействующего вещества с помощью лабораторных исследований или экспресс-методом.

С целью проведения лабораторного контроля проводят отбор проб сухих дезинфицирующих средств и их растворов в соответствии с методикой и направляют для анализа в химическую лабораторию.

Экспресс-метод контроля дезинфектантов позволяет в течение нескольких секунд определить концентрацию действующего вещества в растворе с помощью индикаторных бумажных полосок. Например, для хлорамина, хлорной извести разработан хлор-тест, для перекиси водорода — пероксид-тест, хлоргексидина биглюконата (гибитана) — ЧАС-тест, нейтрального анолита — миллихлор. При опускании индикаторной полоски в исследуемый раствор на 1сек. она меняет цвет в зависимости от концентрации активнодействующего вещества, которую определяют в процентах при сравнении индикаторной полоски со шкалой цветности.

Стерилизация медицинская — полное освобождение вещества или предмета от микроорганизмов, т. е. уничтожение вегетативных и споровых патогенных и непатогенных форм путем воздействия на него физических или химических агентов.

Стерилизации подвергают все изделия медицинского назначения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

^ Обработка изделий, подлежащих стерилизации, включает три этапа: • дезинфекция, • предстерилизационная очистка,• стерилизация.

Первый этап — дезинфекция медицинских инструментов — описана в предыдущем разделе.

Второй этап обработки инструментов, подлежащих стерилизации, — предстерилизационная очистка имеет целью удаление белковых, жировых, механическихзагрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Предстерилизационную очистку осуществляют механизированным или ручным способами с использованием разрешенных моющих средств. Разъемные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде и с заполнением каналов.Механизированную очистку проводят в моечных машинах специального назначения: для игл, шприцев, различных инструментов.

^ Ручным способом обработку проводят в следующей последовательности:

- промывание изделия проточной водой в течение 0,5 мин;

- замачивание при полном погружении изделия на 15 мин при 50 °С в моющем растворе 0,5 % "Биолот" или 0,5 % растворе перекиси водорода с 0,5 % одного из синтетических моющих средств (CMC): "Лотос", "Лотос-автомат", "Астра", "Айна", "Маричка", "Прогресс";

- мойка каждого изделия в том же моющем растворе с помощью ватно-марлевого тампона или ерша в течение 0,5 мин;

- ополаскивание проточной, а затем дистиллированной водой;

- сушка горячим воздухом при температуре 75—87°С в сушильных шкафах до полного исчезновения влаги.

Известно, что перекись водорода вызывает коррозию инструментов из коррозионно-неустойчивых металлов, поэтому в моющий раствор целесообразно добавлять ингибитор коррозии в концентрации 1,4 г/л.

^ Раствор "Биолот" для замачивания и мойки изделий применяют однократно, а моющий раствор перекиси водорода с СМС можно использовать в течение суток.

В настоящее время созданы средства, сочетающие дезинфицирующие и моющие свойства и позволяющие проводить одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку„ инструментов в один этап ("Лизетол АФ", "Септодор-Форте-"Деконекс Денталь ББ", "Дюльбак", Гротанат"). С этой же¹целью можно применять "нейтральные" анолиты, получаемые на диафрагменных электрохимических установках из растворов поваренной соли. Католиты, получаемые в катодных камерах установок, обладают только моющими свойствами, их применяют для предстерилизационной очистки инструментов из любых материалов.

Контроль качества предстерилизационной обработки проводят выборочно (1% изделий каждого наименования) путем постановки проб на остаточную кровь (азопирамовой пробы). Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, а также ржавчины и кислот.

^ При положительной пробе на кровь, моющее средство или жир всю партию контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Третий этап.

Стерилизацию изделий медицинского назначения осуществляют следующими методами:

•термическим (паровые, воздушные, гласперленовые стерилизаторы);

•химическим (растворы химических веществ, газовая стерилизация);

•радиационным (установки с радиоактивным источником излучения).

В последнее время на основе принципиально новых технологий созданы плазменные стерилизаторы, использующие энергию воздействия потока активированных молекул инертного газа, ускоренных в электрическом поле, на поверхность стерилизуемых объектов, а также озоновые стерилизаторы.

Оптимальный метод стерилизации определяют с учетом материала, из которого состоит обрабатываемое изделие, его конструктивного исполнения, необходимости длительного сохранения стерильности и др.

^ В практике работы ЛПУ наиболее широко применяют термический метод стерилизации с использованием паровых и воздушных стерилизаторов.

Паровой метод стерилизации. В паровых стерилизаторах обрабатывают хирургическое белье, перевязочный материал, хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозиестойких материалов, стекла (в том числе шприцы с пометкой 200 °С), резины (катетеры, зонды, трубки, перчатки), текстильных материалов Стерилизующим агентом является насыщенный водяной пар под избыточным давлением. Температурный режим стерилизации в современных паровых стерилизаторах варьирует от 126 до 141°С, а время стерилизации соответственно от 3 до 10 мин. Эффективность стерилизации в паровом стерилизаторе зависит от правильного выбора упаковки, соблюдения правил загрузки и плотности загрузки для свободного прохождения пара.

Воздушный метод стерилизации. В воздушных стерилизаторах стерилизующим агентом является сухой горячий воздух, при этом не происходит увлажнения упаковки и изделий и не наблюдается коррозия коррозионно-неустойчивых металлов, не осложняются условия сохранения стерильности. Однако по эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высокие температуры. Режимы стерилизации воздушным методом в стерилизаторах нового поколения характеризуются температурой от 160 до 200°С и временем стерилизации от 30 до 120 мин. Воздушным методом стерилизуют хирургические и гинекологические инструменты, детали и узлы приборов и аппаратов, в том числе изготовленных из коррозионно-неустойчивых материалов, инъекционные иглы, шприцы с пометкой 200 °С и др.

Газовый метод стерилизации. Стерилизацию в газовых стерилизаторах осуществляют при невысоких температурах (18— 80 °С) с применением оксида этилена, смеси ОБ (смесь оксида этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5), а также паров раствора формалина в этиловом спирте. Изделия стерилизуют в упаковке из полиэтиленовой пленки, пергамента или бумаги оберточной марки. Газовую стерилизацию в качестве "холодного" метода используют для термолабильных изделий медицинского назначения из полимерных материалов (резины, пластмассы), колющих, режущих хирургических инструментов, имеющих зеркальные поверхности, оптического оборудования (эндоскопы), кардиостимуляторов, предметов одноразового пользования.

^ Срок хранения изделий, стерилизованных газовым методом в полиэтиленовой пленке,- годы, в остальных упаковках - 20 суток.

Метод стерилизации с помощью растворов химических средств. Для стерилизации рекомендованы растворы: анолит нейтральный, "Бианол", Гигасепт ФФ", глутаровый альдегид, Дюльбак растворимый", "Колдспор", "Лизоформин 300", Первомур" (4,8 %), перекись водорода (6 %), "Сайдекс".

В растворах химических веществ обрабатывают инструменты из коррозиестойких материалов, изделия из стекла, пластмасс, металла (сплавы титана), резины на основе силиконового каучука, в том числе эндоскопы. Лигатурный шовный материал может быть стерилизован первомуром в концентрации 4,8 % в отличие от первомура для обработки рук (2,4 %).

Гласперленовые стерилизаторы используют для стерилизации мелких стоматологических инструментов. В качестве стерилизующей среды — нагретые стеклянные шарики.

Радиационный метод стерилизации — ведущий метод промышленной стерилизации на предприятиях, выпускающих стерильные изделия медицинского назначения однократного применения: пластмассовые зонды, катетеры, трубки, системы для взятия и переливания крови, акушерские комплекты, перевязочный материал.

Стерилизующим агентом являются ионизирующие гамма-и бета-излучения. Энергия используемых для стерилизации излучений не вызывает наведенной радиации у стерилизуемых изделий. Срок сохранения стерильности в индивидуальной упаковке из полиэтиленовой пленки исчисляется годами, но ограничивается сроком годности изделия к использованию и указывается на упаковке.

Контроль стерилизации проводят с помощью физического и химического методов.

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляют с помощью контрольно-измерительных приборов, фиксирующих температуру, давление и время.

Химический метод состоит в использовании химических тестов и термохимических индикаторов, которые размещают в стерилизационной камере в контрольных точках прикаждой закладке инструментов и материалов как вне упаковок, так и в стерилизационные коробки (биксы) и внутри упаковок. При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля загрузку считают нестерильной.

^ Эффективность стерилизации контролируют бактериологическим методом, используя биотесты стерилизации, представляющие собой объекты (флаконы, фольгу и др.), обсемененные тест-микроорганизмами, например спорами B.stearother-mophilus или В. licheniformis. На основании гибели тест-микроорганизмов делают заключение об эффективности процесса.

Контроль стерильности заключается в определении на изделиях, подвергнутых стерилизации, тест-микроорганизмов, способных к размножению.

Дезинфекционный режим в лечебно-профилактических учреждениях. Дезинфекционные мероприятия в ЛПУ занимают главенствующее место в комплексе профилактических и противоэпидемических мероприятий и направлены на предупреждение возникновения, ограничение распространения и ликвидацию внутрибольничной инфекции (ВБИ).

Объем и вид проводимой в ЛПУ дезинфекции определяют профиль стационара, наличие больных с инфекционными заболеваниями и показатель заболеваемости ВБИ. В стационарах постоянно осуществляют профилактическую, а по показаниям — очаговую (текущую и заключительную) дезинфекцию.

Особенностью этой работы является то, что она выполняется в присутствии больных и при непрерываемой деятельности медицинского и обслуживающего персонала, что определяет выбор средств и методов дезинфекции. Конкретный план дезинфекционных мероприятий в ЛПУ составляют с учетом наиболее значимых в качестве факторов передачи объектов внешней среды, наиболее часто и массивно обсемененных патогенными и условно-патогенными микроорганизмами- возбудителями ВБИ. Ответственность за организацию и проведение комплекса санитарно-гигиенических и противоэпидемических мероприятий возложена на главного врача лечебно-профилактического учреждения. Старшая медицинская сестра ответственна за обучение среднего и младшего персонала.

Наиболее значимым фактором передачи возбудителя инфекционных болезней в условиях ЛПУ являются руки медицинского персонала, что обосновывает необходимость систематической их обработки. Различают гигиеническую и хирургическую обработку рук медицинского персонала.

Гигиеническая обработка рук предусматривает удаление или уничтожение транзиторной (поверхностной) патогенной или условно-патогенной микрофлоры для предупреждения распространения ее на окружающие объекты и пациентов. Гигиеническую обработку обязан проводить весь персонал регулярно, используя один из следующих способов:

• тщательное мытье рук туалетным или хозяйственным мылом при двукратном намыливании их с последующим, вытиранием стерильной салфеткой;

• тщательное мытье рук антисептическими мылами в течение 30сек. с последующим смыванием пены;

• протирание рук в течение 1—2 мин тампоном, смоченным в одном из дезинфицирующих растворов (70 % этиловом спирте, 0,5 % хлоргексидине биглюконате в 70 % этиловом спирте);

• нанесение на поверхности ладоней 3 мл одного из кожных антисептических препаратов и втирание в кожу в течение 30 с ("АХД-2000-специаль", "Октенидерм", "Октениман", "Сагросепт", "Спитадерм", "Велтосепт" и др.).

Способ обработки определяют выполняемая работа и возможность контаминации рук условно-патогенными и патогенными микроорганизмами. После манипуляций, связанных с возможностью попадания на руки патогенной микрофлоры, обязательно применяют дезинфицирующие средства, включая те случаи, когда персонал работает в перчатках.

Хирургическая дезинфекция рук обязательна для персонала, участвующего в операции, и проводится после предварительного мытья рук с мылом в течение 1 мин при двукратном намыливании. Антисептик наносят на вытертые насухо стерильной салфеткой руки Для хирургической обработки рук используют рецептуру С-4, 0,5 % хлоргексидин биглюконат в 70 % этиловом спирте, "Велтосепт", 1 % дегмицид и др.

В приемном отделении (прием больного- вторая наиболее значимая группа факторов риска) после осмотра больного: использованные термометры полностью погружают в 2 % раствор хлорамина на 5 мин, затем промывают проточной водой, хранят в промаркированной емкости в сухом виде; дезинфицирующим раствором промывают клеенку, покрывающую кушетку. Всех больных осматривают на педикулез. В специальном помещении проводят полную санитарную обработку поступающих больных.

В лечебных отделениях перед поступлением больного (третья группа факторов риска) обрабатывают дезинфицирующим раствором кровать, тумбочку, подставку для подкладного судна. Постельные принадлежности дезинфицируют в паровой камере или паровоздушным способом; палаты проветривают 4 раза в день. Ванну для больных и смену постельного и нательного белья назначают 1 раз в 7—10 дней.

В процедурном кабинете стерильный стол накрывают на срок 6 ч. Во время работы корнцанги и пинцеты для стерильного материала хранят в дезинфицирующем растворе (1 % водный раствор хлоргексидина биглюконата, 1 % раствор хлорамина).

Инъекционное поле двукратно протирают ватными шариками, смоченными 70 % спиртом или другим предназначенным для этих целей антисептиком.

Инъекционные иглы и шприцы после использования помещают в емкости с дезинфицирующим раствором, промывая их перед погружением и заполняя дезинфицирующим раствором. Шприцы однократного применения после дезинфекции направляют на утилизацию.

Смену спецодежды проводят не реже 2 раз в неделю. Текущую уборку выполняют 2 раза в день влажным способом с применением дезинфицирующих средств. Для бактерицидного облучения помещений используют комбинированные или рециркуляционные лампы, которые включают после уборки в конце рабочего дня на 30 мин. Генеральную уборку проводят 1 раз в неделю.

В операционном блоке стерильные инструменты и материал, необходимые для операции, выкладывают на стерильный стол перед началом операции. Для шитья используют только стерильный ампулированный шелк, капрон или кетгут. Кожу пациента обрабатывают кожным антисептиком, для изоляции операционного поля применяют стерильные простыни и пеленки. Использованные инструменты и материал собирают в специально выделенную емкость и выносят из операционной.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором перекиси водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, боксах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа НЕРА), установок ламинированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавливают потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Палаты обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси водорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургическими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором. Персоналу выдают индивидуальные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содовым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облучателями закрытого типа. При перевязках больного врач и медицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.). В инфекционном отделении выделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной известью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После удаления выделений емкости обеззараживают при их полном погружении в дезраствор. Термометры после использования целиком погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предприятий общественного питания. Персонал сдает зачет по санитарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором перекиси водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, боксах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа НЕРА), установок ламинированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавливают потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Палаты обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси водорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургическими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором.

^ Персоналу выдают индивидуальные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содовым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облучателями закрытого типа. При перевязках больного врач и медицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.).

В инфекционном отделении выделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной известью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После удаления выделений емкости обеззараживают при их полном погружении в дезраствор. Термометры после использования целиком погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предприятий общественного питания. Персонал сдает зачет по санитарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений. Для этого предназначены баки для замачивания и кипячения посуды, моющие и дезинфицирующие средства и маркированный уборочный инвентарь. Посуду следует кипятить в течение 15 мин или в течение 30 мин замачивать в одном из растворов: 0,5 % хлорамин, 0,1 % сульфохлорантин, 1 % дихлор-1, 0,05 % дезоксон-1 с последующим мытьем. Уборочный инвентарь маркируют и используют только по назначению.

Занятие № 5. Название темы: Иммунопрофилактика. Прививки по национальному календарю. Планирование прививок, прививаемые контингенты населения, методы введения МИБП, поствакцинальные осложнения, «холодовая цепь», учет прививок.

Форма организации учебного процесса - практическое занятие

Значение темы: Иммунопрофилактика населения имеет высокое ранговое значение, а иногда единственное эффективное мероприятие для предупреждения возникновения, распространения и ликвидации очагов инфекционных заболеваний, поэтому знание средств и структуры иммунизации необходимо для организации и проведения прививок с целью создания специфической невосприимчивости к инфекционным болезням.

Цель занятия: на основании знаний значения и средств иммунопрофилактики, структуры иммунизации по национальному календарю профилактических прививок и по эпидемическим показаниям уметь организовать проведение иммунизации населения и специфической защиты медицинского персонала в чрезвычайных ситуациях.

Место проведения – учебная комната, КИЗ поликлиники.

Оснащение занятий:

^ 1.Таблицы средств иммунизации. (МИБП).

2.Схемы организации проведения прививок, показаний, противопоказаний, осложнений профилактических прививок.

^ 3.Нормативно-распорядительная документация о проведении профилактических прививок.

4.Учетная и отчетная документация.

5.Прививочные карты.

Самостоятельная работа студентов:

а).Студент должен знать:

^ 1.Значение иммунопрофилактики для предупреждения возникновения и распространения инфекционных заболеваний.

2.Национальный календарь профилактических прививок плановых и по эпидемическим показаниям.

3.Экстренную специфическую профилактику.

^ 4.Медицинские иммунобиологические препараты.

5.Работу прививочного кабинета и его оснащение.

6.Организацию прививочной работы, планирование прививок и учет прививаемых контингентов.

7.Медицинские противопоказания.

^ 8.Реакции на прививку и поствакцинальные осложнения.

9. «Холодовую цепь»

б). Студент должен уметь:

1.Составить план профилактических прививок.

2.Определить прививаемые контингенты.

^ 3.Организовать вакцинопрофилактику или пассивную иммунизацию в очаге инфекционного заболевания.

4.Проводить дифференциальную диагностику реакций па прививку и поствакцинальных осложнений.

^ 5.Провести серологический мониторинг состояния иммунитета после иммунизации.

Blog

Методическая разработка по проведению практических занятий для студентов 5, 6 курса По учебной дисциплине: «Эпидемиология»

Содержание