Классическая чума свиней. Особенности проявления и специфическая профилактика
Диссертация - Сельское хозяйство
Другие диссертации по предмету Сельское хозяйство
?е применение вакцин вполне оправдывает себя. Когда болезнь сводится к спорадическим случаям вспышек осуществляется переход к искоренению очагов методом убоя и прекращением вакцинации. Общеприняты и обоснованы меры ликвидации спорадических вспышек методом убоя (без вакцинации): они экономически более выгодны, чем систематическая вакцинопрофилактика.
Выводы (анализ данных литературы)
Господствующий в ветеринарии этиологический (причинный) подход при изучении болезни в сочетании с молекулярно-биологической методологией и генноинженерными исследованиями, существенным образом меняют наши представления о ветеринарной патологии и способах решения насущных практических задач по охране здоровья животных.
Механизмы персистентных форм инфекции тесно связаны с экологией вирусов и формированием не только антигенных вариантов, но и вариаций вирулентных свойств вирусов. Многообразие вирулентных вариантов вируса порождает многообразие клинико-эпизоотологических форм КЧС, затрудняет мониторинг и диагностику, осложняет вакцинопрофилактику и меры борьбы. Эпизоотический процесс практически не поддается нашему контролю. Даже такая радикальная мера борьбы, как уничтожение зараженных стад и санация окружающей среды, - становятся недостаточными. Эти меры необходимо дополнить сероиммунологическим и вирусологическим контролем (мониторингом) племенных ферм, репродукторов.
В связи с изложенным выше, особого внимания заслуживают иммунологические аспекты инфекции. Наши знания механизмов этой сложной гомеостатической системы поверхностны, а они играют решающую роль в патогенезе болезни, формировании экологической ниши вирусов и построении рациональной системы искоренения болезни.
Проблема создания современных инактивированных вакцин против чумы свиней не решена. Единичные работы в нашей стране и за рубежом пока не дают ориентиров технологического решения этой проблемы.
Существует два способа борьбы с КЧС: первый основан на тотальном убое свиней в неблагополучных районах, другой предусматривает частичную выбраковку и убой с проведением вакцинации оставшегося поголовья.
Меры борьбы с КЧС часто определяются эпизоотической ситуацией и социально-экономическими факторами. Положительный опыт борьбы с КЧС с помощью вакцинаций накоплен во многих странах.
Учитывая широкие экономические связи, импорт животных и продуктов их убоя из стран Ближнего и Дальнего Зарубежья, неблагополучных по КЧС, отсутствие возможности проводить оздоровление неблагополучных хозяйств по этой болезни методом тотального убоя всего поголовья, наличие резервуара ВКЧС в виде диких свиней, вакцинация еще многие годы в республике будет играть важную роль в профилактике и ликвидации КЧС.
Проблема специфической профилактики классической чумы свиней в Республике Беларусь еще не решена. Таким образом, разработка технологии изготовления вакцины против КЧС в РБ с целью импортозамещения весьма актуальный вопрос.
ГЛАВА 2. Материалы, методика и место работы
Исследования проводились в условиях отдела эпизоотологического и иммунологического мониторинга, вивария РУП "Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского"
Целью исследований является разработка технологии изготовления живой вирусвакцины против классической чумы свиней из лапинизированного штамма и освоение ее производства в условиях РУП "Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского".
1. Техника проведения опытов и основные методы исследования
Для изготовления экспериментального образца вакцины сухой живой против классической чумы свиней использовали клинически здоровых взрослых кроликов массой 2,0-2,5 кг, средней упитанности, с температурой тела в пределах 38,5-39,5оС в количестве 15 голов.
Матриксный вирус классической чумы свиней "АСВ" из коллекции микроорганизмов РУП "Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского" характеризовался отсутствием контаминации, вследствие чего считался пригодным для наработки вирусного сырья.
С целью максимального накопления вирусных частиц флакон с вируссодержащим материалом размораживали, материал центрифуговали 15 минут при 4000 об/мин. Надосадочную жидкость смешивали с фосфатно-буферным раствором, рН 7,2-7,4 в соотношении 1:2 и использовали для заражения кроликов. Указанное рабочее разведение вируса вводили внутривенно в объеме 2 мл в краевую вену уха с соблюдением правил асептики. Наблюдение за животными вели при периодическом измерении у них температуры тела: - первоначально через 30-32 часа после заражения, а затем через каждые 6 часов. При повышении температуры тела свыше 40,5С дальнейшее измерение проводили с интервалом в 3 часа. Кроликов, реагировавших гипертермией свыше 41С, в интервале 46-52 часа после заражения использовали для получения лапинизированного вируса.
Для этого от каждого животного в отдельный стерильный флакон, содержащий 1000 ЕД гепарина, отбирали пункцией сердца кровь, используя иглы Боброва с насадкой из полистиролового шланга. Операцию по тотальному обескровливанию животных проводили с использованием отдельной иглы для каждого кролика и с соблюдением правил асептики.
Кровь от всех кроликов собирали в одну емкость, смешивали, отбирали пробу в объеме 10 см3 для контроля титра вируса. Затем разливали во флаконы по 100 мл, укупоривали и помещали в морозильник при температуре минус 40С. Чер