Научные основы биотестирования с использованием инфузорий 03. 00. 23 биотехнология

Вид материалаАвтореферат

Содержание


Тест-реакция и тест-критерий
Colpoda steinii
Colpoda steinii
Paramecium caudatum
Paramecium caudatum
Воздействия на тест-систему
Colpoda steinii
Colpoda steinii
Colpoda steinii
Paramecium caudatum
Подобный материал:
1   2   3

Тест-реакция и тест-критерий

В зависимости от природы и интенсивности возмущающего воздействия реакции тест-системы могут проявиться на различных уровнях ее функционирования. Например, катионы кадмия в концентрации порядка 10-3% вызывают гибель клеток инфузорий. В концентрации на порядок ниже этот агент уже не приводит клетки к гибели, но вызывает хемотаксическую реакцию. По данным многочисленных исследователей, наблюдение более тонких реакций, таких как угнетение роста, ингибирование ферментных систем, изменение частоты конъюгации и других, позволяет регистрировать еще меньшие концентрации токсичных веществ.

Кроме чувствительности, ответные реакции тест-систем характеризуются различной скоростью проявления и легкостью наблюде­ния. Существенное значение имеет и проблема адекватности тест-реакции моделируемому процессу воздействия внешнего фактора на биологические объекты, тесно связанная с уровнем организации тест-системы и интегральностью тест-реакции.

Таким образом, одним из важных вопросов биотестирования является выбор одной из ответных реакций тест-системы в качестве тест-реакции. Он может быть решен лишь с учетом специфических особенностей задач, стоящих перед исследователем в каждом отдельном случае. Но можно сформулировать общие требования, которым должна отвечать тест-реакция. По нашему мнению, они таковы: достаточная чувствительность к изучаемому фактору; высокая экспрессность; соответствие уровня организации тест-системы уровню моделируемого процесса; интегральность; нетребовательность к специальному оборудованию; нетребовательность к квалификации персонала.

Выбор тест-критерия ряд авторов также предлагают осуществлять согласно определенным требованиям. По нашему мнению, наиболее целесообразно использовать следующие: эффек­тивность; универсальность; количественность и возможность выражения одним числом; наличие биологического смысла; простота и легкость интерпретации и вычисления; сопоставимость при получении в разные сроки наблюдения.

В наших исследованиях мы изучали две тест-реакции. Первая из них, тест-реакция гибели, была подробно исследована на модели инфузории Colpoda steinii. В качестве тест-критерия для оценки степени проявления этой тест-реакции можно регистрировать либо количество погибших особей за оп­ределенный проме­жуток времени, либо время, за ко­торое погибает определенная часть задействованных в опыте животных. Поскольку при работе с инфузориями Colpoda steinii используют весьма значительное количество клеток, а также вследствие высокой степени синхронизированности культуры этой инфузории на постцистной стадии жизненного цикла, мы применяли второй из этих тест-критериев.



1 - кривая для ЛЭ50; 2 - кривая для ЛЭ100

Рисунок 2 – Обобщенные кривые "концентрация - время"


Была исследована реакция инфузорий на мертиолат, бутанол, глутаровый альдегид, фенол, о-толуидин, фенилгидразин сульфат, 2,4-Д, гексахлоран, хлорофос, метафос, этафос, а также на неорганические соли, содержащие катионы Cd2+, Cu2+, Hg2+, Pb2+ и Zn2+. Во всех изученных случаях зависимость времени гибели клеток инфузории от концентрации вызывающего эту гибель токсичного вещества ("концентрация - время") имела характерный вид. Обобщенные кривые, описывающие этот процесс, показаны на рис. 2. Уравнение регрессии для этих кривых представляет собою степенную функцию:



где:  - время гибели некоторой доли организмов в популяции, C - концентрация токсичного вещества в растворе, A - норми­рующий коэффициент, зависящий от регистрируемой доли гибнущих организмов, b - коэффициент в показателе степени, биологический смысл которого указан ниже.

Так как тест-система в общем случае представляет собой неоднородную совокупность клеток, их гибель про­исходит не одномоментно, а с некоторым временным разбросом. Поэтому графическое описание процесса взаимодействия ток­сичного вещества с популяцией живых организмов в координатах "концентрация - время" представляет собой семейство изоэффективных кривых, описы­ваемых приведенной выше формулой, которые отличаются между собой только коэф­фициентом A. Вид полученных кривых "концентрация - время" для Colpoda steinii соот­ветствует описанному в литературе для ракообразных Daphnia mag­na, что позволяет говорить об универсальности данной зависимости для живих систем. Использование изоэффективных уровней воздействия предполагает использование такой величины, как летальная экспозиция для 50% и 100% клеток (LE50 и LE100) вместо летальной концентрации (летальной дозы) этого вещества, вызывающей гибель 50% или 100% тест-объектов в течение фиксированного промежутка времени. Анализ зависимости "концентрация - время" позволяет получить единую систему парамет­ров, характеризующих тест-систему, процесс ее взаимодействия с токсичным веществом и само исследуемое токсичное вещество. Использование этих кривых дает в ру­ки токсикологов важный инструмент для сравнения различных тест-систем по их чувствительности и однородности. Величина вре­менного разброса гибели клеток (а следовательно, и разница меж­ду нормирующими коэффициентами A1 и A2 и графиками на рис. 2) будет тем мень­ше, чем клетки ближе друг к другу генетически и по физиологи­ческому состоянию, то есть, чем однороднее тест-система. Поэтому генетическая и физиологическая однородность тест-системы, как было сказано ранее, может быть охарактеризована при помощи индекса синхронизиро­ванности - отношения нормирующих коэффициентов A2 и A1:



Токсичное вещество характеризуется уже двумя параметрами: пределом обнаружения, который показывает, в какой концентрации вещество вызывает гибель 50% клеток инфузорий в течение 3 часов:



и коэффициентом b, который определяет вероятность возникновения неблагоприятного эф­фекта при повышении концентрации токсичного вещества, иными словами, токсикологическую широту действия вещества.

Необходимо отметить, что уравнение "концентрация - время" удачно описы­вает экспериментальные данные в области больших и средних кон­цен­траций токсичных веществ. В области же малых концентраций могут наблюдаться отклонения экспериментальных данных от тео­ретической кривой. Мы склонны объяснять этот факт проявлением различных адаптационных механизмов клеток инфузорий, частично компенсирующих воздействие повреждающего фактора. Кроме того, при большом времени экспозиции (несколько часов и более) может воз­никать эффект десинхронизации культуры. Вследствие этого кри­вые, которые должны ассимптотически приближаться к оси ординат, на самом деле не пересекают некоторую вертикальную линию, за которой концентрация токсичного вещества настолько мала, что не вызывает гибели клеток.

Сравнение чувствительности к токсичным веществам тест-реакции гибели Colpoda steinii и высших животных показывает, что инфузории реагируют на концентрации на один-два порядка ниже, чем теплокровные. Об этом наглядно свидетельствуют материалы таблицы 1. В последней графе указана концен­трация токсичного вещества в экстракте исследуемого корма при соотношении экстрагента и навески пробы корма 5 : 1, полноте экс­тракции 100% и содержании токсина в пробе в количестве, приво­дящем к гибели 50% подопытных теплокровных животных, считая условно, что животное съедает в сутки количество корма, эквивалентное 10% своего веса.

Из материалов таблицы видно, что чувствительность данного тест-объекта к изученным токсичным веществам выше, чем у теплокровных животных. Таким образом, тест-реакция гибели инфузории Colpoda steinii может быть использована для анализа объектов внешней среды в области острой токсичности.

Таблица 1 – Оценка чувствительности тест-реакции гибели инфузории Colpoda steinii к токсичным веществам в сравнении с теплокровными животными

Вещество

Предел обнаружения, %

ЛД50, мг/кг ве­са тела

Содержание в экстракте, %

Cu2+

1,56.10-3

248,5

49,7.10-3

Cd2+

1,39.10-3

53,9

10,77.10-3

Hg2+

1,52.10-4

12,9

25,86.10-4

Мертиолат

4,93.10-4

75,0

150,0.10-4

2,4-Д

8,96.10-3

100,0

20,0.10-3

Этафос

1,81.10-3

250,0

50,0.10-3


Вторая тест-реакция, которую мы использовали в экспериментах, это тест-реакция хемотаксиса. В качестве тест-критерия нами было выбрано отношение показания прибора "Биотестер" в опыте к его показанию в контроле, выраженное в процентах. Данный тест-критерий характеризует относительное количество клеток инфузорий, перешедших в верхнюю фазу оптической кюветы, содержащую анализируемый образец, по сравнению с контролем.

Показано, что количество клеток инфузорий, перешедших в верхнюю фазу кюветы, содержащую токсичное вещество, за определенный промежуток времени находится в зависимости от концентрации этого вещества (зависи­мость "концентрация - эффект"). В области, в которой тест-критерий находится в пределах 10-70%, данная зависимость может быть описана уравнением прямой линии. За пределами этой области наблюдаются отклонения экспериментальных данных от линии регрессии. В качестве характеристики токсичности вещества мы выбрали концентрацию этого вещества, при которой величина тест-критерия составляет 50%.

Сопоставление чувствительности тест-реакции хемотаксиса инфузории Paramecium caudatum со стандартными характеристиками токсичных веществ (таблица 2) показывает, что данная тест-реакция может быть использована для оценки объектов окружающей среды при работе с концентрациями некоторых токсичных веществ, приближающихся к области предельно допустимых концентраций.

Таблица 2 – Оценка чувствительности тест-реакции хемотаксиса инфузории Paramecium caudatum к токсичным веществам в сравнении с гигиеническими параметрами

Токсичное

вещество

Cd2+

Cu2+

Zn2+

Фенол

ПДК, %

6,0.10-7

2,6.10-6

4,8.10-5

1,0.10-7

C50, %

8,0.10-5

6,6.10-5

8,3.10-5

7,1.10-3


В процессе экспериментов обе тест-реакции показали постоянные уровни чувствительности к изученным токсичным веществам, высокую экспрессность, информативность и удобство в использовании, что дает основания к рекомендации их для практического применения.


Воздействия на тест-систему

В общем случае ответные реакции формируются в тест-системе, как результат целого комплекса внешних воздействий. Основным из них, интересующим исследователя в первую очередь, является фактор исследуемого образца. Как правило, практические работники имеют дело с комплексным загрязнением исследуемых объектов окружающей среды. И ценность биотестирования во многом обусловлена возможностью проводить оценку интегральной токсичности объекта исследования. Однако проблема действия смесей токсичных веществ на живые организмы и, в частности, на инфузорий все еще остается недостаточно изученной. Поэтому важной частью нашей работы явилось исследование комбинированного воздействия различных токсичных веществ на используемые тест-системы. Были изучены бинарные смеси веществ с единым предполагаемым механизмом действия (катионы кадмия - катионы цинка, катионы кадмия - катионы меди) и смеси соединений, относящихся к различным группам токсичных веществ (катионы кадмия в сочетании с 2,4-Д, метафосом, фенолом, а также глутаровым альдегидом). В каждой серии опытов одно из двух веществ пребывало в постоянной концентрации и служило фоном, а концентрацию второго вещества мы меняли в некоторых пределах. Кривые “концентрация - время”, построенные по материалам исследований, позволили провести оценку характера комбинированного воздействия изученных бинарных смесей.

При этом удалось выявить два различных характера взаимовлияния токсичных веществ при их взаимодействии с тест-системой. Аддитивный тип взаимовлияния веществ наиболее ярко может быть продемонстрирован на примере раствора, содержащего катионы цинка и кадмия (рис. 3), а также катионы меди и кадмия. Токсический эффект, вызываемый смесью, складывается из токсических эффектов, вызываемых каждым компонентом такой смеси при их изолированном воздействии.



Фоновая концентрация катионов цинка: 1 - 0%; 2 - 0,8.10-3%; 3 - 1,25.10-3%;

4 - 1,7.10-3%.

Рисунок 3 – Комбинированное влияние катионов кадмия и цинка

на клетки Colpoda steinii


Происходит это, вероятно, по причине того, что механизм действия этих веществ на тест-систему един. При изменении концентрации фонового компонента кривая “концентрация - время” смещается вдоль оси абсцисс на величину, пропорциональную данному изменению (рисунок 4). При низких концентрациях фонового компонента данный процесс может быть описан формулой:



где: А - нормирующий коэффициент, b - коэффициент, определяющий токсикологическую широту действия основного компонента смеси, С1 - молярная концентрация основного компонента смеси, С2 - молярная концентрация фонового компонента смеси, Спр1 - предел обнаружения основного компонента смеси [моль/л], Спр2 - предел обнаружения фонового компонента смеси [моль/л].



1 - кривая “концентрация - время” при отсутствии Zn2+;

2 – кривая “концентрация - время” при фоновой концентрации Zn2+ 0,8.10-3%;

1` - отображение профиля кривой 1, иллюстрирующее аддитивный характер

взаимодействия катионов двух металлов

Рисунок 4 – Характер комбинированного воздействия катионов Cd2+ и Zn2+


При повышении концентрации фонового компонента до величин, близких к пределу обнаружения, эффект действия смеси был несколько ниже суммы эффектов влияния компонентов при их изолированном применении, что говорит об отклонении характера действия смеси катионов тяжелых металлов от аддитивности в сторону антагонизма. При этом изменялась токсикологическая широта действия смеси, что сопровождалось изменением абсолютного значения коэффициента “b” в показателе степени уравнения. По нашему мнению, это обусловлено повышением вклада фонового компонента в суммарный эффект действия смеси, а также конкуренцией катионов тяжелых металлов, возникающей в процессе их взаимодействия с молекулами-мишенями.

Характер взаимовлияния токсичных компонентов близкий к аддитивному был выявлен также при исследовании смесей метафоса с катионами кадмия, а также фенола с катионами кадмия. Токсикологическая широта действия смеси метафоса и катионов кадмия при введении метафоса, как фонового компонента, расширялась. О смеси фенола и катионов кадмия подобного заключения сделать не удалось ввиду того, что кривые “концентрация - эффект” при комбинированном действии этих двух веществ не соответствуют виду степенной функции.

Антагонистический тип взаимовлияния токсичных компонентов смеси был выявлен при исследовании смесей 2,4-Д с катионами кадмия, а также глутарового альдегида с катионами кадмия. Хотя результат действия смесей этих веществ и превышал эффекты от их изолированного влияния, он был меньше суммы этих эффектов. При этом токсикологическая широта действия смеси при изменении соотношения ее компонентов либо не изменялась, как в случае с 2,4-Д и катионами кадмия, либо уменьшалась (смесь глутарового альдегида и катионов кадмия).

Помимо токсичных соединений, присутствующих в исследуемом образце изначально, в процессе постановки биологического теста могут участвовать и иные вещества, так как хотя одни объекты окружающей среды, такие как природные и сточные воды, удается исследовать непосредственно, другие предварительно приходится переводить в действующую форму, которая может представлять собой экстракт, эмульсию либо суспензию. В связи с использованием в этих целях органических растворителей и ПАВ встает вопрос об их воздействии на тест-систему. Нами была изучена чувствительность инфузорий к органическим растворителям - этанолу, ацетону, ДМСО и поверхностно-активным веществам - твину-80, тритону Х-305, додецилсульфату натрия, неонолу П-6 и неонолу П-9-12. Полученные данные позволяют говорить о том, что для суспензирования не растворимых в воде токсичных веществ целесообразно применять этанол, ДМСО, ацетон, тритон X-305 и твин-80, так как эти вещества не обладают высокой токсичностью по отношению к инфузориям. Токсическое действие ДСН и поверхностно-активных веществ группы неонолов, напротив, ярко выражено. Но при использовании указанных растворителей и ПАВ для подготовки действующих форм необходимо учитывать их влияние на чувствительность тест-систем к токсичным веществам.


Таблица 3 – Комбинированное действие органических растворителей и токсичных веществ ( Colpoda steinii, тест-реакция гибели)

Растворитель

Токсичное вещество


Наимен.


Конц-ия, %

Cd2+

Спр, %;

b

Cu2+

Спр, %;

b

Zn2+

Спр, %;

b

фенол

Спр, %;

b

-

-

1,39.10-3;

-3,24

1,56.10-3;

-2,79

2,05.10-3;

-1,79

38,5.10-3;

-1,90


ДМСО

2,5.10-3

0,65.10-3;

-2,26

1,28.10-3;

-2,49

1,09.10-3;

-1,64

30,3.10-3;

-1,89




50.10-3

0,49.10-3;

-2,15

1,19.10-3;

-2,47

0,95.10-3;

-1,59

28,0.10-3;

-1,88


ацетон

0,5

0,45.10-3;

-1,85

1,07.10-3;

-2,37

0,65.10-3;

-1,53

36,7.10-3;

-1,90




2,5

0,32.10-3;

-1,67

1,05.10-3;

-2,36

0,48.10-3;

-1,45

35,1.10-3;

-1,90




0,96

-

1,34.10-3;

-2,79

-

-

этанол

1,90

0,58.10-3;

-1,78

-

0,93.10-3;

-1,61

26,9.10-3;

-1,92




3,20

0,51.10-3;

-1,73

-

-

24,2.10-3;

-1,91


Нами изучены комбинации растворов, содержащих фенол и катионы тяжелых металлов (кадмия, меди и цинка) в сочетании с ДМСО, ацетоном, этанолом, твином-80, ДСН и тритоном Х-305, использованными в качестве фонового компонента в концентрациях, которые при изолированном действии не вызывали заметного эффекта. Для каждой пары веществ были построены серии кривых “концентрация - время”, по этим кривым была проведена оценка характера комбинированного воздействия веществ. Во всех изученных сочетаниях токсичных веществ с органическими растворителями наблюдался эффект потенцирования, то есть эффект действия смеси значительно превышал сумму эффектов ее компонентов при их изолированном воздействии. При этом предел обнаружения токсичного вещества снижался в 1,5 - 4 раза. Токсикологическая широта действия при добавлении органического растворителя повышалась лишь у катионов тяжелых металлов, а у фенола статистически достоверных изменений не претерпевала (таблица 3).


Таблица 4 – Комбинированное действие ПАВ и токсичных веществ ( Colpoda steinii, тест-реакция гибели)

ПАВ

Токсичное вещество


Наимен.


Конц-ия, %

Cd2+

Спр, %;

b

Zn2+

Спр, %;

b

фенол

Спр, %;

b

-

-

1,39.10-3;

-3,24

2,05.10-3;

-1,79

38,5.10-3;

-1,90

Твин-80

2.10-3

0,45.10-3;

-1,57

0,57.10-3;

-1,43

18,3.10-3;

-1,91




20.10-3

0,28.10-3;

-1,54

-

-




0,2.10-3

1,06.10-3;

-3,23

-

-

ДСН

2.10-3

0,56.10-3;

-3,19

0,55.10-3;

-1,45

25,8.10-3;

-1,88




20.10-3

-

-

18,0.10-3;

-1,89

Тритон X-305

2.10-3

1,11.10-3;

-3,23

0,59.10-3;

-1,45

19,7.10-3;

-1,65




20.10-3

0,99.10-3;

-3,24

0,41.10-3;

-1,41

17,7.10-3;

-1,63


Влияние поверхностно-активных веществ было во многом подобно действию органических растворителей. Во всех изученных смесях наблюдали эффект потенцирования. При этом предел обраружения изученных токсичных веществ снижался в 2-5 раз. Однако токсикологическая широта действия изменялась не во всех случаях. Так, тритон X-305 и додецилсульфат натрия не снижали коэффициент “b” для катионов кадмия, а твин-80 и додецилсульфат натрия не снижали этот коэффициент для фенола (таблица 4).

Влияние органических растворителей и поверхностно-активных веществ на чувствительность хемотаксической реакции инфузорий к изученным токсичным веществам также оказалось ярко выраженным.


Таблица 5 – Комбинированное действие органических растворителей, ПАВ и токсичных веществ ( Paramecium caudatum, тест-реакция хемотаксиса)

Растворитель

Токсичное вещество

Наимен.

Конц-ия, %

Cd2+

C50, %

Cu2+

C50, %

Zn2+

C50, %

фенол

C50, %

-

-

8,0.10-5

6,6.10-5

8,3.10-5

7,1.10-3

Твин-80

0,1

-

-

-

1,8.10-3




1,0

1,8.10-5

2,8.10-5

6,8.10-5

-

ДСН

0,001

5,5.10-5

5,5.10-5

5,8.10-5

6,2.10-3




0,002

2,2.10-5

1,0.10-5

3,8.10-5

2,7.10-3

ДМСО

0,01

3,4.10-5

6,1.10-5

5,1.10-5

6,9.10-3




0,1

-

4,3.10-5

3,0.10-5

4,3.10-3


Так, в присутствии твина-80, додецилсульфата натрия или ДМСО концентрация изученных токсичных веществ, которая создавала уровень относительной токсичности равный 50% (C50), снижалась в 2-6 раз (таблица 5), при этом чувствительность тест-реакции возрастала настолько, что вплотную приближалась к показателям ПДК катионов цинка и меди.

Исходя из вышеизложенного можно заключить, что токсичность при комбинированном воздействии нескольких различных веществ в общем случае не является аддитивной величиной. Некоторые токсичные вещества способны снижать эффект воздействия в сочетании с другими веществами, а иные, не являясь сами по себе токсичными, могут увеличивать токсический эффект действия токсикантов. По этой причине мы полагаем, что термин "суммарная токсичность", часто используемый в литературе, не адекватно отражает описываемое явление. Более правильно применять термин "интегральная токсичность". Кроме того, результаты экспериментов говорят о том, что только методы биотестирования могут дать адекватное представление о воздействии смесей различных химических веществ на живые системы.

Изучение влияния органических растворителей и ПАВ на чувствительность тест-систем к токсичным веществам имеет и другой важный аспект. Практическое использование биологических тестов часто ставит перед исследователями задачу целенаправленного искусственного изменения порога реагирования тест-системы на внешние воздействия. Для этого могут быть использованы так называемые физиологические (функциональные) нагрузки. Их роль заключается в искусственном изменении состояния тест-системы путем того или иного стрессового воздействия. Механизмы подобных воздействий на живую клетку могут быть достаточно разнообразными. В одних случаях клетка вынуждена компенсировать влияние нагрузки путем перестройки метаболизма и расходовать на это часть своих внутренних ресурсов. При этом снижаются возможности клетки для противодействия влиянию исследуемого токсичного вещества и, соответственно, увеличивается чувствительность к нему. Другие факторы, изменяя транспортные возможности поверхностных структур клетки, облегчают проникновение токсичных веществ в цитоплазму, тем самым усиливая их влияние на клетку. В числе последних факторов особый интерес вызывают органические растворители и ПАВ.

В качестве характеристики влияния вещества, выбранного в качестве функциональной нагрузки, мы использовали коэффициенты потенцирования, которые представляют собой отношения пределов обнаружения токсичного вещества при изолированном действии и в присутствии фонового компонента:



где: Kd и Kt - коэффициенты потенцирования для тест-реакций гибели и хемотаксиса соответственно, Cпр и Cпр.к - пределы обнаружения вещества по тест-реакции гибели при изолированном действии и в присутствии фонового компонента, C50 и C50к - пределы обнаружения вещества по тест-реакции хемотаксиса при изолированном действии и в присутствии фонового компонента.


Таблица 6 – Коэффициенты потенцирования при комбинированном действии ПАВ и органических растворителей с токсичными веществами на тест-системы

ПАВ или

Конц-ия,

Токсичное вещество

растворитель

%

Cd2+

Cu2+

Zn2+

фенол







Kd (вне скобок) и Kt (в скобках)




2,5.10-3

2,1

1,2

1,9

1,3

ДМСО

10.10-3

(2,4)

(1,1)

(1,6)

(1,0)




50.10-3

2,8

1,3

2,2

1,4




100.10-3

-

(1,5)

(2,8)

(1,7)

Ацетон

0,5

3,1

1,5

3,2

1,1




2,5

4,3

1,5

4,3

1,1




0,96

-

1,2

-

-

Этанол

1,90

2,4

-

2,2

1,4




3,20

2,7

-

-

1,6




2.10-3

3,1

-

3,6

2,1

Твин-80

20.10-3

5,0

-

-

-




100.10-3

-

-

-

(3,9)




1,0

(4,4)

(2,4)

(1,2)

-




0,2.10-3

1,3

-

-

-

ДСН

1.10-3

(1,5)

(1,2)

(1,4)

(1,2)




2.10-3

2,5 (3,6)

(6,6)

3,7 (2,2)

1,5 (2,6)




20.10-3

-

-

-

2,1

Тритон X-305

2.10-3

1,3

-

3,5

2,0




20.10-3

1,4

-

5,0

2,2


Из представленных в таблице 6 данных можно заключить, что тест-система поддается внешнему целенаправленному регулированию. Порог ее чувствительности ко внешним воздействиям может быть искусственно изменен путем применения функциональной нагрузки. Для повышения чувствительности тест-реакции гибели клеток наиболее целесообразно использовать диметилсульфоксид в концентрации 50.10-3%, а из поверхностно-активных веществ - твин-80 в концентрациях от 2.10-3% до 20.10-3%. Для повышения чувствительности тест-реакции хемотаксиса более эффективным оказался додецилсульфат натрия в концентрации от 1.10-3% до 2.10-3%.

Третью группу внешних воздействий на тест-систему составляют "шумовые" факторы. Как правило, их воздействие обусловлено теми манипуляциями, которые производят с тест-системой в процессе осуществления ее контакта с исследуемым образцом. К ним относятся колебания температуры, изменения кислотности среды, осмотические воздействия и так называемый "ударный" эффект. Воздействие этих факторов на тест-систему обычно не приводит к значительному искажению результатов, однако определенный вклад в погрешность при определении тест-критерия они вносят. Поэтому, хотя эти факторы не всегда удается учитывать и устранять в процессе постановки биологического теста, следует принимать меры для их минимизации.

Разработка теоретической концепции биотестирования как метода научного исследования дала нам возможность перейти к ее практическому воплощению.