Разработка технологии дрожжевых обогатителей пищи на базе молочной сыворотки и растительного сырья

Вид материалаАвтореферат
2.2.3.1. Подбор и оптимизация состава питательных сред для культивирования дрожжей в условиях ГФ
2.2.4. Определение состава и биологической ценности ДО
2.2.5. Химический и микробиологический анализ ДО
2.2.6. Определение оптимальных параметров культивирования дрожжей в условиях ферментера
Подобный материал:
1   2   3   4   5


*получен после экстракции витамина Е из пшеничных хлопьев

Результаты опытов по наращиванию биомассы дрожжей на различных твердых растительных субстратах и их композициях, увлажненных молочной сывороткой до 50-55%-й влажности показали (см. табл. 3), что оптимальными для этой цели являются сочетания твердого носителя с пористым разрыхляющим компонентом (вариант 21 и 22 в табл. 3), или же рыхлого формообразующего носителя с дополнительным источником легкодоступных ростовых веществ в соотношении 1:1 (варианты № 7, 11 в табл. 3). Наиболее продуктивным в условиях ТФФ показал себя штамм C. inconspicua А3.

2.2.3. Накопление дрожжевой биомассы в условиях ГФ

Естественной формой существования микроорганизмов в природе является иммобилизованное состояние [Costertton J.W. et al., 1995], поэтому для повышения выхода биомассы было предложено вносить в молочную сыворотку различные твердые растительные субстраты.

Жидкие гетерогенные среды, использованные нами в работе, условно можно разделить на 2 группы: с пористым компонентом и с крупами. Оптимальные значения рН для каждой дрожжевой культуры при развитии на средах данного типа оказались такими же, как и в случае ТФФ. Данные о влиянии содержания твердого пористого компонента на накопление клеток дрожжами суммированы в табл.4.


Таблица 4

Влияние введения твердого растительного компонента в питательную среду на основе кислой молочной сыворотки на накопление клеток дрожжами

Субстрат

СВ*, %

Дрожжи

Candida inconspicua

Debaryo-myces sp

Pichia sp

Torula sp

Candida famata

1

2

3

4

5

6

7

6 (контроль)

0,440

ед клетки

0,640

0,390

ед клетки

Отруби

7

0,500

ед клетки

0,700

0,500

ед клетки

8

0,800

0,350

0,740

0,500

0,200

9

1,060

0,370

0,790

0,500

0,200

10

1,200

0,420

0,800

0,520

0,460

11

1,470

0,500

0,800

0,680

0,750

12

1,500

0,520

0,890

0,700

1,110

13

1,530

0,580

0,940

0,740

1,350

14

1,300

0,300

0,380

0,500

ед клетки

Солодовые ростки

7

0,450

ед клетки

0,650

0,400

ед клетки

8

0,570

0,050

0,680

0,400

0,130

9

0,600

0,090

0,670

0,420

0,280

10

0,600

0,130

0,690

0,420

0,510

11

0,620

0,200

0,700

0,450

0,700

12

0,700

0,230

0,720

0,480

0,730

13

0,750

0,480

0,850

0,600

1,100

14

0,700

ед клетки

0,800

0,530

0,980

Продолжение таблицы 4

1

2

3

4

5

6

7

Соломенная мука

7

0,460

ед клетки

0,680

0,400

ед клетки

8

0,460

0,020

0,700

0,400

0,290

9

0,500

0,090

0,710

0,420

0,330

10

0,510

0,100

0,740

0,420

0,540

11

0,500

0,110

0,740

0,470

0,800

12

0,570

0,170

0,740

0,480

0,900

13

0,600

0,200

0,760

0,520

0,960

14

0,350

ед клетки

0,520

0,400

0,500


Пшеничный шрот


7

0,560

ед клетки

0,650

0,430

0,200

8

0,620

0,120

0,700

0,480

0,250

9

0,740

0,200

0,720

0,500

0,750

10

0,760

0,290

0,800

0,500

0,750

11

0,800

0,300

0,800

0,520

0,820

12

0,930

0,350

0,850

0,600

0,930

13

1,250

0,400

0,900

0,670

1,200

14

0,690

0,300

0,760

0,500

0,830

* сумма сухих веществ питательной среды, из которых 6% - СВ сыворотки, а остальные – СВ твердого растительного компонента.

Как видно из таблицы 4, выход дрожжевой биомассы увеличивается при увеличении содержания СВ в среде и достигает максимума при содержании СВ 13% (продуктивность возрастает по сравнению с контролем в среднем в 2 - 4 раза в зависимости от штамма), притом наибольшее количество клеток дрожжи накапливают при внесении в среду отрубей и пшеничного шрота. Как и в случае с ТФФ, наиболее продуктивным оказался штамм C. inconspicua А3.

Для обеззараживания питательных сред на основе молочной сыворотки и круп в результате проведенных исследований была выбрана пастеризация при 600С в течение 60 мин: подобная предобработка значительно снижает степень обсемененности посторонней микрофлорой и сравнительно малоэнергоемка (табл. 5).

Таблица 5

Влияние режима обработки питательной среды на основе молочной сыворотки и перловой крупы (25%СВ) на накопление клеток дрожжами Candida inconspicua

Режим обработки

Сте­пень набу­хания*

КМАФАнМ, КОЕ/см3

РВ %

Крахмал %

Продук­тивность, млрд кл/см3

КМАФАнМ, КОЕ/см3

По факту

СанПиН 2.3.2.1078-01

По факту

СанПиН 2.3.2.1078-01

Пастери­зация

0,43

1·103

не более 105

3,0

2,7

1,200

2,3·103

не более 105

Стерили­зация

0,80

-

8,9

8,1

0,100

-

Заварива­ние

0,67

104

5,1

4,6

0,570

1,5·105

*отношение фактически впитанной влаги к максимально возможной

Культивирование дрожжей C. inconspicua А3 на гетерогенных средах, содержащих молочную сыворотку и различные крупы, показало, что увеличение содержания СВ до 14% за счет добавления круп не стимулирует рост дрожжей. Возрастание продуктивности наблюдается при суммарном содержании СВ 15% и достигает максимума при 33%. На среде с перловой крупой дрожжи накапливают несколько больше клеток, чем с пшеничной (1,800 и 1,700 млрд кл/см3 соответственно), и на 20% больше, чем на среде с 13% СВ при добавлении отрубей (1,530 млрд кл/см3).

Одним из важнейших показателей пищевой ценности продукта является содержание белка. Поэтому определяли влияние внесения перловой крупы в питательную среду на основе молочной сыворотки на накопление клеток дрожжами C. inconspicua А3 и содержание белка в жидкой фазе (см. рис. 2).




Рис. 2. Влияние внесения перловой крупы в питательную среду на основе молочной сыворотки на накопление клеток дрожжами C. inconspicua А3 и содержание белка в жидкой фазе.


Как видно из рис.2, содержание белка возрастает с увеличением количества дрожжевых клеток. Максимум накопления биомассы (1,860 млрд/см3) и наибольшее

содержание белка (77,53 мг/см3) наблюдается при содержании в среде 33% СВ. При этом содержание белка возрастает по сравнению с начальным более чем в 3 раза.

Следует отметить общую для всех вариантов гетерогенных сред на основе молочной сыворотки тенденцию снижения продуктивности дрожжей при достижении определенного содержания СВ в среде за счет введения твердого компонента: для пористых компонентов это 14%СВ, а для круп – 38%СВ.

Полученные данные (табл. 4, рис.2) полностью подтверждают высказанное выше предположение о стимулирующем влиянии твердых частиц на накопление биомассы (клеток) культурами дрожжей. Такой эффект, по-видимому, может быть в равной степени обусловлен как поступлением дополнительных питательных веществ из твердых субстратов, так и непосредственно иммобилизованным состоянием клеток. Таким образом, для культивирования дрожжей в условиях ГФ на молочной сыворотке представляется целесообразным внесение пористых растительных компонентов (отруби, пшеничный шрот) в количестве 13% СВ или круп в количестве 33% СВ.

2.2.3.1. Подбор и оптимизация состава питательных сред для культивирования дрожжей в условиях ГФ

Для того, чтобы полученная на молочной сыворотке дрожжевая биомасса по своему составу приближалась к молочному белку, в сыворотку вносят минеральные соли: сернокислый аммоний, двузамещенный фосфорнокислый калий, хлористый калий и мочевину [Храмцов А.Г., Нестеренко П.Г., 2004]. Внесение в среду 1,4-1,8 г/дм3 (NH4)2SO4 и 0,6 – 1,0 г/дм3 КН2РО4, в зависимости от штамма позволило увеличить содержание белка на 8-12%, а продуктивность – на 10-13%. Для штамма Candida inconspicua удалось повысить содержание белка до 86,87 мг/см3 и содержание клеток до 2,150 млрд/см3 путем внесения 1,8 г/дм3 сульфата аммония и 1,0 г/дм3 двузамещенного фосфорнокислого калия.

Подбор состава питательных сред (рН, концентрация солей и %СВ) выполнялся с достаточно большим шагом в исследуемом параметре, поэтому мы провели оптимизацию состава питательных сред с помощью метода аддитивно-решетчатого описания объекта. Оптимизация заключалась в выборе уровней каждого фактора, обеспечивающих наибольший эффект. Полученный в результате реализации этого метода состав питательных сред представлен в табл. 6.

Таблица 6

Оптимальный состав питательных сред для культивирования дрожжей в условиях ГФ, полученный реализацией метода аддитивно-решетчатого описания эксперимента

Дрожжи

Концен­трация круп, % CB

рН молоч­ной сыво­ротки

Концен­трация (NH4)2SO4, г/дм3

Концентрация КН2РО4, г/дм3

Сandida inconspicua

31

4,5

1,6

1,0

Debaryomyces sp

31

4,5

1,8

0,8

Pichia sp

31

5,5

1,2

0,8

Torula sp

33

4,5

1,6

0,8

Candida famata

33

5,5

1,2

1,0

2.2.4. Определение состава и биологической ценности ДО

Важными показателями биологической ценности пищевых продуктов и различных БАД являются содержание белка, витаминов, пищевых волокон и др. БАВ. Критерием биологической ценности белка является его аминокислотный состав, особенно содержание тех аминокислот, которые находятся в нем в наименьшем количестве. В табл. 7 приведен состав молочной сыворотки и полученного на оптимизированной питательной среде дрожжевого обогатителя пищи на базе молочной сыворотки и перловой крупы с использованием штамма дрожжей C. inconspicua А3, а на рисунке 3 – аминокислотный состав исходной молочной сыворотки и ДО на ее основе.

Таблица 7

Состав молочной сыворотки и ДО на основе молочной сыворотки и перловой крупы

№ п/п

Показатель

Значение

Молочная сыворотка

ДО

1

Титр дрожжевых клеток, 109 кл/см3

-

2,15

2

Титруемая кислотность, 0Т

60

89

3

Лактоза, г/100 см3

3,5

1,05

4

Глюкоза, мг/100 см3

70

-

5

Галактоза, мг/100 см3

63

-

6

Сахароза, мг/100 см3

200

-

7

Белок, г/100 см3

0,88

8,7

8

Витамины, мкг%: В2

В6

РР

6,64

2,87

0,84

23,68

36,25

390,6

9

Этиловый спирт, г/100 см3

-

0,92




*- незаменимые аминокислоты

Рис. 3. Аминокислотный состав молочной сыворотки и ДО на основе молочной сыворотки и перловой крупы

Из рисунка 3 видно, что в процессе ферментации молочной сыворотки дрожжами Сandida inconspicua происходит увеличение содержания эссенциальных аминокислот. По метионину оно составляет 50%, по валину, лизину и фенилаланину – 40%, а по треонину, изолейцину и лейцину – немногим более 30%. Количество серусодержащих аминокислот (цистин, метионин) невелико в опытном образце, а цистин полностью отсутствует в контрольном. Ароматические аминокислоты представлены тирозином и фенилаланином, причем тирозин отсутствует в исходной молочной сыворотке. Содержание таких аминокислот как серин, пролин, глутаминовая и аспарагиновая кислоты увеличилось в опытном образце по сравнению с контролем в среднем на 42%. Содержание аланина и аргинина возросло на 75 и 83,3 % соответственно, содержание аргинина и глицина – вдвое.

Следует отметить, что по процентному соотношению аминокислот белок полученного ДО мало отличается от исходного сывороточного белка, то есть качественный состав белка ДО близок к сывороточному белку, который является наиболее ценным по скору незаменимых аминокислот

На основании полученных результатов (табл. 7 и рис. 3) можно сделать вывод, что полученный ДО обладает свойствами, позволяющими придавать продуктам свойства лечебно-профилактических и диетических продуктов за счет белка, сбалансированного по аминокислотному составу, и высокого содержания витаминов группы В и РР.

2.2.5. Химический и микробиологический анализ ДО

Действующая нормативная документация предъявляет к молочной сыворотке и ее производным определенные требования по безопасности для потребителя [СанПиН 2.3.2.1078-01, ГОСТ 30178-96, ГОСТ 26927-86, ГОСТ Р 51301-99].

Результаты анализов (табл. 8) и проведенные исследования острой токсичности, показавшие, что ДО относится к классу нетоксичных веществ, свидетельствуют о соответствии полученных ДО требованиям нормативно-технической документации. Таблица 8

Химические и микробиологические показатели полученного ДО

Наименование

Фактическое значение

Единица измерения

Норматив

Токсичные элементы: ртуть

мышьяк

кадмий

свинец

не обнаружен

0,007

не обнаружен

0,03

мг/л

не более 0,005

не более 0,05

не более 0,03

не более 0,1

Пестициды: ГХЦ

ДДТ

не обнаружен

не обнаружен

мг/л

не более 0,05

не более 0,05

Радионуклиды: Cs-137

Sr-90

0,3

0

Бк/кг

не более 100

не более 25

КМАФАнМ

2,3*103

КОЕ/см3

не более 2*105

БГКП

не обнаружено

КОЕ/см3

не доп. в 0,01 см3

2.2.6. Определение оптимальных параметров культивирования дрожжей в условиях ферментера

С целью масштабирования результатов, полученных в лабораторных условиях, а также для оценки влияния ряда факторов, таких как обеспеченность культуры кислородом, избыточное давление и регулирование активной кислотности среды на развитие дрожжевой культуры в условиях исследовательской лаборатории ОАО «Вимм-Билль-Данн» были проведены ферментации C. inconspicua А3 в ферментере объемом 40 дм3 с коэффициентом заполнения 0,5 при различных вариантах параметров культивирования (рис. 4). Полученные данные свидетельствуют, что наибольшая продуктивность в накоплении биомассы достигается при наилучшем обеспечении культуры кислородом за счет активного барботирования потоком воздуха (2 дм3/миндм3) и повышенном избыточном давлении (40 кПа), а эффективная стабилизация обсемененности остаточной бактериальной микрофлорой наблюдается при условиях, аналогичных выращиванию в колбах на качалке; при этом рН-статирование не обеспечивает дополнительного увеличения продуктивности дрожжей и стабилизации бактериальной обсемененности.