Ученый без трудов это дерево без плодов вопросы этиопатогенеза

Вид материалаДокументы
Подобный материал:
1   ...   4   5   6   7   8   9   10   11   ...   47
§4. Эмбриогенез нервной системы. Организм человека является уникальной мозаикой клеточных линий, возникших из оплодотворенной яйцеклетки. Это “семейство” 250-300 типов дифференцированных соматических клеток. Любой многоклеточный организм есть устойчивое “государство” клонов специализированных соматических клеток и их региональных клеток-предшественников. Внутри каждого клона дифференцированных клеток существует значительная морфологическая, биохимическая и функциональная гетерогенность, обусловленная гибкой адаптацией клеток к микроокружению. Каждый орган содержит мозаику дифференцированных клонов, которые составляют 98-99% клеток органа (В.С.Репин, Г.Т.Сухих, 1998). К моменту рождения организм человека состоит из 2 на 10 в 12-й степени клеток, а к периоду зрелости – из 6 на 10 в 13-й степени (“Человек”, 1977). Увеличение по количеству клеток соответственно линейным размерам менее внушительно, причем относительная скорость роста особенно велика во внутриутробном периоде (от состояния абсолютного индивида – одной клетки – до рождения организм возрастает более чем в триллион раз, от рождения до зрелости – в 30 раз).

Взгляд на организм как на конфедерацию сбалансированных клеточных линий, находящихся в непрерывном обновлении, получил решающие доказательства в феноменах эмбрионального развития, в организации и функционировании иммунной, кроветворной, нервной, эндокринной, мышечной и других систем.

Эмбриогенез человека и млекопитающих отличается от стационарных клеточных систем взрослых особей несколькими важнейшими правилами (В.С.Репин, Г.Т.Сухих, 1998). Во-первых, клеточный состав зародышей кардинально изменяется на разных этапах развития. На смену провизорным закладкам и органам, выполняющим промежуточные функции, приходят дефинитивные органы. Замена клеточных клонов в органах является одним из условий развития. Во-вторых, эмбриогенез осуществляется путем интенсивной миграции клеток и клеточных пластов из данного региона зародыша в другой. Такой, по образному выражению В.С.Репина и Г.Т.Сухих (1998), “гигабайтный обмен информацией, упакованной в поток мигрирующих клеток”, невозможен у взрослых особей, где клеточный состав каждого органа тщательно гомеостазируется, и только клеткам иммунной системы позволены обратимые “путешествия” из кровотока в ткани. Авторы сравнивают каждую клетку с миниатюрным компактным биодиском. В развивающемся зародыше миграция стволовых клеток с последующей интеграцией в ткани становится важнейшим правилом морфогенеза. В-третьих, отсутствие или слабая экспрессия главных комплексов гистосовместимости на поверхности эмбриональных клеток выводит этот внутриутробный обмен клетками из-под контроля иммунной системы. В-четвертых, многие процессы химической автоматики, включая регенерацию, осуществляются путем рекапитуляции эмбриогенеза с помощью миграции, направленного транспорта эмбриональных стволовых клеток из одних клеточных пространств в другие с целью колонизации и освоения новых территорий. Именно движущие силы эмбриогенеза, пишут авторы далее, необходимо понять и использовать для коррекции заболеваний человека, которые возникают на основе дефектов образования и миграции клеточных клонов.

Изучение эмбриогенеза человека и млекопитающих показывает, что каждый орган развивается из разных стволовых компартментов и клеток-предшественников, мигрирующих по строгим правилам в орган и создающих уникальные ансамбли клеточных линий на основе специализированных межклеточных узнаваний. Этот принцип сборки органов и тканей в эмбриогенезе является общим правилом.

В последние годы обнаружена связь HLA-системы со многими болезнями, в том числе и ДЦП. На возможность участия иммуногенетических факторов в развитии ДЦП указывает ряд моментов (Б.Л.Жизневский, 1994; др.). Во-первых, начало заболевания преимущественно в пренатальном периоде, когда взаимоотношения в системе мать-плод во многом определяются HLA-комплексом. Во-вторых, одним из механизмов поражения мозга плода при воздействии острой или хронической инфекции во время беременности является сенсибилизация иммунной системы продуктами распада нервных клеток, запускающая аутоиммунные реакции, которые и приводят к дистрофическим изменениям в нервной системе.

Б.Л.Жизневским (1994) проведено клинико-иммуногенетическое исследование 217 детей от 8 мес. до 15-ти лет (116 мальчиков и 101 девочка; недоношенных – 86, доношенных – 131), страдающих ДЦП в форме спастической диплегии, и 51 семьи с одним больным ДЦП ребенком. У всех больных и у 51-й родительской семьи было проведено HLA-типирование антигенов I класса. Распределение антигенов комплекса HLA у этих детей по всем изучаемым локусам не отличалось от контрольной группы.

Проведено сравнение группы больных ДЦП, имеющих в фенотипе антигены HLA-A3, B7 (25 детей), с больными, у которых определялись антигены HLA-A1, B8 (23 ребенка). Выбор этих антигенов обусловлен гипотезой, согласно которой с гаплотипом HLA-A1, B8, DR3 ассоциирована гиперчувствительность к различным антигенам, а с гаплотипом HLA-A3, B7, DR2 – связанная с изменением активности субпопуляций T- и B-клеток пониженная иммунологическая реактивность. Оказалось, что принадлежность к одному из этих фенотипов опосредованно определяет на течение ДЦП, так как доля больных с частыми интеркуррентными заболеваниями была достаточно выше среди носителей фенотипа HLA-A3, B7, чем среди носителей фенотипа HLA-A1, B8 (соответственно, 32% и 8,7%). По мнению этого автора, опосредованное влияние HLA-фенотипа в данном случае заключается в том, что частые интеркуррентные заболевания нередко приводят к обострению неврологической симптоматики у больных ДЦП, и это ухудшает состояние больных.

В результате проведенного семейного исследования не было выявлено увеличения сходства HLA-фенотипов супружеских пар, имеющих детей с ДЦП в сравнении с теоретически ожидаемым числом “совместимых” пар. Также не было увеличено число “гомозигот” по антигенам локусов A (Ax) и B (By) как среди больных детей, так и среди их родителей по сравнению с контрольной группой. Однако доля “совместимых” по антигенам локуса HLA-A пар мать-ребенок с ДЦП была достоверно больше теоретически ожидаемой частоты встречаемости таких пар (51% и 33,5% соответственно).

Прокомментировать данные Б.Л.Жизневского достаточно трудно. Но можно согласиться с автором, что необходимы дальнейшие иммуногенетические исследования в этой области.

В последние годы установлено, что многие структурные изменения ткани мозга при различной психоневрологической патологии возникают в процессе пре- и раннего постнатального развития под воздействием различных факторов. Определенный вклад в развитие соответствующих отклонений вносят нарушения системы нейротрофинов, в частности, фактора роста нервов – ФРН. ФРН представляет собой нейропептид, не только обусловливающий выживание зрелых нейронов центральной и периферической нервной системы, но и контролирующий направленный рост и ветвление нервных окончаний и установление межнейрональных контактов в процессе эмбрионального и раннего постнатального развития (R.Levi-Montalchini, 1987; S.Rabizadeh et al., 1993). В ряде экспериментов было показано, что нарушения в системе ФРН, приводящие к недоразвитию нейронных структур, могут вызываться введением антител к нему в организм животных (R.A.Rush, 1989; J.F.Springer et al., 1985). Эти результаты позволяют предположить, что аутоиммунные реакции в виде выработки аутоантител к ФРН могут вносить вклад в развитие процессов, приводящих к поражению нервной системы.

Группой сотрудников НЦПЗ РАМН обнаружено повышение уровня аутоантител (ААТ) к ФРН в сыворотке крови детей, больных шизофренией (В.М.Башина и др., 1997). Обнаружена зависимость между уровнем ААТ к ФРН и степенью прогредиентности болезненности процесса. Выявленные связи между уровнем ААТ к ФРН позволяют использовать этот показатель как объективный маркер остроты и тяжести состояния больных. Однако вопрос о причинах повышения уровня ААТ к ФРН остается открытым. В качестве такой причины предположительно могут выступать нарушения иммунной системы, в частности, ее предварительная сенсибилизация, которая может быть спровоцирована ранними контактами с так называемыми перекрестными антигенами (E.Dicou, 1993). Однако авторы допускают, что ААТ к ФРН являются простыми свидетелями (“антитела-свидетели”) протекающего патологического процесса, при этом ссылаясь на данные В.П.Чехонина и соавт. (1990), что обострение шизофренического процесса может сопровождаться увеличением проницаемости гематоэнцефалического барьера (ГЭБ).

Было бы очень интересным изучить возможную диагностическую и прогностическую роль ФРН и аутоантител к нему при детском церебральном параличе, учитывая универсальную роль патологии ГЭБ практически при всех нервно-психических заболеваниях. В частности, в ДЦПологии остро стоит вопрос мониторинга ближайшей и отдаленной эффективности различных методов лечения, дозирования физической нагрузки при ЛФК, вопросов катамнеза и т.п.


§5. Нейротрансмиттеры в эмбриогенезе. Список эндогенных веществ, которые можно было бы назвать мультифункциональными биологически активными веществами, продолжает расти. Это особые молекулы, играющие разнообразную регуляторную роль как в развивающихся, так и во вполне сформированных клеточных системах. К числу этих молекул, благодаря своим важнейшим и универсальным внутриклеточным регуляторным функциям во всем животном царстве, относятся циклические нуклеотиды и кальций.

Вещества, известные как медиаторы нервной системы, нейромедиаторы, нейротрансмиттеры, синаптические передатчики, находятся в центре внимания многих исследователей не только как специализированные межклеточные передатчики нервных влияний, но и как участники самых разнообразных регуляторных процессов. В нашей стране этому способствовали исследования выдающегося отечественного эволюционного физиолога Х.С.Коштоянца, который еще в 30-е годы начал работы, на основании которых впоследствии смог сформулировать положение о принципиальном родстве регуляторных процессов на “донервном” и “нервном” этапах филогенеза. Позже многочисленными исследованиями отечественных и зарубежных ученых была показана активность трансмиттеров и на внутриклеточном уровне. Это позволило опровергнуть представление об ацетилхолине и биогенных моноаминах (дофамине, норадреналине, серотонине и др.) как о веществах, служащих только для передачи нервных влияний.

В настоящее время общепризнано, что классические нейротрансмиттеры тоже являются мультифункциональными биологически активными соединениями, но действующими в отличие от циклических нуклеотидов и Са2+ и как межклеточные посредники. Трансмиттеры не только действуют как межклеточные химические сигналы, определяющие электрическую активность клеток, но и играют важную роль в установлении и поддержании морфологии нейронов и их интеграции (S.B.Kater, P.G.Haydon, 1986).

Трансмиттеры появились не только раньше организмов, обладающих нервной системой, но и раньше любых ныне существующих групп эукариот. При возникновении нервной системы была реализована возможность использования трансмиттеров как синаптических передатчиков. Трансмиттеры стали нейротрансмиттерами.

Непосредственно за идентификацией первого из нейротрансмиттеров ацетилхолина, было начато изучение трансмиттерных систем у развивающихся зародышей. Донервные трансмиттеры распространены не менее широко, чем соответствующие нейротрансмиттеры; их существование является универсальной закономерностью, и каждому моменту онтогенетического развития нервной системы соответствуют определенная качественная и количественная мозаика и определенное состояние макромолекулярных компонентов нейротрансмиттерных систем. Доказана идентичность метаболических путей одноименных донервных и нейрональных трансмиттеров. В то же время нельзя говорить о простом повышении уровня нейротрансмиттеров, росте активности соответствующих энзимов и т.д. во время зародышевого развития (Г.А.Бузников, 1987).

Разрыв между донервными и нейрональными системами уменьшился и благодаря прогрессу, достигнутому при изучении последних. Так, еще сравнительно недавно одной из характернейших особенностей донервных систем представлялась возможность сосуществования нескольких трансмиттеров и смены одного трансмиттера другим в одной и той же клетке. Сейчас уже стало ясным, что это не такая уж особенность. Доказано сосуществование двух или даже трех нейротрансмиттеров в одном и том же дифференцированном нейроне (Д.А.Сахаров, 1984; N.N.Osborne, 1983, др.). Дело может дойти до того, что начнут появляться работы, доказывающие существование и мононейротрансмиттерных нейронов (A.A.J.Verhofstad et al., 1981).

В мультинейротрансмиттерных нейронах трансмиттеры могут присутствовать в сопоставимых количествах, или же один из них является минорным компонентом. Причем нейроны взрослых животных способны к изменению эргичности (так называемая “трансмиттерная пластичность”). Обе эти ситуации могут иметь место и в эмбриональных клетках (Г.А.Бузников, 1987).

Нейроны – не единственные мультитрансмиттерные клетки взрослых организмов. Сосуществование двух-трех трансмиттеров обнаружено также в клетках мозгового вещества надпочечников, в клетках нейробластом и феохромоцитом, т.е. в клетках, генеалогически близких к нейронам (B.Hamprecht, 1977 и мн. др.). По два трансмиттера и более найдено и в некоторых других клетках – тромбоцитах, эпидермальных, мышечных клетках, плаценте, клетках опухолей поджелудочной железы; в этих же клетках найдены и соответствующие энзимы (V.Erspamer, 1981; др.).

О тромбоцитах следует сказать особо. В настоящее время тромбоциты рассматриваются в качестве модельного объекта центральных пресинаптических окончаний (S.M.Stahl, 1985), что дает основание предполагать наличие аналогичных процессов в центральной нервной системе и использовать этот факт для изучения церебральных функций.

Ацетилхолин, адреналин, норадреналин, серотонин, нейропептиды найдены и в сперматозоидах млекопитающих (Г.А.Бузников, 1987).

Рецепторы к донервным трансмиттерам локализованы на внутриклеточных мембранах и не сопряжены с ионными каналами поверхностной мембраны (Г.А.Бузников, 1967, 1987). Полагают Г.А.Бузников (1987), что у ранних зародышей трансмиттеры и их аналоги действуют на клеточное деление только через внутриклеточные рецепторы, но на более поздних стадиях онтогенеза соответствующие влияния могут идти и через внутриклеточные и через мембранные трансмиттерные рецепторы, имея при этом совершенно разный характер и разное функциональное значение, а у нормальных взрослых животных для рассматриваемых веществ остается только путь действия через рецепторы поверхностной мембраны.

В литературе имеются, однако, данные о присутствии функционально активных трансмиттерных рецепторов внутри клеток взрослых животных (Р.И.Потапенко, 1980; др.). И, наконец, существует предположение о прямом участии внутриклеточных трансмиттерных рецепторов в нейрональном захвате биогенных аминов (J.A.Street, A.Walsh, 1984). В некоторых работах приведены прямые доказательства существования внутриклеточных функционально активных холин- и моноаминергических рецепторов (Т.М.Турпаев и др., 1985; F.Ebner, 1982; др.). Так, обнаружена реакция нейронов или других возбудимых клеток на внутриклеточно введенные нейротрансмиттеры (Т.М.Турпаев и др., 1985). Предполагается (Г.А.Бузников, 1987), что внутриклеточные моноаминергические рецепторы нейронов участвуют в регуляции функционального ответа на ацетилхолин, действующий через классические мембранные рецепторы.

Как известно, во время синаптической передачи межклеточный сигнал преобразуется во внутриклеточный, т.е. осуществляется переход от нейротрансмиттеров как межклеточных посредников к другим физиологически активным веществам – внутриклеточным (вторичным) мессенджерам (циклическим нуклеотидам, ионам кальция и др.). Согласно современным представлениям, характернейшей особенностью нейротрансмиттерного процесса, как и многих других регуляторных процессов, является то, что межклеточные посредники и вторичные мессенджеры пространственно разобщены и функционально сопряжены клеточной мембраной. Усилителем и преобразователем, переводящим межклеточные сигналы на язык внутриклеточных мессенджеров, является, локализованная как на поверхностных (S.Swillens, J.E.Dumont, 1982), так и на внутриклеточных (L.S.Culter, 1983) мембранах, аденилатциклаза.

В зиготах и бластомерах всех позвоночных и беспозвоночных найдены все компоненты систем внутриклеточных мессенджеров. Показано, что эти системы играют важную роль в регуляции и осуществлении делений дробления (И.Е.Садокова, Л.Е.Мартынова, 1984; C.Racowsky, 1985), причем функционально активная и сопряженная с нейротрансмиттерами аденилатциклаза локализована у ранних зародышей на мембранах эндоплазматического ретикулума и не предназначена для последующего встраивания в поверхностную мембрану (Г.А.Бузников, 1987). Это относится и к гуанилатциклазе (J.Wolf, G.H.Cooke, 1985).

Функциональная взаимосвязь вторичных мессенджеров имеет очень сложную пространственную организацию и выглядит по-разному у разных типов клеток (Г.А.Бузников, 1987). Циклические нуклеотиды (особенно цАМФ) и Ca2+ играют важную роль в регуляции и осуществлении клеточных делений и связаны настолько тесно и многообразно, что о них говорят как о “функциональном тандеме” или “синархических регуляторах” (M.J.Berridge, 1984; C.J.Pallen et al., 1985). Участие циклических нуклеотидов и ионов кальция в управлении клеточным циклом зафиксировано уже в ооцитах и клетках ранних зародышей и осуществляется при посредстве ряда функциональных белков (кальмодулина, цАМФ- и кальмодулинзависимых протеинкиназ и др.) через взаимодействие с элементами цитоскелета (M.J.Berridge, 1984; D.L.Friedman, 1982). Строгая пространственная организация регуляторных внутриклеточных систем, участвующих в цитокинезе, вытекает хотя бы из того, что место очередной борозды дробления предопределено еще до начала ее формирования (R.Rappaport, 1983). Показано (E.B.Wagenaar, 1983), что даже сравнительно небольшое повышение внутриклеточного уровня одного из вторичных мессенджеров – ионов кальция, приводит к остановке делений дробления, т.к. каждой фазе клеточного цикла соответствует определенный оптимальный внутриклеточный уровень свободных ионов кальция, превышение которого блокирует нормальные деления дробления и заменяет их аномальными изменениями кортикального слоя цитоплазмы (J.C.Osborn et al., 1979).

Донервный трансмиттерный процесс, необходимый для осуществления делений дробления, как и сами эти дробления, имеет характер самоподдерживающегося циклического процесса, запускаемого активацией яйца, которая обусловлена повышением внутриклеточного уровня Ca2+ (D.Epel, 1982), который, действуя через кальмодулинзависимые протеинкиназы, активирует энзимы, участвующие в синтезе нейротрансмиттеров (H.Shulman, 1984) и, активируя сократительные белки, вызывает выделение донервных трансмиттеров из желточных гранул (R.Colombo, 1982). Полагают (Г.А.Бузников, 1987), что Ca2+ играет роль внутриклеточного сигнала, интенсифицирующего синтез донервных трансмиттеров в первые минуты после оплодотворения и таким образом запускающего всю рассматриваемую регуляторную систему. Благодаря работе этой системы, подъем внутриклеточного уровня Ca2+ повторяется в каждом из первых клеточных циклов, вызывая усиление синтеза донервных трансмиттеров и их появление в цитоплазме. Новосинтезированные трансмиттеры идут к так называемым интеросомам и взаимодействуют с их рецепторным звеном. Это взаимодействие приводит к активации аденилатциклазы, последующему повышению уровня цАМФ и связанному с этим выходу Ca2+ из внутриклеточных депо или поступлению его извне. Такая активация систем вторичных мессенджеров, в свою очередь, приводит к соответствующим изменениям цитоскелета и в конечном итоге к образованию борозды дробления. Ca2+ вызывает также новое усиление синтеза донервных трансмиттеров и их появление в цитоплазме. Это повторяется без существенных изменений во время каждого из клеточных циклов вплоть до завершения периода дробления, когда начинается радикальная перестройка донервных трансмиттерных систем.

Таким образом, вторичные мессенджеры играют большую роль в межклеточных связях эмбриогенеза. Имеется много данных об участии в этих связях цитоскелета (J.P.Trinkaus, 1984) и об аномалиях развития, вызванных их нарушениями (J.E.Trosko et al., 1982). С изменениями цитоскелета также связано цитостатическое действие аналогов трансмиттеров (Г.А.Бузников, 1987).

Дискретность сигнала, запускающего цитокинез (R.Rappaport, 1983), свидетельствует, что предшествующее этому сигналу взаимодействие трансмиттеров с рецепторами также носит типичный для подобных взаимодействий дискретный характер. Это говорит о том, что в зиготе и бластомерах существуют факторы, периодически делающие рецепторы недоступными для трансмиттеров, благодаря которым межбластомерные взаимодействия и носят характер дискретных повторяющихся реципрокных сигналов. Роль таких факторов играют ганглиозиды (Г.А.Бузников и др., 1973) и образующиеся при окислительном дезаминировании биогенных моноаминов ароматические альдегиды, обладающие очень высокой и специфической цитостатической активностью (Л.Н.Маркова и др., 1971). В то же время эти альдегиды очень нестойки и их разрушение сопровождается быстрым возобновлением первоначально заблокированных делений дробления. Такое взаимодействие обеспечивает дискретность и строгую адресованность внутриклеточного сигнала, вызывающего очередное деление дробления.

Выделяют следующие донервные функции ганглиозидов (Г.А.Бузников, 1987): 1 участие в транспорте трансмиттеров; 2 участие в рецепции донервных трансмиттеров и в регуляции активности у сопряженной с трансмиттерными рецепторами аденилатциклазы; 3 взаимодействие с Ca2+ и участие в регуляции уровня этого иона в цитоплазме и в его внутриклеточном транспорте; 4 участие в выведении неметаболизированных молекул трансмиттеров из зигот и бластомеров, т.е. в прекращении действия этих трансмиттеров на интеросомы. В свою очередь, донервные трансмиттеры сами участвуют в синтезе и транспорте ганглиозидов.

Дополнительным фактором надежности и адресованности действия физиологически активных веществ-лигандов является функциональная компартментализация рецепторов в случае как донервных трансмиттеров, так и вторичных мессенджеров (J.S.Hayes, L.L.Brunton, 1982).

Существование донервных трансмиттеров с их внутриклеточными местами синтеза и рецепции отражает, по мнению Г.А.Бузникова (1987), очень важное отличие делений дробления от клеточных делений на более поздних фазах онтогенеза – первые деления запускаются изнутри клетки, а вторые – снаружи.

В последующем при участии трансмиттеров у ранних зародышей осуществляются межбластомерные взаимодействия. Г.А.Бузниковым (1987) межбластомерные взаимодействия, столь важные для последующего развития, рассматриваются как управляемый процесс сигнализации, в том числе и химической. Трансмиттеры выступают как регуляторы аппарата межбластомерной связи и как непосредственные передатчики сигналов. Процесс межбластомерного взаимодействия состоит из двух основных этапов – подготовки условий для межклеточной сигнализации и самой этой сигнализации. Специфические химические регуляторы участвуют в обоих этих этапах. Межбластомерный перенос трансмиттеров осуществляется через цитоплазматические мостики или специализированные контакты. В регуляции проницаемости щелевых контактов и в других процессах, относящихся к межклеточным взаимодействиям, участвуют цАМФ и Ca2+ (R.M.Ezzel et al., 1985). Значение кальция этим здесь не исчерпывается, достаточно напомнить об известнейшей и важнейшей роли Ca2+ в формировании и поддержании гиалинового слоя, столь необходимого для межклеточных взаимодействий (G.Giudice, 1973). Предполагается сосуществование независимых и не являющихся строго синхронными трансмиттерно-мессенджерных циклов, один из которых соответствует участию рассматриваемых веществ-регуляторов в делениях дробления, а другой – в ранних межбластомерных взаимодействиях (Г.А.Бузников, 1987).

Сосуществование нескольких трансмиттеров в зиготах и бластомерах имеют большой физиологический смысл. Каждый донервный трансмиттер уже во время делений дробления мультифункционален, причем некоторые функции являются общими для всех трансмиттеров, а некоторые присущи только одному или нескольким из числа этих веществ-регуляторов. В регуляции делений дробления участвуют и ацетилхолин, и катехоламины, и индолилалкиламины, а в осуществлении межбластомерных взаимодействий – только индолилалкиламины. Другие функции выполняются только ацетилхолином, только дофамином и т.д. (Г.А.Бузников, 1987).

Кроме участия трансмиттеров в делениях дробления и в ранних межклеточных взаимодействиях существуют и другие самостоятельные функции этих веществ-регуляторов у ранних зародышей. К числу этих эффектов относятся: торможение макромолекулярных синтезов, влияние на синтез различных групп белков (например, в регуляции синтеза и степени полимеризации тубулина и других белков цитоскелета) и липидов и на транспорт аминокислот и нуклеозидов в эмбриональных клетках, происходящие непосредственно после оплодотворения перестройки цитоскелета и др. (Г.А.Бузников, 1987), участие в регуляции транспорта новосинтезированных мРНК у зародышей на стадиях бластулы и гаструлы (Г.А.Бузников, 1971). Регуляторное влияние донервных трансмиттеров на биосинтез белков осуществляется при непосредственном участии цитоскелета (R.Mileusnic et al., 1982).

Функционально активные мембранные трансмиттерные рецепторы расположены и на поверхности ооцитов. Они участвуют в процессах созревания ооцитов, оплодотворения и тем самым в процессах последующего зародышевого развития. Показано, что экзогенный ацетилхолин способствует вызванному прогестероном созреванию ооцитов, действуя при этом через сопряженные с хлорными каналами м-холинорецепторы клеточной поверхности (N.Dascal et al., 1984), исчезающие после оплодотворения (C.Caratsch et al., 1984). Экспериментально показано, что электрофизиологический ответ интактных ооцитов на катехоламины и серотонин осуществляется при посредстве фолликулярных клеток (K.Kusano et al., 1982), это свидетельствует о существовании “быстрых” функциональных связей между фолликулярными клетками и ооцитом, что также подразумевает участие мембранных рецепторов. Сопряженные с трансмиттерными рецепторами электро- и хемовозбудимые ионные каналы обнаружены у ооцитов различных позвоночных и беспозвоночных, включая человека (C.Baud, 1983; L.Meijer, P.Guerrier, 1984).

Трансмиттеры участвуют в регуляции общего белкового синтеза ооцитов и перестройки цитоскелета, происходящей во время делений созревания. Функционально активные трансмиттеры присутствуют у растущих ооцитов (C.B.Gundersen, R.Miledi, 1983), а не только у ооцитов, достигших окончательного размера. Существуют данные об участии вторичных мессенджеров в реализации влияния нейрофармакологических препаратов, потенциальных антагонистов трансмиттеров, на процессы созревания ооцитов (T.G.Hollinger, I.M.Alvarez, 1984).

При обсуждении вопроса о функциональном значении трансмиттерных рецепторов, локализованных на клеточной поверхности ооцитов, уместно вспомнить гипотезу H.Numanoi (1953), согласно которой ацетилхолин участвует в запуске потенциала действия при оплодотворении. Полагают (Г.А.Бузников, 1987), что этот эффект эндогенного ацетилхолина осуществляется при посредстве мембранных холинорецепторов ооцитов. Так называемый потенциал оплодотворения обнаружен и описан у самых разнообразных животных: от кишечнополостных до млекопитающих (B.Dale et al., 1983; M.E.Barish, 1984; др.). Он играет главную роль в осуществлении “быстрого блока” полиспермии, т.е. важен для обеспечения нормального моноспермного оплодотворения (L.A.Jaffe, 1983; H.Schuel, 1984). Полагают (Г.А.Бузников, 1987), что у всех животных потенциал оплодотворения осуществляется при участии трансмиттерных рецепторов.

За последние годы появилось много сообщений о возможности, инъецируя в исходный ооцит чужеродные мРНК, вызывать синтез самых разнообразных трансмиттерных рецепторов (н-холинорецепторов, дофамин-, адрен-, серотонин- и ГАМК-ергических рецепторов) и электровозбудимых каналов (C.B.Gundersen et al., 1983; I.Parker et al., 1985). Чрезвычайно интересным в терапевтической перспективе является тот факт, что новосинтезированные на чужеродных матрицах рецепторы встраиваются в мембрану ооцита и вступают в функциональную связь с ее ионными каналами. В результате этого ооцит становится чувствительным к таким трансмиттерам или фармакологическим препаратам, на которые он в норме не реагирует (Г.А.Бузников, 1987).

Таким образом, в исходных ооцитах могут присутствовать сразу три группы трансмиттерных рецепторов: внутриклеточные, сходные с таковыми у дробящихся зародышей, собственные рецепторы клеточной поверхности и мембранные рецепторы, синтезированные на чужеродных матрицах. Кроме того, вводя в ооциты чужеродные мРНК, можно вызвать синтез энзимов, участвующих в обмене трансмиттеров, – это вызывает резкие изменения уровня собственных донервных трансмиттеров или появление новых трансмиттеров, в норме отсутствующих (C.B.Gundersen et al., 1985). Созревание ооцитов и оплодотворение не приводят к исчезновению ни своих (J.B.Gurdon, D.A.Melton, 1981), ни чужеродных (R.Miledi et al., 1982) матриц из цитоплазмы.

Ацетилхолин обнаружен у зародышей непосредственно после оплодотворения, а также во время первых клеточных делений (так называемых делений дробления) и на последующих стадиях донервного эмбриогенеза. Показаны ритмические подъемы концентрации этого трансмиттера, совпадающие с делениями дробления (Г.А.Бузников, 1967; G.A.Buznikov, 1973). Удалось не только проследить эти подъемы, но и проследить закономерности изменения уровня ацетилхолина (как и других трансмиттеров) во время одного из первых клеточных циклов. Такой дробный анализ был проведен с середины первого до конца второго дробления. В течение митотического цикла происходят два подъема концентрации ацетилхолина: во время расхождения хромосом, в анафазе, во время образования борозды дробления, в телофазе (G.A.Buznikov et al., 1968; G.A.Buznikov, 1973). Интересно, что сходные изменения уровня ацетилхолина во время митотического цикла обнаружены в культуре инфузории (W.D.Sullivan, C.F.Cullivan, 1964).

Донервные трансмиттеры участвуют в перестройках цитоскелета, происходящих непосредственно после оплодотворения, приводящего к запуску сложной динамической системы относительно быстрых процессов, разыгрывающихся в цитоскелете. Эти процессы сопровождаются многократным появлением и исчезновением компонентов цитоскелета, приводя к перемещению определенных внутриклеточных структур и установлению полярности зиготы (G.Schatten, 1982). Все эти циклические изменения цитоскелета запускаются и регулируются вторичными мессенджерами (цАМФ, цГМФ и Са2+) (G.Schatten, 1982), уровни которых регулируются донервными трансмиттерами не только во время первых делений дробления, но и во время предшествующего этим делениям периода развития (Г.А.Бузников, 1987). Об этом свидетельствуют данные о периоде резко повышенной чувствительности зародышей к цитостатическим аналогам донервных трансмиттеров, наблюдаемом непосредственно после оплодотворения (Г.А.Бузников, 1967).

По мнению Г.А.Бузникова (1987), ранние функции трансмиттеров этим не исчерпываются. Во-первых, существует какая-то очень важная, совершенно необходимая для обеспечения жизнеспособности эмбриональных клеток функция трансмиттеров, подавление которой приводит зародышей к гибели. Во-вторых, прямо-таки “напрашивается” участие трансмиттеров и сопряженных с ними вторичных мессенджеров в процессах, протекающих в первые минуты после оплодотворения.

Г.А.Бузников (1967) отмечает возможность того, что непосредственной причиной цито- и эмбриотоксического действия антагонистов донервных трансмиттеров являются специфические нарушения энергетического метаболизма. Существуют данные о том, что сверхактивные аналоги трансмиттеров оказывают на ранних зародышей сильное цитотоксическое действие. Автор считает, что донервные трансмиттеры необходимы для поддержания нормального функционально активного состояния клеточных мембран эмбриональных клеток, и что специфическое действие антагонистов трансмиттеров может приводить к таким повреждениям мембран, когда клетки зародышей становятся нежизнеспособными. Кроме того, цитотоксическое действие детергентов, т.е. веществ, заведомо повреждающих клеточные мембраны, по целому ряду признаков сходно с соответствующими эффектами аналогов донервных трансмиттеров (Г.А.Бузников и др., 1971). Для ряда нейрофармакологических препаратов с цитотоксическим действием на ранних зародышей показана их способность взаимодействовать in vivo с мембранными липидами и, повреждая мембраны, делать различные клетки нежизнеспособными (D.Zilberstein, D.M.Dwyer, 1984). Непосредственной причиной гибели ранних зародышей, мембраны которых повреждены аналогами донервных трансмиттеров, считают чрезмерные подъем или спад внутриклеточного уровня Са2+.

У животных с регуляционным типом развития во время гаструляции развертывается перестройка трансмиттерных систем – начинается трансмиттерная специализация клеток, меняются условия инактивации трансмиттеров, появляются трансмиттерные рецепторы, локализованные на клеточной поверхности и сходные с соответствующими рецепторами дифференцированных клеток. Функции трансмиттерных систем становятся гораздо более сложными и многообразными, чем во время делений дробления. Наряду с усложнением ранних функций донервных трансмиттеров, появляются и новые функции, связанные, в частности, с регуляцией морфогенетических движений клеток, с запуском и регуляцией процессов клеточной дифференцировки, со специализированными физиологическими процессами, например, процессами эмбриональной моторики (Г.А.Бузников, 1987).

Существует много публикаций, посвященных изучению роли вторичных мессенджеров в процессах гаструляции, нейруляции и формировании почек конечностей (D.J.Moran, 1978; W.P.Smales, D.M.Biddulph, 1985 и др.).

Показано (T.Gustafson, 1969), что основная формообразующая роль во время гаструляции принадлежит пульсаторным и амебоидным движениям мезенхимальных клеток, изменению степени адгезии между клетками вегетативной эктодермы зародыша, а также пульсаторной активности клеток первичной кишки. Весь процесс гаструляции разделен на две фазы – G1 и G2. На первой фазе происходит выселение клеток первичной мезенхимы из вегетативной области зародыша в бластоцель и связанное с активностью этих клеток начало роста первичной кишки. На второй фазе завершается формирование первичной кишки и устанавливается ее контакт, непосредственный или через первичную мезенхиму, с внутренней поверхностью эктодермальных клеток. На кончике первичной кишки образуется скопление так называемых пигментных клеток, которые позднее входят в контакт с некоторыми эктодермальными клетками и индуцируют их превращение в нейроны.

Показано (Г.А.Бузников, 1987), что антагонисты серотонина тормозят или блокируют обе фазы гаструляции – G1 и G2. Эти препараты, подавляя гаструляцию, действуют не только на внутриклеточные рецепторные структуры, но и на мембранные серотонинорецепторы дефинитивного типа. Нейрофармакологическими препаратами, тормозящими или подавляющими обе фазы гаструляции, являются некоторые производные фенотиазина, трициклические антидепрессанты, различные бета-адренолитики и ингибиторы моноаминоксидазы. Все эти препараты, кроме ингибиторов моноаминоксидазы, обладают экспериментально показанным выраженным цитостатическим действием, влияя на морфогенетические движения клеток путем вызывания стабильной поляризации мезодермальных клеток и потери ими способности к сокращению и движению, а в высоких концентрациях – вызывая полное блокирование морфогенетических процессов, т.к. показано, что серотонин участвует в регуляции нейронной архитектуры и связей (B.Stanley et al., 1986).

T.Gustafson и M.Toneby (1971) показали, что липофильные препараты, могущие действовать как антагонисты ацетилхолина, тормозят или блокируют только фазу G2. Эти авторы пришли к выводу, что биогенные амины (серотонин и дофамин) и ацетилхолин являются необходимыми участниками процесса гаструляции. При этом моноамины необходимы для активации внутриклеточных сократительных элементов, ответственных за инвагинацию первичной кишки на обеих фазах гаструляции; ацетилхолин играет аналогичную роль только во время фазы G2. Роль трансмиттеров в активации внутриклеточных сократительных элементов подтверждена прямыми прижизненными наблюдениями с применением киносъемки, показавшей, что амебоидная и пульсаторная активность клеток, играющая столь важную роль в гаструляции, полностью исчезает при действии антагонистов трансмиттеров. По мнению M.Toneby (1977), трансмиттеры регулируют морфогенетические движения клеток во время гаструляции, активируя аденилатциклазу и гуанилатциклазу и тем самым повышая уровни циклических нуклеотидов. Эти нуклеотиды регулируют процессы сборки-разборки микротрубочек, влияя на степень полимеризации тубулина. Активными могут быть собственные трансмиттеры клеток мезенхимы, трансмиттеры первичной кишки и трансмиттеры, поступающие к этим клеткам из контактирующих с ними клеток эктодермы. Синхронизация двигательной активности клеток в различных частях гаструлирующего зародыша может осуществляться с помощью транспорта вторичных мессенджеров и самих донервных трансмиттеров, осуществляемого через специализированные межклеточные контакты. После завершения гаструляции серотонин, выделяемый пигментными клетками, индуцирует превращение некоторых клеток ресничных поясов в нейроны (T.Gustafson, M.Toneby, 1971).

Экспериментально показано, что серотонин, его антагонисты и блокаторы синтеза вызывают у зародышей серьезные аномалии нейруляции. Их причиной считают нарушение роли серотонина как регулятора сократимых элементов цитоскелета и как вещества, необходимого для утилизации материала желточных гранул (H.Emanuelsson, 1976). Данные о том, что эндогенный ацетилхолин, участвуя во взаимодействии эмбриональных клеток, является регулятором их морфогенетических перемещений, получены R.A.Fluck и T.M.Shin (1981). Роль трансмиттеров как регуляторов морфогенетических перемещений в эмбриогенезе носит универсальный характер, сохраняясь и тогда, когда они из донервных становятся ненервными или даже нейрональными (Г.А.Бузников, 1987).

Функции трансмиттеров во время гаструляции и первых постгаструляционных стадий не ограничиваются регуляцией морфогенетического перемещения клеток. На этих стадиях развития трансмиттеры начинают участвовать в регуляции активности генома (Г.А.Бузников, 1971; T.Gustafson, M.Toneby, 1971). Известно, что во время гаструляции все большее функциональное значение приобретают новосинтезированные мРНК, что выражается в начале синтеза многих новых белков, в том числе и белков-трансмиттерных рецепторов (E.H.Davidson et al., 1982). Это функциональное значение эмбриональных мРНК реализуется при участии трансмиттеров, синтез которых, в свою очередь, начинает регулироваться со стороны генома. На догаструляционных стадиях развития синтез этих веществ-регуляторов идет по стабильной программе, заложенной во время оогенеза и активируемой при оплодотворении (T.Gustafson, M.Toneby, 1971). Кроме этого, на поздних стадиях донервного эмбриогенеза они выступают и как регуляторы осуществляемого при участии цитоскелета транспорта новосинтезированных мРНК в цитоплазму (Г.А.Бузников, 1971).

Непосредственно после гаструляции у зародышей появляется донервная эмбриональная моторика в виде ненервной миогенной моторики, обусловленной сокращением неиннервированных мышечных клеток (M.Durante, 1956). По мнению Г.А.Бузникова (1987), донервная и ненервная эмбриональная моторика представляет собой универсальное явление. Не менее универсальной является и роль донервных трансмиттеров как локальных гормонов, участвующих в запуске и регуляции этой моторики. Интересным является тот факт, что ряд активностей, построенный для индолилалкиламинов по величине их стимулирующего действия на моторику зародышей, полностью совпадает с рядом, построенным на основании способности этих веществ оказывать сосудосуживающее действие на изолированные органы взрослых млекопитающих (Г.А.Бузников и др., 1965).

Таким образом, на определенных этапах эмбриогенеза донервные трансмиттеры становятся необходимыми не только для реализации программы зародышевого развития, но и для быстрых физиологических процессов, интенсивность которых может изменяться в соответствии с внешними условиями. При этом трансмиттеры участвуют в работе не только эффекторного, но и сенсорного звена соответствующих физиологических процессов (Г.А.Бузников, 1987).

Трансмиттеры, присутствующие в сперматозоидах, участвуют в поддержании и регуляции их подвижности (L.Nelson, 1978).

Как сказано выше, участие трансмиттеров в регуляции морфогенетических перемещений клеток во время гаструляции и на донервных постгаструляционных стадиях развития осуществляется при посредстве как внутриклеточных рецепторов, так и рецепторов, расположенных на клеточной поверхности. В тех же случаях, когда трансмиттеры функционируют как локальные гормоны эмбриональной моторики, они действуют только через поверхностные рецепторы, которые к тому же очень сходны с рецепторами дифференцированных клеток. Это означает, что трансмиттеры, действуя на ту же самую клетку, в которой они синтезированы, или на такие же соседние клетки, должны сначала выйти в межклеточное пространство или даже во внешнюю среду и подействовать на рецепторы клеточной поверхности (Г.А.Бузников, 1987).

Возникает ситуация на первый взгляд парадоксальная – первичные и вторичные мессенджеры, как и у ранних зародышей, находятся в одной и той же клетке, но функциональной границей между ними на сей раз оказывается не внутриклеточная, а поверхностная плазматическая мембрана. Подобная ситуация, однако, возможна и в случае дифференцированных нейронов (F.Hucho, 1982; E.Usdin et al., 1984).

Физиологические механизмы действия трансмиттеров – локальных гормонов и соответствующих нейротрансмиттеров не обязательно идентичны. Столь характерная для классического синаптического процесса десенситизация постсинаптической клетки к нейротрансмиттеру может в случае эмбриональных моторных клеток полностью отсутствовать. Это, в частности, подтверждается различиями электрофизиологических характеристик действия локальных гормонов и нейротрансмиттеров на моторные клетки-мишени (G.O.Mackie et al., 1976).

В то же время роль трансмиттеров как локальных гормонов клеточной моторики может перейти от донервных зародышей к взрослым организмам без сколько-нибудь существенной перестройки. Эту роль обнаружили сначала у поздних зародышей и взрослых животных (А.Г.Гинецинский, 1947) и лишь затем у зародышей более ранних стадий развития (Г.А.Бузников, 1967).

Трансмиттеры, вызывающие и поддерживающие амебоидное и пульсаторное движение клеток во время гаструляции, тоже могут быть названы локальными гормонами, соответствующая функция трансмиттеров сохраняется и у взрослых животных. Об этом свидетельствуют данные, полученные при изучении нейрофармакологических влияний на подвижность лимфоцитов, фибробластов и т.д. (А.Д.Адо, В.И.Донцов, 1984; D.Bottaro et al., 1985).

Установлено, что у постгаструляционных донервных зародышей холин- и моноаминергические трансмиттерные системы обнаруживаются в первую очередь в так называемых осевых органах (нервной пластинке, позднее превращающейся в нервную трубку, кишке и особенно хорде). Соответствующие трансмиттеры синтезируются в клетках этих органов, где есть необходимые для такого синтеза энзимы, или поступают туда из желтка (M.L.Kirby, 1978), т.к. на предгаструляционных стадиях развития нет органелл, морфологически или физиологически сходных с синаптическими пузырьками (A.Gerard et al., 1978). Органеллы, служащие для депонирования трансмиттеров появляются во время гаструляции и на постраструляционных стадиях донервного эмбриогенеза (Г.А.Бузников, 1987). Интересен тот факт, что концентрации донервных трансмиттеров имеют приблизительно один и тот же порядок у ранних зародышей различных животных и сходны с концентрациями нейротрансмиттеров в большинстве тканей взрослых особей (Г.А.Бузников, 1967; R.A.Fluck, T.M.Shih, 1981).

Показано, что зоны выявления различных трансмиттеров в клетках осевых органов не перекрываются, т.е. в отличие от более ранних стадий развития наблюдается четкая трансмиттерная специфичность клеток. В то же время характер этой специфичности изменяется по ходе развития. Так, подавляющее большинство клеток нервного гребня первоначально являются холинергическими, хотя многие из них оказываются предшественниками ненервных клеток или моноаминергических нейронов, описаны и группы клеток с преходящей катехоламинергичностью (N.Le Douarin, 1982; G.M.Jonakait et al., 1985).

Захват экзогенных моноаминов клетками осевых органов очень сходен с нейрональным захватом (D.F.Newgreen et al., 1985), но не связан с какими-либо структурами типа синаптических пузырьков или моноаминергических гранул, а депонируется везикулами, образующимися при деградации желтка (A.Gerard et al., 1978). Эта способность ненервных клеток осевых органов захватывать и синтезировать моноамины утрачивается при переходе к нейрональному периоду развития (J.A.Wallase, 1982).

Изучение пространственно-временнòго распределения биогенных аминов в осевых органах высших позвоночных обнаружило впечатляющую (J.A.Wallase, 1982) связь между интенсивностью гистохимической реакции на эти амины (эндогенные или экзогенные) и морфогенетическими перемещениями клеток. Эта интенсивность максимальна именно там, где в данный момент развития совершаются наиболее сильные морфогенетические движения (D.F.Newgreen et al., 1985). Аналогичная корреляция обнаруживается и в случае холинергической системы, в том числе и на более ранних стадиях развития (A.Miki, 1981). Интересно, что на постнейруляционных стадиях развития зародыша, при образовании почек конечностей появлению в них нервных и мышечных структур предшествуют ненервные синтез, рецепция и инактивация ацетилхолина в клетках мезенхимы и хондробластах, т.е. в наиболее активно перемещающихся клетках (C.Falugi, M.Raineri, 1985).

Роль осевых органов как донервного трансмиттерного центра характерна для позвоночных. Именно хордомезодерма позвоночных индуцирует превращение клеток презумптивной эктодермы в клетки-предшественники нейронов (T.Gustafson, 1969; T.Gustafson, M.Toneby, 1971).