Ecological Studies, Hazards, Solutions, 2006, Vol

Вид материалаДокументы

Содержание


НОВЫЙ ПРИНЦИП РАНЖИРОВАНИЯ ВОДНЫХ ОБЪЕКТОВ Никитина О.Г., Никитин Н.Е.
Никитина Э.С., Лямин М.Я., Залиханов А.М. Географический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова, rsemsu@umail.ru
ИЗУЧЕНИЕ СОСТОЯНИЯ ВОДЫ У ПОКОЯЩИХСЯ И АКТИВИРОВАННЫХ ЯИЦ Artemia salina L. С ПОМОЩЬЮ МЕТОДА ЯМР-СПИНОВОЕ ЭХО
Москва ГСП-2 119992, МГУ им.М.В.Ломоносова, Ленинские горы, дом 1, корпус 12, каф.биофизики, Nikolaev@biophys.msu.ru
Подобный материал:
1   ...   7   8   9   10   11   12   13   14   ...   33

НОВЫЙ ПРИНЦИП РАНЖИРОВАНИЯ ВОДНЫХ ОБЪЕКТОВ

Никитина О.Г., Никитин Н.Е.

МГУ им. М.В. Ломоносова, каф. общей экологии биофака;

e-mail: z1110166@mail.ru


До последнего времени в гидробиологии господствовала оценка водных объектов по качеству воды в них. Но качество – результат длительного процесса, контролировать который, значит иметь возможность применять меры, превентивные по отношению к изменению качества воды. Разработана оценка процесса самоочищения в различных водных объектах методом биоэстимации (от лат. estimate - оценка), которая позволяет выявить не качество воды, а причины его нарушения (Никитина, 2003, Никитина и др., 2005) и собран достаточный фактический материал, и по пресным, и по соленым водным объектам, позволяющий рассчитать интегральную оценку процесса – биоэстимационный ранг и установить, насколько в различных участках гидросферы сохранилась возможность самоочищения воды, или насколько этот процесс нарушен и требуется восстановительное вмешательство человека.

После выполнения биоэстимационного анализа, ранг конкретного водного объекта по его способности к самоочищению, вычисляется по формуле: ранга = nф. + nг.ф. + lg(Ni/Nпор), где

nф – число факторов (из 9-ти), в которых отмечено превышение пороговой численности биоэстиматоров (показательных организмов, использующихся в системе биоэстимации);

nг.ф. – число групп факторов (из 3-х), в которых отмечено превышение рассчитанной численности биоэстиматоров над пороговой (Ni > Nпор);

lg(Ni/Nпор) – кратности превышения численности биоэстиматоров над пороговым значением.

Биоэстимационное ранжирование проводится с целью:
  1. получения обобщенной принципиальной оценки ситуации;
  2. создания базы данных для надзорных служб;
  3. ускорения получения тревожной информации об объектах;
  4. принятия решений о первоочередном восстановительном вмешательстве;
  5. унификации и оптимизации принимаемых решений;
  6. унификации формирования архива при повторных обследованиях.

Таким образом, в настоящее время можно получать как развернутую информацию о процессе самоочищения, так и обобщенную– в виде биоэстимационного ранга.


АНАЛИЗ БАКТЕРИЙ-АССОЦИАНТОВ ЦИАНОБАКТЕРИЙ SPIRULINA PLANENSIS, КУЛЬТИВИРУЕМЫХ В ФОТОКУЛЬТИВАТАРАХ

Никитина Э.С., Лямин М.Я., Залиханов А.М.

Географический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова, rsemsu@umail.ru

Цианобактериальные сообщества водных экосистем представляют сложную группу микроорганизмов. Такое сообщество состоит из центрального ядра – цианобактерий и микроорганизмов, окружающих его бактерий-ассоциантов (спутников). Цианобактерии и бактерии-ассоцианты являются системой функционально различных групп бактерий, связанных между собой трофическими связями, основой которых служат внеклеточные метаболиты цианобактерий, относящиеся к разным химическим соединениям, способствующим развитию бактерий-ассоциантов. В свою очередь бактерии - ассоцианты способствуют стимуляции азотфиксации и росту цианобактерий, выделяя факторы роста и витамины. В цианобактериальных сообществах доминируют грамотрицательные бактерии, что определяется образованием микроводорослями бактерицидных веществ, избирательно ингибирующих рост грамположительных бактерий. Бактерицидая активность цианобактерий по отношению к грамположительными бактериям связана со свободными жирными кислотами, выделяемыми ими в среду, Нами был изучен состав циано-бактериального сообщества в фотокультиваторах, в частности ассоциантов цианобактерии Spirulina platensis. Было выделено с применением универсальной агаризованной глюкозо-пептонно-дрожжевой среды 6 штаммов бактерий-ассоциантов, представляющих собой крупные и мелкие палочки, овалоиды и группы клеток, сходных с сарцинами. Значительный интерес представляли паразитические бактерии типа Bdellovibrio и бделловибриоподобных. Бделловибрионы (0,11-0,4 мкм × 0,9 – 1,2 мкм) – активные, подвижные эндопаразиты; бделловибриоподобные (0.13 – 0,17 мкм × 1,4 - 2,4 мкм и более) эктопаразиты (необходим тесный контакт с поверхностью клетки хозяина). Паразитические бактерии лизируют только грамотрицательные бактерии и являются регуляторами численности бактерий-ассоциантов. Получены пейзажные характеристики бактерий-ассоциантов и зоны лизиса на поверхности клеток хозяев-ассоциантов, образованных бделловибрионами. Таким образом, группа бактерий-ассоциантов в фотокультиваторах со спирулиной отражает сложную систему взаимодействующих между собой компонентов и трофических связей бактериальных сообществ, в свою очередь тесно связанных с цианобактериями.

ИЗУЧЕНИЕ СОСТОЯНИЯ ВОДЫ У ПОКОЯЩИХСЯ И АКТИВИРОВАННЫХ ЯИЦ Artemia salina L. С ПОМОЩЬЮ МЕТОДА ЯМР-СПИНОВОЕ ЭХО


Ю.Г.Николаева, Г.М.Николаев, В.А.Фролов, А.В. Сыроешкин

Москва ГСП-2 119992, МГУ им.М.В.Ломоносова, Ленинские горы, дом 1, корпус 12, каф.биофизики, Nikolaev@biophys.msu.ru



В работе применялся метод ядерного магнитного резонанса (ЯМР-спиновое эхо) [1]. Измеряли времена спин-спиновой релаксации протонов (Т2) по методике Hahn [1]. Для исключения влияния диффузии использовали методику Carr-Purcell-Meiboom-Gill [2,3]. Образцами служили толстоскорлуповые яйца Artemia salina. В яйцах, содержащих 23% воды наблюдаются три компоненты спада амплитуд спинового эха, отличающиеся по временам спин-спиновой релаксации протонов на порядок. Одна компонента спада была отнесена к протонам воды, сорбированной на полярных группах белков. Другая компонента спада, видимо, принадлежит протонам липидной фракции, которая составляла в яйцах 8,6%. Третья фракция протонов принадлежит протонам подвижной воды и не удаляется при лиофильном высушивании. Известно [5], что для стимуляции выклева необходимо высушивание и промораживание яиц. В нашей работе высушенные яйца артемий облучали потоком термализованных нейтронов радиоактивного источника [4]. После облучения яиц наблюдалась их активация: в 4 раза увеличилась скорость развития. Для сравнения часть яиц была подвергнута воздействию высокой температуры (+150ºС, 9 часа) - мертвые яйца. Было отмечено, что подвижность протонов липидной и водной фракций активированных яиц в 2,5 раза выше, чем у мертвых образцов и в 1,5 раза выше, чем у не активированных яиц.


1.Hahn E.L. Phys. Rev., 80, 580, 1950.

2 Carr H.Y., Purcell E.M., Phys. Rev., 94, 630,1960.

3. Meiboom S., Gill D., Rev. Sci. Instrum., 61, 688, 1958.

4. Матвеев И.С. и др. Бюлл. экспер. биол. и медицины.138, 11, с.530, 2004

5.Воскресенский К.А., Хайдаров Н.Ш., Вестник МГУ, № 1, с.1, 1967.