Методические рекомендации к определению и выведению гемограммы у животных

Методическое пособие - Разное

Другие методички по предмету Разное

Министерство сельского хозяйства Российской Федерации

Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия

 

 

 

 

 

 

Кафедра физиологии сельскохозяйственных животных и зоологии

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Методические рекомендации к определению и выведению гемограммы у животных

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Ульяновск, 2005 г.

 

УДК

 

Н.А.Любин, Л.Б.Конова.

Методические рекомендации к определению и выведению гемограммы у сельскохозяйственных и лабораторных животных при патологиях.

Для студентов и аспирантов факультетов ветеринарной медицины и технологического. Ульяновск, ГСХА, 2005, с.

 

 

 

 

 

 

 

При подготовке настоящих рекомендаций был использован опыт работы…

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

РЕЦЕНЗЕНТ: В.А.Ермолаев, доктор ветеринарных наук, профессор

 

Рекомендовано к изданию

методической комиссией

факультета ветеринарной медицины

Протокол № от 2005 г.

 

 

 

Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия, 2005 г

МЕТОДИКА ПРИГОТОВЛЕНИЯ МАЗКОВ КРОВИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ

 

А. ВЗЯТИЕ КРОВИ И ПОЛУЧЕНИЕ МАЗКА

 

Циркулирующая в сосудистой системе кровь представляет более или менее равномерную взвесь в плазме форменных элементов: эритроцитов, лейкоцитов и кровяных пластинок (у птиц, рептилий и амфибий тромбоцитов). Абсолютное количество и соотношение отдельных групп клеток в крови различных видов животных неодинаковы. Наибольшие колебания дают эритроциты: от 3,5 млн. в 1 мм 3 крови кур до 14,4 млн. в том же объёме крови коз. Несколько меньше видовые колебания количества белых кровяных телец: в 1 мм 3 крови млекопитающих содержится от 5 до 15 тыс. лейкоцитов. Количество лейкоцитов в крови птиц значительно выше: у кур, например оно, доходит до 35 тыс., а у гусей до 38 тыс. в 1 мм 3. Наконец, содержание кровяных пластинок в 1 мм3 крови колеблется от 200 до 400 тыс.

В крови, взятой из различных участков сосудистой системы, находится далеко не одина- ковое количество кровяных телец, особенно, и это наиболее важно, лейкоцитов. Значительно колеблется при этом и соотношение отдельных форм белой крови (табл.1,2).

Таблица1

Количество лейкоцитов в различных участках кровяного русла у кроликов

 

Название органа или сосуда, ткани%Название органа или сосуда, ткани%Паренхима печени 83,9Лёгкие .74,4Паренхима селезенки385, 3Vena. Pulmon.43,9Почки103,8Мышцы сердца61,7Надпочечники73,8Костный мозг128,29Vena mesent.89,0Vena. femoralis62,4Art. mesent.84,4Аrt . femoralis69,9Vena cava caud.4.9Vena. renalis60,5Если принять среднее количество лейкоцитов в 1 мм3 крови из ушной вены за 100%, то в крови из сосудов других органов содержится:

Поэтому важно брать кровь для анализа всегда из одного и того же сосуда или группы сосудов. У всех сельскохозяйственных млекопитающих таким местом являются вены уха, у кур гребень, у уток и гусей мякоть ступни ноги.

 

Таблица 2 Состав белой крови свиней

 

Кровь БазофилыЭозино-филыНейтрофилыЛимфо-цитыМоноцитыЮныеПалочко

ядерные.Сегменто

ядерные.Из вены уха

0,5

2,5

1,0

5,5

31,5

55,5

3,5

 

Из сердца

до 0,1

0,4

1,0

10,0

62,0

24,5

4,0

Количество лейкоцитов зависит и от физиологического состояния животного.

У многих сельскохозяйственных и лабораторных животных заметно выражены пищеварительный лейкоцитоз (особенно у собаки), менее у лошади, и колебания количества лейкоцитов и (особенно) эритроцитов при мышечной работе. При некоторых патологических состояниях имеет место ретенция белых кровяных телец в сосудах печени и надпочечника. Лейкоцитоз наблюдается также во второй половине беременности.

Место взятия крови тщательно выстригается и если нужно, промывается водой с мылом, затем спиртом (или спиртом с эфиром). Рекомендуется тщательно растирать место взятия крови ваткой со спиртом и эфиром, что вызывает местную гиперемию и вместе с тем помогает избежать случайных колебаний лейкоцитарной формулы, связанных с некоторым застоем крови в мелких венах уха. Особенно следует иметь в виду возможное избирательное скопление в них эозинофилов.

Хорошие мазки крови можно получить только на очень чистых, обезжиренных предметных стёклах, тщательно промытых сначала горячей водой с мылом, а затем, после высушивания, спиртом с эфиром. Промывание в спирте с эфиром особенно важно для полного обезжиривания стёкол. Если используются уже бывшие в употреблении стёкла, то их необходимо предварительно прокипятить в воде с содой.

Прокол тканей для получения крови лучше всего производить иглой Франка, но можно употреблять и обыкновенную иглу или специальное перо для уколов.

Первую выступившую на поверхность каплю крови быстро и тщательно стирают с места укола, а из второй и последующих приготовляют мазки.

Приготовление мазка крови. Чистое предметное стекло держат, как показано на рисунке 1, между большим и средним пальцами левой руки. В правой руке, теми же или большим и указательным пальцами держат чистое покровное или тонкое шлифованное предметное стекло. По крайней мере, одно ребро таких стёкол должно быть уже ширины тог