Профилактическая эффективность фитопрепаратов при патологии послеродового периода у высокопродуктивных молочных коров
рогов матки коров под воздействием фитопрепаратов из вышеуказанных растений, мы определи фоновый характер сокращения мышечных структур миометрия. В результате этих исследований установлено, что фоновые сокращения отрезков рогов матки мелкие, их частота в среднем составила 6 сокращений в мин. с высотой амплитуды 0,15 см и полной волной сокращения 0,21 мин., при индексе сокращения матки 0,17 и интервалом между сокращениями 6,67 сек.Чувствительность мускулатуры отрезков рогов матки коров к изучаемым фитопрепаратам оказалась неодинаковой и зависела не только от используемого препарата, но и его концентрации.
Под действием фитопрепарата пастушьей сумки в разведении от 1:100 до 1:10 происходит постепенное повышение тонуса и увеличение амплитуды сокращений отрезков рогов матки. Так, при разведении 1:10 количество сокращений в 1 мин достигает 1, высота амплитуды 1,7 см и полная волна сокращений 0,58 мин., индекс сокращений матки - 0,99, при разведении 1:50 сократительная активность отрезков рогов матки коров понижается и составляет 2 сокращения в минуту при высоте амплитуды 0,7 см и длине волны 0,42 мин., индекс сокращения равен 0,58. При разведении 1:100 воздействие препарата на сокращения миометрия слабо выражены и сопровождаются высотой амплитуды 0,5 см и полной волной сокращений 0,25 мин., с индексом сокращения 0,23, частота сокращений составляет 3 в минуту.
Воздействие фитопрепарата крапивы на сократительную деятельность мышечных волокон матки интенсивнее, чем фитопрепарата пастушьей сумки. При этом так же, как и в предыдущем случае, с понижением концентрации препарата снижается и сократительная активность отрезков рогов матки коров.
При разведении фитопрепарата крапивы 1:10 количество сокращений в минуту равно одному, при высоте амплитуды 2,2 см, волне сокращения 0,75 мин, индексе сокращений 1,65. При разведении 1:50 сокращения мышечных волокон в минуту равны трем, высота амплитуды - 0,7см, полная волна сокращений 0,58, индекс сокращений – 0,87, а при разведении 1:100 число сокращений в минуту равно 4 при высоте амплитуды 0,5см и длине волны 0,25мин, индексе сокращений 0,5.
Как следует из вышеуказанных данных, более высокие степени разведения изучаемых препаратов фактически не влияют на сократительную деятельность отрезков рогов матки коров.
Таким образом, на основании полученных данных по изучению влияния фитопрепаратов крапивы и пастушьей сумки на сократительную деятельность отрезков рогов матки коров, можно заключить, что исследуемые фитопрепараты активизируют сокращение мышечных структур отрезков рогов матки коров. Наиболее активное воздействие на волокна миометрия фитопрепараты оказывают в разведении 1:10, а при понижении концентрации активизация сократимости существенно ослабевает. Однако, влияние фитопрепарата крапивы на сократительную деятельность миометрия более выражено, чем у препарата пастушьей сумки при каждой степени разведения.
Поскольку фитопрепараты крапивы двудомной и пастушьей сумки обладают миотоническим эффектом, то мы посчитали целесообразным изучить влияние вышеуказанных препаратов на морфологические, иммуно-биохимические и гемастазиологические параметры крови и течение послеродового периода высокопродуктивных молочных коров.
2.2.4 Профилактическая эффективность фитопрепаратов при патологии послеродового периода у высокопродуктивных молочных коров
Патология родов и послеродового периода у коров широко распространена в молочном скотоводстве. В Ульяновской области в последние годы заболевания половых органов после отела наблюдается более чем у 41% рожениц, и безусловно, причиняют хозяйствам весьма ощутимый экономический ущерб. Поэтому, мероприятия, направленные на профилактику послеродовых осложнений, приобретают особую актуальность.
Чаще всего патологическое течение пуэрперия наблюдается в зимне-весеннее время при несбалансированном кормлении, гиподинамии и недостаточной инсоляции, что приводит к затяжным родам на фоне атонии и гипотонии маточной мускулатуры, задержанию последа и субинволюции половой сферы. Кроме того, патологии послеродового периода предшествуют гемодинамические, иммунологические нарушения в процессе беременности.
Для профилактики акушерско-гинекологической патологии предложено не мало способов. Это и методы физиотерапевтического воздействия – активный моцион, массаж матки и яичников, облучение животных ультрафиолетовыми лучами. Предложены методы повышающие естественную резистентность и препараты усиливающие сократительную способность миометрия, так как заболевания послеродового периода развиваются на фоне пониженной сопротивляемости организма и снижении сократительной активности матки.
М.А. Костына (1988), Н.И. Полянцев, А.Н. Синявин (1989), В.Н. Кальницкий (1990), А.Я. Батраков (1991, 1996), Е.В. Ильинский (1991), А.Х. Ибрагимова (1993), А.И. Краевский (1994), Т.Е. Григорьева и др. (1994), А.Г. Нежданов (1996), М.В. Назаров (1997), Ю.Н. Леонтьев (2000), М.Г. Зухрабов (2002), Э.Н. Грига (2003) рекомендуют для профилактики осложненного течения пуэрперального периода использовать естественные факторы, а именно, своевременный запуск, соблюдение норм кормления и содержания в сухостойный период, создание оптимальных условий для родов, предоставление активного моциона с 4-го дня после отела.
По свидетельству Л.Н. Адамушкиной (1989), Я.И. Ажипа (1981), А.А. Батракова (1996), общепрофилактические мероприятия репродуктивных органов у коров складываются из балансирования рационов сухостойных коров, представления активных прогулок, соблюдения санитарно-гигиенических условий во время и после родов. Специальные мероприятия должны включать использование УВЧ-терапии, УФ-облучения и др.
Для профилактики послеродовых осложнений Э.Н. Грига (2003) предлагает вводить в рацион сухостойных коров травяную муку из люцерны и организовывать активный моцион. При этом частота возникновения патологий не превышает 5,2%.
Поскольку сложившаяся ситуация во многих хозяйствах не позволяет соблюдать комплекс общих мероприятий по профилактике заболеваний послеродового периода, то частота их возникновения значительно повышается и оправданным является применение средств фармакопрофилактики.
А.М. Белобороденко, Т.А. Белобороденко (1996) с этой целью рекомендуют использовать сапропелевые грязи и препарат пеллоидин, применение которых уменьшало процент послеродовых заболеваний.
А применение селеносодержащего препарата и споробактерина, по данным Н.И. Полянцева (1996), позволяет снизить заболевания послеродового периода до минимума.
Широко применяются в ветеринарной практике и гормональные препараты, в частности, гормоны задней доли гипофиза (окситоцин, питуитрин) и эстрогенные гормоны (синэстрол, фолликулин). Но назначение гормональных препаратов должно быть строго индивидуальным для каждого животного, поскольку частое их применение в завышенных дозах приводит к гиперплазии тканей яичников и образованию кист.
Поскольку данные литературы по профилактике послеродовых осложнений зачастую имеют противоречивый характер, а применение некоторых средств приводит к большим экономическим и временным затратам на проведение профилактических мероприятий, то мы решили испытать экологически безопасные препараты приготовленные из растительного сырья, корригирующие иммунологическую реактивность организма коров после отела, активизирующие сократительную способность миометрия, что будет способствовать скорейшему восстановлению воспроизводительной способности коров.
2.2.4.1 Влияние фитопрепаратов на морфо-биохимические, иммунологические и гемостазиологические параметры крови у коров в послеродовом периоде
Для профилактики послеродовых осложнений мы испытывали настои травы крапивы и пастушьей сумки, которые вводили в седалищно-прямокишечные ямки с двух сторон по 120 ml двукратно: в день отела и через 24 часа повторно. Перед началом опыта проводили клиническое исследование коров, отелившихся не позднее 3-6 часов назад. При этом температура, пульс, дыхание находились в пределах физиологической нормы (табл. 20). Количество руминаций у животных контрольной группы и первой опытной несколько ниже нормы, а во второй опытной находились на нижних границах нормы. Наружным осмотром и вагинальным исследованием установили, что вульва отечна, из половой щели выделялись в небольшом количестве околоплодные воды светло-красного цвета с включениями сгустков крови. Слизистая оболочка влагалищиа и влагалищной части шейки матки гиперемирована.
Как видно из таблицы, у всех рожениц в ранний послеродовой период содержание гемоглобина и лейкоцитов соответствует нижним границам нормы, количество эритроцитов понижено, что связано с некоторой кровопотерей во время родов.
Таблица 20. Клинико-морфологические параметры крови коров после отела до введения препаратов
| Показатели | Норма | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опыт- 1 (паст. сумка) |
Опыт-2 (крапива) | ||
| Температура, °С | 37,5-39,5 | 38,84±0,11 | 38,75±0,90 | 38,8±0,03 |
| Пульс, уд/мин | 50-80 | 62,4±1,49 | 62,67±1,41 | 21,82±0,52 |
| Дыхание, дв/мин | 12-25 | 19,8±0,53 | 19,87±0,72 | 19,09±0,56 |
| Руминация, за 2 мин | 2-4 | 1,53±0,29 | 1,60±0,31 | 2,55±0,16 |
| Гемоглобин, г/л | 99,0-129,0 | 99,64±0,78 | 99,36±0,86 | 99,28±1,02 |
| Эритроциты, 1012/л | 5,0-7,5 | 3,86±0,12 | 3,87±0,14 | 3,91±0,12 |
| Лейкоциты, 109/л | 8,25 | 7,93±0,06 | 7,95±0,05 | 7,97±0,04 |
| Лейкограмма, % | ||||
| Базофилы | 0-2 | 1,18±0,30 | 1,16±0,29 | 1,16±0,31 |
| Эозинофилы | 3-8 | 3,45±0,45 | 3,47±0,26 | 3,51±0,72 |
| Нейтрофилы | ||||
| Юные | 0-0,1 | 0,18±0,12 | 0,18±0,12 | 0,18±0,12 |
| Палочкоядерные | 2-5 | 5,82±0,40 | 5,67±0,45 | 5,84±0,42 |
| Сегментоядерные | 20-35 | 33,45±0,68 | 33,64±0,31 | 33,87±0,58 |
| Лимфоциты | 40-75 | 50,87±0,87 | 51,12±0,72 | 50,94±0,70 |
| Моноциты | 2-7 | 4,73±0,36 | 4,76±0,27 | 4,50±0,28 |
В лейкоформуле установили, что содержание базофилов, юных и палочкоядерных форм нейтрофилов превышает установленную норму, а в содержании эозинофилов, сегментоядерных форм нейтрофилов, лимфо- и моноцитов отклонений от нормы нет.
Таблица 21. Биохимические и иммунологические показатели крови коров после отела доведения препаратов
| Показатели | Норма | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная - 1 (паст. сумка) |
Опытная – 2 (крапива) | ||
| Общий кальций, ммоль/л | 2,51 | 2,39±0,02 | 2,38±0,06 | 2,39±0,04 |
| Неорганический фосфор, моль/л | 1,48 | 1,4±0,04 | 1,38±0,05 | 1,47±0,05 |
| Рез. щелочность, об% СО2 | 50-62 | 44,00±0,54 | 44,18±0,55 | 45,09±0,31 |
| Общий белок, г/л | 60-85 | 69,64±0,40 | 69,82±0,38 | 69,54±0,41 |
| Белковые фракции,% | ||||
| Альбумины | 30-50 | 39,55±0,44 | 39,73±0,45 | 38,10±0,36 |
| Глобулины: | ||||
| α | 12-20 | 16,00±0,23 | 16,00±0,23 | 16,24±0,38 |
| β | 10-16 | 16,27±0,24 | 15,73±0,24 | 16,34±0,16 |
| γ | 25-40 | 28,18±0,23 | 29,00±0,38 | 29,32±0,33 |
| Каротин, мкмоль/л | 5,49 | 3,32±0,35 | 3,16±0,21 | 3,44±0,50 |
| Иммуноглобулины, mg/dl | ||||
| А | 191,27 | 109,91±1,2 | 109,91±1,07 | 108,93±1,21 |
| М | 120,0 | 107,82±1,38 | 108,91±1,27 | 106,87±1,25 |
| G | 1209,1 | 1057,27±13,57 | 968,91±16,33 | 1034,45±12,22 |
Как видно из таблицы 21, при биохимическом исследовании крови высокопродуктивных молочных коров в ранний послеродовой период, отмечаются некоторые изменения по сравнению с показателями здоровых животных (норма). Так, у рожениц всех групп в сыворотке крови понижен уровень общего кальция, неорганического фосфора, резервной щелочности. В содержании общего белка и белковых фракций, альбуминов и глобулинов, у подопытных животных всех групп отклонений от нормы нет, однако количество бета-глобулинов у курируемых коров контрольной и второй опытной групп превышает показатели нормы, а в первой опытной группе находится на верхних границах ее.
Кроме того, у всех наблюдаемых коров, понижено содержание каротина, по сравнению с нормой, и иммуноглобулинов А, М, G.
Определенные тенденции отмечаются и в системе гемостаза (таб.22),
Таблица 22. Гемостазиологические показатели крови коров после отела до введения препаратов
| Показатели | Группы животных | |||
| Норма | Контрольная |
Опытная - 1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| ВСК, сек. | 375,00 | 317, 18±1,38 | 317,00±1,28 | 321,45±2,06 |
| Протромбиновое время, сек. | 31,00 | 37,45±0,92 | 34,45±0,94 | 36,78±0,86 |
| Тромбоциты, 109/л | 260,0-700,0 | 453,64±8,36 | 453,82±8,58 | 458,12±7,29 |
| Фибриноген, г/л | 6,28 | 5,36±1,1 | 5,36±1,1 | 5,29±0,97 |
| Фактор XIII, сек. | 94,00 | 52,18±1,29 | 52,27±1,34 | 53,01±1,42 |
| Фибринолиз, % | 2,2 | 2,00±0,05 | 1,99±0,04 | 1,97±0,04 |
| Рекальцификация плазмы, сек. | - | 66,18±1,25 | 66,36±1,44 | 67,23±1,38 |
|
Толерантность пла- змы к гепарину, сек. |
- | 136,91±2,21 | 136,36±1,95 | 137,23±2,31 |
так время свертывания крови у всех подопытных животных меньше показателей номы. Протромбиновое время хотя и превышает данные здоровых животных, но все же гораздо ниже чем у высокопродуктивных коров до отела. Та же тенденция наблюдается и во времени рекальцификации плазмы, у коров в послеродовой период этот показатель меньше, чем до родов. Такие изменения в системе гемостаза указывают на активизацию свертывающей системы крови рожениц в ранний послеродовой период.
У курируемых животных количество тромбоцитов находилось в пределах физиологических норм, хотя несколько превышало показатели до родов. В содержании фибриногена отмечалась обратная тенденция, его уровень у коров после родов по сравнению с данными здоровых животных понижен, что связано с активными процессами тромбообразования в сосудах плацентарной площадки.
Пониженная активность фибрин-стабилизирующего фактора и довольно высокий уровень фибринолитической активности у рожениц свидетельствуют об активизации не только свертывающей, но и противосвертывающей системы крови, что является компенсаторным процессом и препятствует возникновению внутрисосудистого свертывания крови. Подтверждаются эти данные и показателями толерантности плазмы к геперину. Как видно из таблиц 22 и 19 толерантность плазмы к гепарину в ранний послеродовой период снижается, по сравнению с показателями до родов. Это так же объясняется компенсаторными процессами, происходящими в организме рожениц и препятствующими развитию ДВС-синдрома.
Парентеральное введение настоев трав крапивы и пастушьей сумки с целью профилактики послеродовых осложнений оказывали положительное действие на основные клинические параметры, морфо-биохимические, иммунологические и гемостазиологические показатели.
Как видно из таблицы 23, парентеральное введение настоев трав вызывало повышение общей температуры на 0,12-0,17°С, пульса на 2,18-2,46 уд/мин, и дыхания на 1,09-1,54 дв/мин, у коров опытных групп, по сравнению с контрольными животными, однако разница в показателях оказалась недостоверной.
Таблица 23. Клинические показатели и морфологические параметры крови коров через 6 часов после введения препаратов
| Показатели | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная -1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| Температура, °С | 38,92±0,15 | 39,04±0,12 | 39,08±0,13 |
| Пульс, уд/мин | 62,18±1,82 | 64,36±2,5* | 64,64±1,2* |
| Дыхание, дв/мин | 20,4±2,20 | 21,73±1,34 | 22,18±0,36* |
| Руминация, за 2 мин | 1,91±0,25 | 2,73±0,27 | 2,91±0,28* |
| Гемоглобин, г/л | 99,64±0,78 | 103,36±0,80** | 107,73±1,41*** |
| Эритроциты, 1012/л | 3,86±0,12 | 4,47±0,09*** | 4,61±0,08*** |
| Лейкоциты, 109/л | 7,93±0,006 | 8,13±0,05* | 8,12±0,05* |
| Лейкограмма, % |
| Базофилы | 1,18±0,30 | 1,09±0,28 | 0,82±0,26 |
| Эозинофилы | 3,45±0,45 | 4,82±0,35* | 4,82±0,26* |
| Нейтрофилы: | |||
| Юные | 0,18±0,12 | 0,18±0,12 | 0,27±0,14 |
| Палочкоядерные | 5,81±0,40 | 5,09±0,34 | 5,18±0,23 |
| Сегментоядерные | 33,82±0,68 | 30,35±0,9* | 30,64±0,92* |
| Лимфоциты | 50,82±0,87 | 53,25±1,34 | 53,45±1,00 |
| Моноциты | 4,73±0,36 | 5,00±0,27 | 4,82±0,23 |
Увеличивалось в опытных группах и число руминаций, так у коров, которым вводили настой пастушьей сумки число руминаций по сравнению с контрольными животными возросло на 0,82, хотя разница была недостоверной. У коров, которым вводили настой крапивы, число руминаций по сравнению с контрольной группой увеличилось на 1 сокращение (Р<0,05).
Через 6 часов после введения препарата в опытных группах достоверно повышался уровень гемоглобина соответственно на 3,72 г/л (3,73%) (Р<0,01) и 8,09 г/л (8,12%) (Р<0,001). Аналогичные явления отмечали и по содержанию в крови эритроцитов: у опытных животных их оказалось больше чем в контроле соответственно на 0,6х1012/л (15,54%) и 0,75х1012/л (19,43%) (Р<0,001). Увеличивалось и количество лейкоцитов на 0,2-0,19х109/л или 2,52-2,40% (Р<0,05).
При этом в лейкоцитарной формуле обнаруживалось следующее: в пределах допустимых норм уменьшалось количество базофилов, палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов у коров опытных групп, соответственно, на 0,14-0,41% и 0,71-0,82%, хотя при статистической обработке разница и не была достоверной. Количество сегментоядерных нейтрофилов достоверно снижалось на 2,5-2,81% (Р<0,05).
Содержание эозинофилов, лимфоцитов и моноцитов у опытных коров в обеих группах было выше, чем в контроле, при этом эозинофилов достоверно больше на 1,37% (Р<0,05), лимфоцитов – на 2,45-2,63%, моноцитов – на 0,27-0,09%, однако разница в этих показателях между опытными и контрольной группами оказалась не достоверной.
Выше полученные данные свидетельствуют о том, что парентеральное введение настоев трав улучшают качественный состав крови, а именно: повышают содержание гемоглобина и эритроцитов, лейкоцитов. Большее содержание эозинофилов, лимфоцитов и моноцитов свидетельствует об активизации защитных систем организма опытных животных. Причем у коров второй опытной группы, которым вводили настой крапивы, позитивные изменения морфологического состава крови были более выражены.
У курируемых животных изучались и некоторые биохимические и иммунологические параметры.
Таблица 24. Биохимические и иммунологические показатели крови коров после отела через 6 часов после ведения препаратов
| Показатели | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная-1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| Общий кальций, ммоль/л | 2,41±0,03 | 2,33±0,08* | 2,31±0,02* |
| Неорганический фосфор, моль/л | 1,36±0,04 | 1,38±0,05 | 1,40±0,04 |
| Рез. щелочность, об% СО2 | 44,00±0,54 | 46,00±0,05* | 48,00±0,54** |
| Общий белок, г/л | 69,64±0,4 | 71,91±0,81** | 72,09±0,39** |
| Белковые фракции,% | 1,47±0,05 | ||
| Альбумины | 39,55±0,44 | 41,01±0,57 | 42,18±0,63* |
| Глобулины | |||
| α | 16,00±0,23 | 14,45±0,31 | 13,55±0,25** |
| β | 16,27±0,24 | 14,45±0,34 | 13,82±0,18** |
| γ | 28,18±0,23 | 30,09±0,28* | 30,45±0,37* |
| Каротин, мкмоль/л | 3,22±0,09 | 3,25±0,10 | 3,36±0,07 |
| Иммуноглобулины, mg/dl | |||
| А | 109,91±1,2 | 121,73±2,7*** | 127,82±1,03*** |
| М | 107,73±1,40 | 115,36±1,77** | 118,45±0,62*** |
| G | 1057,27±13,57 | 1102,82±8,14** | 1126,64±1,16*** |
Из таблицы 24 видно, что спустя 6 часов после введения настоев в сыворотке крови опытных животных достоверно уменьшалось содержание общего кальция на 0,08-0,10 ммоль/л или 3,32-4,33% (Р<0,05). Концентрация неорганического фосфора в сыворотке крови коров опытных групп превосходила показатели контрольной на 0,02 (1,47%) и 0,04 (2,94%) ммоль/л, однако при статистической обработке разница оказалась не достоверной. Уровень щелочного резерва у опытных животных также превосходил показатели контрольной группы соответственно на 2 об% СО2 (Р<0,05) и 4 об% СО2 (Р<0,01), или соответственно на 4,54 и 9,09%. Та же тенденция наблюдалась и в содержании каротина: его количество у коров опытных групп превышало показатели контрольной группы на 0,03-0,14 мкмоль/л (0,93-4,35%), хотя разница при статистической обработке и не была достоверной.
У опытных коров повышалось и содержание белка соответственно на 2,27 (3,26%) г/л и 2,45 (3,52%) г/л (Р<0,01) по сравнению с коровами контрольной группы. Аналогичные явления отмечали в содержании гамма-глобулинов. Животные опытной группы превосходили по вышеуказанному показателю контрольную группу соответственно на 1,91-2,27% (Р<0,05). Полученные данные позволяют заключить, что применение настоев трав улучшает некоторые биохимические показатели крови.
При использовании любого средства патогенетической терапии большое значение имеет его влияние на иммунную систему организма. Поэтому мы провели исследование уровня иммуноглобулинов А, М, G в сыворотке крови у коров в раннеотельный период до и после введения настоев трав. Так, через 6 часов после инъекции настоев у коров опытных групп уровень иммуноглобулинов в сыворотке крови оказался достоверно выше по сравнению с контролем соответственно, IgA на 11,82-17,91 mg/dl или 10,75-16,29% (Р<0,001); IgM на 7,63 mg/dl (Р<0,01) и 10,63 mg/dl (Р<0,001) или, соответственно, на 6,99% и 9,86%; IgG на 45,55 mg/dl (Р<0,01) и 69,37 mg/dl (Р <0,001), или соответственно, на 4,31% и 6,56%.
Позитивные сдвиги наблюдались и в системе гемостаза. У опытных животных активизировалась коагуляционные и антикоагуляционные свойства крови.
Послеродовый гемостаз осуществляется в организме самок за счет усиленного тромбообразования в сосудах плацентарной площадки и сокращения волокон миометрия. Эти процессы взаимосвязаны, то есть без активизации свертывающей системы крови не происходит качественной ретракции мышечных волокон матки, вследствие образования в миометрии гематом (В.П. Скипетров, 1976). Поэтому состояние свертывающей и противосвертывающей систем крови позволяет предвидеть развитие послеродовых осложнений.
Таблица 25. Гемостазиологические показатели крови коров после отела через 6 часов после ведения препаратов
| Показатели | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная-1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| ВСК, сек. | 417, 18±1,38 | 402,02±4,88* | 398,91±3,44*** |
| Протромбиновое время, сек. | 36,55±0,92 | 34,55±0,59* | 34,45±0,64* |
| Тромбоциты, 109/л | 453,64±8,36 | 630,45±1,37*** | 633,64±0,94*** |
| Фибриноген, г/л | 5,36±0,11 | 3,37±0,063*** | 3,59±0,046*** |
| Фактор XIII, сек. | 52,18±1,29 | 49,64±1,07 | 50,00±0,69 |
| Фибринолиз,% | 2,00±0,05 | 1,67±0,06 | 1,73±0,04 |
| Рекальцификация плазмы, сек. | 66,18±1,25 |
60,91±1,44* |
57,18 ±1,03*** |
|
Толерантность пла- змы к гепарину, сек. |
136,91±2,21 | 127,73±0,90* | 129,18±0,67*** |
Как видно из таблицы 24, у коров опытных групп достоверно уменьшалось время свертывания крови соответственно на 15 (Р<0,05) и 19 (Р<0,001) секунд. Протромбиновое время укорачивалось на 2-2,1 секунды (Р<0,05). Это свидетельствовало об усилении тромбопластической активности крови.
Во время родов и в ранний послеродовой период снижается количество тромбоцитов в кровяном русле. Это связано с активной их миграцией в зону соединения детской и материнской частей плаценты, их агрегации и агдезии без чего не возможно полноценное тромбообразование в сосудах плацентарной площадки. Но у опытных животных не смотря на активизацию свертывающей системы крови, количество тромбоцитов превосходит показатели контрольных. В контрольной группе количество тромбоцитов в кровяном русле через 8-12 часов после отела было меньше показателей опытных групп на 176,81-180х109/л или 38,98-39,68% (Р<0,001). Это по-видимому связано с мобилизацией тромбоцитов из кровяного депо. Накапливаясь в кровяном русле тромбоциты переходят в ткани матки, их повышенное содержание способствует длительности мышечного напряжения миометрия (наступает миогенный тромбоцитоз).
Количество фибриногена у коров опытных групп достоверно понижалось в следствие более активного тромбообразования в сосудах плацентарной площадки. Так, у коров контрольной группы количество фибриногена составило 5,36±0,11 г/л, в то время как у опытных животных было ниже соответственно на 1,99 и 1,77 г/л, то есть на 34,25-33,05% (Р<0,001).
Активность фибринстабилизирующего фактора при применении настоев трав повышалось, хотя разность в показателях опытных и контрольных животных не была достоверной.
Несмотря на активизацию свертывающей системы крови у коров опытных групп, фибринолитическая активность этих животных практически не отличалась от показателей контрольной группы. Активность фибринолитической системы является защитной реакцией организма, направленной на предупреждение внутрисосудистого свертывания крови. Наши исследования доказывают, что парентеральное введение настоев трав не угнетают процессов фибринолиза.
Время рекальцификации плазмы у опытных животных было достоверно ниже, чем в контрольной группе соответственно на 5,27 секунд (Р<0,05) и 9секунд (Р<0,001), что свидетельствовало об активизации свертывающей системы крови у коров опытных групп.
Толерантность плазмы к гепарину у всех животных в ранний послеродовой период усиливалась, что свидетельствует об активизации противосвертывающей системы крови. Но у животных опытной группы толерантность плазмы к гепарину была ниже, чем в контроле на 9,18-7,73 секунды (Р<0,001). Это говорит о компенсаторных процессах, происходящих в организме опытных животных и препятствующих развитию ДВС-синдрома.
Таким образом, приведенные выше данные свидетельствуют о том, что парентеральное введение настоев крапивы и пастушьей сумки повышают основные клинические показатели, содержание в крови опытных животных гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов, а в лейкоформуле способствуют повышению эозинофилов, лимфоцитов и моноцитов, при снижении палочкоядерных и сегментоядерных форм нейтрофилов, что свидетельствует о способности препаратов лекарственных растений повышать иммунобиологические свойства организма. Стимулируют увеличение в сыворотке крови неорганического фосфора, резервной щелочности и общего белка, что свидетельствует об активизации обменных процессов. А повышение уровня иммуноглобулинов А, М, G в сыворотке крови опытных животных свидетельствует о том, что, данные настои обладают способностью усиливать общую резистентность к неблагоприятным факторам.
Как видно из таблицы 26, на 5-й день послеродового периода у коров, которым вводили настои трав температура тела была незначительно выше, чем в опытной группе на 0,2-0,23 °С. Частота сердечных сокращений хотя и не превышала границ физиологической нормы, все же была выше у опытных животных. У коров, которым вводили двукратно настой пастушьей сумки, частота пульса составила 62,27±2,58 уд/мин, что на 0,82 удара больше, чем в контрольной группе, хотя разница в показателях и недостоверна. У животных,
Таблица 26. Клинические показатели и морфологические параметры крови коров на 5 день послеродового периода
| Показатели | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная-1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| Температура, °С | 38,81±0,15 | 39,01±0,13 | 39,04±0,8 |
| Пульс, уд/мин | 61,45±2,33 | 62,27±2,58 | 62,55±1,68 |
| Дыхание, дв/мин | 19,8±1,75 | 21,45±1,)4 | 21,82±1,23 |
| Руминация, за 2 мин | 2,00±0,23 | 2,5±0,28 | 2,67±0,28 |
| Гемоглобин, г/л | 100,00±1,33 | 104,82±0,54** | 107,09±0,49*** |
| Эритроциты, 1012/л | 4,15±0,13 | 4,70±0,07* | 4,77±0,1* |
| Лейкоциты, 109/л | 7,93±0,07 | 8,16±0,06* | 8,22±0,04* |
| Лейкограмма, % | |||
| Базофилы | 1,36±0,311 | 1,18±0,18 | 0,18±0,12** |
| Эозинофилы | 4,09±0,48 | 5,45±0,37* | 5,73±0,30** |
| Нейтрофилы | |||
| Юные | 0,1±0,09 | 0,1±0,09 | 0,00±0,0 |
| Палочкоядерные | 5,73±0,36 | 3,36±0,39** | 4,55±0,16* |
| Сегментоядерные | 33,00±0,69 | 29,09±1,10* | 27,45±0,84*** |
| Лимфоциты | 51,00±0,50 | 55,82±0,60*** | 56,45±0,72*** |
| Моноциты | 4,73±0,36 | 5,00±0,47 | 5,64±0,24* |
которым двукратно вводили настой крапивы частота пульса превышала показатели контрольных животных на 1,1 уд/мин.
Число дыхательных движений и руминаций у опытных коров было выше, чем у контрольных, хотя разница в показателях и не была достоверной.
Количество гемоглобина достоверно выше у коров опытных групп соответственно на 4,82 (4,82%) г/л (Р<0,01) и 7,09 (7,09%) г/л (Р<0,001). Та же тенденция отмечается и в содержании эритроцитов и лейкоцитов: показатели опытных коров обеих групп выше контрольных соответственно на 0,55-0,62х1012/л (13,25-14,94%) (Р<0,05) и 0,23-0,29х109/л (2,9-3,66%) (Р<0,05).
Изменения в лейкоформуле, носили тот же характер, что и через 6 часов после введения препаратов, хотя протекали более выражено. Так, количество базофилов, нейтрофилов сегментоядерных и палочкоядерных у коров контрольной группы было достоверно больше, чем в первой опытной группе, соответственно, базофилов на 0,18%, сегментоядерных нейтрофилов – на 3,91% (Р<0,05), палочкоядерных – на 2,37% (Р<0,01). При этом снижалось содержание эозинофилов на 1,36% (Р<0,05), лимфоцитов - на 5,82% и моноцитов – на 0,27%. В показателях между контрольной и второй опытной групп разница более выражена. Так, в крови коров второй опытной группы содержание базофилов, нейтрофилов палочко- и сегментоядерных форм достоверно ниже, по сравнению с контрольными животными, соответственно на 1,18% (Р<0,05), 1,18% (Р<0,05) и 5,55% (Р<0,001). А количество эозинофилов, лимфоцитов и моноцитов превышает данные контрольной группы, соответственно, на 1,64% (Р<0,01), 6,45 % (Р<0,001) и и 0,91% (Р<0,05). Эти явления свидетельствовали об аллергической настроенности организма контрольных животных, вследствие синсибилизации продуктами распада задерживающихся в полости матки лохий, а также активизации иммунных процессов в крови коров, которым применяли фитопрепараты.
Как видно из таблицы 27, на 5-е сутки послеродового периода у всех рожениц повышалось содержание общего кальция. У контрольных животных количество общего кальция достоверно превышало показатели животных
Таблица 27. Биохимические и иммунологические показатели крови коров на 5 день послеродового периода
| Показатели | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная-1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| Общий кальций, ммоль/л | 2,43±0,04 | 2,32±0,03* | 2,31±0,07* |
| Неорганический фосфор, моль/л | 1,35±0,05 | 1,43±0,07 | 1,46±0,04* |
| Рез. щелочность, об% СО2 | 41,91±0,49 | 43,55±0,73 | 46,00±0,74*** |
| Общий белок, г/л | 69,64±0,28 | 72,64±0,78** | 72,73±0,86** |
| Белковые фракции,% | |||
| Альбумины | 38,73±0,28 | 40,09±0,48* | 40,27±0,27* |
| Глобулины | |||
| α | 15,45±0,16 | 14,73±0,24 | 14,45±0,34 |
| β | 16,18±0,18 | 15,27±0,38* | 15,19±0,38* |
| γ | 29,64±0,23 | 29,91±0,25 | 30,09±0,31 |
| Каротин, мкмоль/л | 3,29±0,56 | 3,94±0,51* | 4,02±0,83** |
| Иммуноглобулины, mg/dl | |||
| А | 116,00±1,64 | 121,73±1,93* | 129,64±2,31*** |
| М | 111,91±2,57 | 118,55±1,99 | 119,09±0,85* |
| G | 1017,91±26,15 | 1124,91±7,33*** | 1129,91±5,14*** |
опытных групп, соответственно на 0,11-0,12 ммоль/л или 4,53-4,94% (Р<0,05).
Содержание неорганического фосфора в опытных группах превышало показатели контроля на 0,08-0,11 (5,93-8,15%) ммоль/л, но статистически разница достоверной не была. Щелочной резерв также в опытных группах был выше. У коров, которым вводили настой пастушьей сумки - на 1,64 об% СО2, хотя разница и не была достоверной; у коров, которым вводили настой крапивы, разница по сравнению с контрольной группой составила 4,09 об% СО2 (Р<0,001).
У опытных животных было выше и содержание каротина: в первой опытной группе – на 0,73 ммоль/л или 19,76% (Р<0,001), а во второй – на 0,65 ммоль/л или 22,19% (Р<0,001).
Аналогичные явления наблюдали и в содержании общего белка, альбуминов и гамма-глобулинов. Количество общего белка у контрольных коров достоверно ниже показателей обеих опытных групп на 3,0-3,09 г/л (4,31-4,44%) (Р<0,05); уровень альбуминов – на 1,54-1,72% (Р<0,05). Доля гамма-глобулинов в контрольной группе составила 29,82±0,23, что на 0,09-0,18% ниже, чем в опытных группах, однако разница в показателях не достоверна.
Содержание глобулинов, в том числе альфа- и бета-глобулинов у коров опытных групп ниже, по сравнению с контрольной группой. Так, доля бета-глобулинов в первой опытной группе меньше на 0,91% (Р<0,05), во второй опытной группе – на 0,9 % (Р<0,05). Количество альфа-глобулинов соответственно на 0,72-1,0 %, хотя разница при статистической обработке оказалась не достоверной.
Позитивные явления наблюдались и в иммунологических показателях. Содержание иммуноглобулинов А, М, G у опытных животных выше, чем в контрольной группе: уровень иммуноглобулинов А соответственно на 5,73-13,64 (4,94-11,76%) mg/dl (Р<0,001); иммуноглобулинов М у коров первой опытной группы больше на 6,64 (5,93%) mg/dl, хотя разница не достоверна, у коров второй опытной группы – на 7,18 (6,42%) mg/dl (Р<0,05); иммуноглобулинов G – на 107-112 mg/dl или 10,51-11,10% (Р<0,001).
В системе гемостаза (табл. 28) мы наблюдали следующие явления: ВСК у коров опытных групп было длиннее, чем у контрольных животных на 19,46 (Р<0,01) и 11,09 (Р<0,05) секунд. Та же тенденция прослеживалась в протромбиновом времени и времени рекальцификации плазмы – показатели
Таблица 28. Гемостазиологические показатели крови коров на 5 день послеродового периода
| Показатели | Группы животных | ||
| Контрольная |
Опытная-1 (паст. сумка) |
Опытная-2 (крапива) | |
| ВСК, сек. | 407,18±4,67 | 426,64±2,27** | 418,27±2,17* |
| Протромбиновое время, сек. | 78,27±1,43 | 82,36±1,21* | 82,73±1,00* |
| Тромбоциты, 109/л | 272,73±4,95 | 288,18±1,64** | 288,36±1,38** |
| Фибриноген, г/л | 6,30±0,17 | 4,60±0,62*** | 4,41±0,59*** |
| Фактор XIII, сек. | 76,82±1,26 | 81,01±0,58** | 81,18±0,74** |
| Фибринолиз,% | 1,48±0,08 | 1,87±0,07** | 1,93±0,04** |
| Рекальцификация плазмы, сек. | 105,91±1,36 | 110,91±1,30* | 109,82±0,82* |
|
Толерантность пла- змы к гепарину, сек. |
129,73±2,12 | 135,55±0,74* | 134,55±0,85* |
в опытных группах были выше, чем в контрольной: протромбиновое время соответственно на 4,09-4,46 секунды (Р<0,05), рекальцификация плазмы – на 3,91-5,00 секунд (Р<0,05). Все это свидетельствует об активизации системы гемостаза у контрольных животных.
В контрольной группе достоверно повышалось содержание фибриногена на 1,70-1,89 г/л (Р<0,001) по сравнению с животными первой и второй опытных групп.
Уровень фибринолитической активности был ниже в контрольной группе на 0,39-0,45% (Р<0,01), а активность фибринстабилизирующего фактора больше на 4,19-4,36 секунды (Р<0,01) по сравнению с опытными животными. Толерантность плазмы к гепарину в контрольной группе была ниже, чем в опытных на 4,82-5,82 секунды (Р<0,05), что компенсирует тенденцию к активизации свертывающей системы.
Таким образом, проведенные нами исследования показывают, что у подопытных коров на 5-й день послеродового периода сохраняются позитивные изменения, наблюдаемые ранее, а именно через 6 часов после введения фитопрепаратов. Опытные животные по основным клиническим показателям превосходят контрольную группу. Та же тенденция отмечается и в содержании гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов. Причем нами установлено, что у коров опытных групп эозинофилов, лимфоцитов и моноцитов больше, чем в контрольной, что свидетельствует об активизации иммунных процессов в организме животных. Выявленная же нами у контрольных животных относительная нейтрофилия с преимущественным увеличением палочкоядерных форм, относительная лимфопения и эозинопения говорят о стрессовом состоянии животных данной группы. Позитивные сдвиги в биохимических показателях, а именно, более высокое содержание общего кальция, неорганического фосфора, щелочного резерва и общего белка свидетельствует об активизации обменных процессов опытных коров, а повышенное содержание иммуноглобулинов А, М, G говорит о повышенной иммунной реактивности животных данных групп, что особенно наглядно после двукратного введения. Кроме того, у животных, которым двукратно вводили фитопрепараты, к 5-м суткам послеродового периода отмечалось снижение активности свертывающей системы крови. В