Geum.ru

Белки клеточного цикла в отделах мозга сусликов citellus undulatus на разных стадиях гибернационного цикла

Курсовой проект - Биология

Другие курсовые по предмету Биология

?рование указанных сайтов [ 28 ]. У активных летом сусликов наблюдается самый низкий уровень уровень фосфорилирования. Известно, что белок tau аномально гиперфосфорилирован в мозге особей с болезнью Альцгеймера и других tau патологий и, как предполагают, играет важную роль в патогенезе этих заболеваний. А поскольку механизмы, приводящие к аномальному фосфорилированию tau остаются неясными, то последние наблюдения обратимого фосфорилирования этого белка во время гибернации являются идеальной физиологической моделью для изучения данного процесса in vivo.

Выводы

 

  1. Экспрессия белков клеточного цикла и Cdk 5 имеет различный уровень в исследованных отделах мозга и зависит от функционального состояния сусликов.
  2. Температура тела сусликов влияет на экспрессию белков клеточного цикла и Cdk 5 в коре больших полушарий и стволе мозга на стадиях вхождения в спячку и выхода из неё.
  3. Наличие корреляционных связей между циклинами и соответствующими киназами позволяет предположить, что в отделах мозга сусликов на стадиях вхождения в спячку и выхода из неё появляются клетки на поздних фазах клеточного цикла.

Литература

 

  1. Белоусов А.Б. Роль центральной нервной системы в контроле зимней спячки // Усп. физиол. наук. 1993. Т. 24, № 2. С. 109-126.
  2. Дарзалиа В., Хелманн У., Линдвалл О., Кокаиа З. Нейрогенез в стареющем головном мозге после инсульта // Инсульт. 2007, № 1.
  3. Демин М.М., Шортанова Т.Х., Эмирбеков Э.З. Нейрохимия зимней спячки млекопитающих. Л.: Наука, 1988. 137 с.
  4. Жегунов Г.Ф. , Микулинский Ю.Е. Активация синтеза белка в тканях сусликов при пробуждении после зимней спячки // Укр. биохим. журн. 1987. Т. 59, № 3. С. 69-73.
  5. Игнатьев Д.А., Сухова Г.С. Сухов В.П. Анализ изменений частоты сердцебиений и температуры суслика Citellus Undulatus в различных физиологических состояниях // Общая биология 2001. Т. 62, №1. С. 66-77.
  6. Калабухов Н.И. Спячка млекопитающих. М.: Наука, 1985. 259 с.
  7. Коломийцева И.К., Перепелкина Н.И., Патрушев И.В., Попов В.И. Роль липидов в сборке эндоплазматического ретикулума и диктиосом якутского суслика Сitellus undulates при гибернации // Биохимия. 2003. Т. 68, вып. 7. С. 954-967.
  8. Крепс Е.М. Липиды клеточных мембран. Л.: Наука, 1981. - С.339.
  9. Соломонов Н.Р. Основные итоги и задачи изучения зимней спячки грызунов Якутии // Эколого-физиологические характеристики природных гипометаболических состояний. Пущино, 1992. С. 29-34.
  10. Штарк М.В. Мозг зимоспящих. Новосибирск: Наука, 1970. 240 c.
  11. Шугалей Л.С. Молекулярные основы устойчивости зимоспящих животных к неблагоприятным условиям среды // Эколого-физиологические характеристики природных гипометаболических состояний: Сб. науч. тр. / Под ред. Колаевой С.Г. Пущино, 1992. С. 70-73.
  12. Эмирбеков Э.З., Львова С.П., Кличханов Н.К. Биохимические изменения в крови при искусственной и естественной гипотермии // Пробл. криобиол. 1995. - №1. С.14-21.
  13. Эмирбеков Э.З., Львова С.П., Мусаев Б.С., Мейланов И.С., Симмалавонг Сантисук, Бутаева П.Ш., Абдулаева М.З. Роль липидов мозга при гипотермии и самосогревании гомойотермных и зимоспящих животных // Биохим. аспекты холодовых адаптаций: Сб. науч. тр. - Харьков, 1991. С. 166-175.
  14. Ames I.A. CNS energy metabolism as related to function // Brain Research Rew. 2000. V. 34. P. 42-68.
  15. Azzam N.A., Hallenbeck J.M., Kachar B. Membrane changes during hibernation // Nature. 2000. V. 407. P. 317-318.
  16. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein using the principle of protein bindong // Anal. Biochem. 1976. V. 72. P. 248-254.
  17. Clarke D.D., Sokoloff L. Circulation and energy metabolism of the brain // Basic Neurochemistry: Molecular, Cellular and Meducal Aspects. Sigel G.J., Agranoff B.W., Alberts R.W., Fisher S.K., Uhler M.D. (Eds.) Phyladelphia:Lippincott Raven. 1999. P 637-669.
  18. Christina G. von der Ohe, Craig C. Garner, Corinna Darian-Smith, H. Craig Heller. Synaptic Protein Dynamics in Hibernation. // Neurosciens. 2007.- Nov 9; 149 (3).
  19. Christina G. von der Ohe, Craig C. Garner, Corinna Darian-Smith, H. Craig Heller. Ubiquitos and Temperature - Dependent. // Neurosciens. 2008.- Apr 9; 152 (4).
  20. Copani Agata; Uberti Daniela; Sortino Maria Angela; Bruno Valeria; Nicoletti Ferdinando and Memo Mauritio. Activation of cell-cycle-associated proteins in neuronal death: a mandatory or dispensable path? Trends in Neuroscience. 2001 Jan; 24 (1): 25-31.
  21. Copani А.; Sortino M. A.; Nicoletti F. and Stella Giuffrida A. M. Alzheimers Disease Research Enters a “New Cycle”: How Significant? // Neurochemical Research. 2002 Feb; 27 (Nos. 1/2): 173-176.
  22. Drew K.L., Rice M.E., Kuhn T.B., Smith M.A. Neuroprotective adaptations in hibernation: therapentic implications for ischemia-reperfusion, traumatic brain injury and neurodegenerativedislases // Free Radic. Biol. Med. 2001. V. 31. P. 563-573.
  23. Droge W. Free Radicals in the Physiological control of cell Function // Physiol. Rev. 2002. V. 82. P. 47-95.
  24. Fang Zhou, Xiongwei Zhu, Rudy J. Castellani,Raphaela Stimmelmayr, George Perry, Mark A. Smith, and Kelly L. // Drew Hibernation, a Model of Neuroprotection // American Journal of Pathology, V. 158, No. 6, June 2001.
  25. Frerichs K.U., Kennedy C., Sokoloff L., Hallenbeck J.M. Local cerebral blood flow during hibernation, a model of natural tolerance to cerebral ishemia // J Cereb Blood Flow Metab. 1996. V. 14. P. 193-205.
  26. Frerichs K.U., Hallenbeck J.M. Hibernation in ground squirrels induces stats and species-specific tolerance to hypoxia and aglycemia: an in vitro study in hippocampal slices // J. Cereb. Blood Flow. Metab. 1998. V. 18. P. 168-175.
  27. Hermes-Lima M., Zentenc-Sakin T. Animal response to drastic changes in oxygen akailability and physiological oxidative stress // Comp. Biochem. Physiol. C. Toxicol. Pharmacol. 2002. V/ 133/ - P. 537-556.
  28. Jens Thorsten Stieler, Torsten Bullman, Franziska Kohl, Brian M. Barnes, Thomas Arendt. Physiological regulation of tau phosphorylation during hibernation. // J Neural Transm. 2009 (116): 345 350.
  29. Lipton Р. Ischemic cell death in brain neurons // Physiol. Rev. 1999. V. 79. P. 1431-1568.
  30. Nagy Zs. Cell cycle regulatory failure in neurones: causes and concequences. Neurobiology of Aging. 2002 (21): 761-769.
  31. Nagy Zs.; Esiri M. M.; Cato A.-M. and Smith A. D. Cell cycle markers in the hippocampus in Alzheimers disease // Acta Neuropathol. 1997 (94): 6-15.
  32. Nurnberger F. The neuroendocrine system in hibernating mammals // Cell and Tissue. Res. 1995. V. 28. P. 391-412.
  33. Ohnuma Shin-ichi; Philpott Anna and A Harris William. Cell cycle and cell fate in the nervous system. Current Opinion in Neurobiology. 2001 (11): 66-73.
  34. Storey K.B. Turning down the fires of life: metabolic regulation of hibernation and estivation // Mol. mech. metab. Arrest. 2001. P. 1-21.
  35. Storey K.B., Storey J.M. Metabolic rate depression in animals: transcriptional and translational controls // Biol. Rev. Camp. Philos. Soc. 2004. V. 79. P. 207-233.
  36. Toien O., Drew K.L., Chao M.L., Rice M.E. Ascorbat dynamics ana oxygen consumption during arousal from hibernation in arctic ground squirrels // Am. J. Physiol. 2001. V. 281. P. 572-583.
  37. Van Brenkelen F., Martin S.L. Reversible depression of transcription dur