Geum.ru

Курсовой проект по предмету Биология

  • 1. Cигнальные пути клеток в онтогенезе животных
    Курсовые работы Биология

    Несмотря на огромный поток экспериментальных данных, некоторая ясность достигнута в понимании лишь отдельных звеньев Notch-сигнального пути. В последнее десятилетие предприняты шаги к объединению в единую систему полученных разрозненных фактов, но предлагаемые разными авторами модели могут в чем-то не совпадать. Наиболее полно Notch-путь, суть которого состоит в проведении сигнала с поверхности клетки в ядро, изучен во время эмбрионального нейрогенеза и формирования внешних сенсорных органов мухи. Согласно популярной обобщенной схеме, последовательность событий процесса латерального ингибирования на нейрогенном сигнальном пути начинается с генерации коротких ингибирующих сигналов клетками-предшественницами нейронов (рис. 1). Сигналы поступают в межклеточное пространство в виде секретируемых молекул лигандов Delta, которые воспринимаются близлежащими окружающими клетками. На клеточной поверхности воспринимающих сигнал и экспрессирующих рецептор клеток происходит взаимодействие внеклеточного домена лиганда Delta и трансмембранного рецепторного белка Notch. Белок рецептора состоит из трех доменов: внеклеточного, связывающегося с лигандом и подавляющего активность в отсутствие лиганда, внутримембранного и внутриклеточного, способного передавать сигнал к генам-мишеням. Молекула рецептора с измененной вследствие контакта с лигандом конформацией, подвергается расщеплению протеазами Kusbanian и Presenilin и, таким образом, отделению и активации его внутриклеточной части. Внутриклеточный домен Notch транспортируется в ядро и вместе с белком Suppressor of Hairless образует транскрипционный фактор, активирующий гены-мишени Enhancer of split complex. Накопление в отвечающей на сигнал клетке репрессорных белков E(SPL) последняя ступень каскада Notch, на которой происходит подавление дифференцировки клеток по нейральному пути (Mumm, Kopan, 2000; Portin, 2002).

  • 2. Vectors for moleculars cloning
    Курсовые работы Биология

    Molecular cloning refers to the process of making multiple molecules. Cloning is commonly used to amplify DNA fragments containing whole genes, but it can also be used to amplify any DNA sequence such as promoters, non-coding sequences and randomly fragmented DNA. It is used in a wide array of biological experiments and practical applications ranging from genetic fingerprinting to large scale protein production. Occasionally, the term cloning is misleadingly used to refer to the identification of the chromosomal location of a gene associated with a particular phenotype of interest, such as in positional cloning. In practice, localization of the gene to a chromosome or genomic region does not necessarily enable one to isolate or amplify the relevant genomic sequence. To amplify any DNA sequence in a living organism, that sequence must be linked to an origin of replication, which is a sequence of DNA capable of directing the propagation of itself and any linked sequence. However, a number of other features are needed and a variety of specialised cloning vectors (small piece of DNA into which a foreign DNA fragment can be inserted) exist that allow protein expression, tagging, single stranded RNA and DNA production and a host of other manipulations.

  • 3. Активные формы кислорода и антиоксидантная система
    Курсовые работы Биология

    Синглетный кислород (1О2) образуется в хлоропластах в результате взаимодействия молекулярного кислорода с хлорофиллом, возбужденным квантом света и находящимся в триплетном состоянии. Энергия, необходимая для этого перехода, составляет примерно 22 ккал/моль. В результате поглощения избыточной энергии (что часто имеет место в реальных условиях) происходит обращение спина одного электрона и формирование синглетного кислорода. Образование супероксидного анион-радикала (О2-) происходит в фотосистеме I (ФС I) и II (ФС II) хлоропластов и на комплексах дыхательной цепи в митохондриях, а также в ряде реакций, протекающих в пероксисомах (при окислении ксантина ксантиноксидазой). В ФС I появление супероксидного радикала происходит в реакции Мёллера и связано с работой 4Fe-4S-кластеров, ферредоксина и/или ферредоксин-НАДФН-редуктазы. Около 10-25% всего нециклического электронного потока может идти на образование супероксид-радикала. Генерация анион-радикала, кроме того, возможна на уровне реакционного центра ФС II, предположительно в QА и QВ сайтах. В митохондриях образование О2 - сопряжено с функционированием дыхательной электрон-транспортной цепи (ЭТЦ) во внутренней митохондриальной мембране и захватом молекулярным кислородом электронов с гемов.

  • 4. Анализ повадок отряда ДЯТЛООБРАЗНЫЕ - Piciformes семейства ДЯТЛОВЫЕ – Picidae
    Курсовые работы Биология

    Фотометрические и спектрометрические методы анализа применяются для определения многих (более 50) элементов периодической системы, главным образом металлов. Методами абсорбционной спектрометрии анализируются руды, минералы, объекты окружающей среды, продукты переработки обогатительных и гидрометаллургических предприятий. Эффективно эти методы используется в металлургической, электронной областях промышленности, в медицине, биологии, криминалистике и т.д. Большое значение они имеют в аналитиченском контроле окружающей среды и решении экологических проблем. Значительно расширились области практического применения методов абсорбционной спектроскопии благодаря более широкому использованию инфракрасной области спектра и приборов на базе ЭВМ. Это позволило разработать методы анализа сложных многокомпонентных систем без их химического разделения. Простые, быстрые и точные методы анализа имеют огромное значение для исследования различных реакций, установления состава и исследования различных химических соединений. Успехи химии координационных соединений, достижения микроэлектроники, приборостроения дают все основания ожидать дальнейшего повышения точности и чувствительности этих методов.

  • 5. Анатомические особенности строения психрофитных растений семейства вересковых
    Курсовые работы Биология

     

    1. Алексеев С.В., Беккер А.М. Изучаем экологию экспериментально. СПб.: Феникс, 1993. 201с.
    2. Алексеев Ю.Е., Баландин С.А. Энциклопедия растений России. Растения тундры. М.: Классикс Стиль, 2003. 208с.
    3. Атлас ареалов и ресурсов лекарственных растений СССР М.: ГУГК, 1976. 340с.
    4. Бавтуто Г.А., Ерей Л.М. Практикум по анатомии и морфологии растений. Минск: Новое знание, 2002. 458 с.
    5. Богданова Г.А., МуратовЮ.М., Брусника в лесах Сибири. Новосибирск: Наука, 1978. 178с.
    6. Большой атлас природы России / Под ред. М.Сергеевой, С.Бровкина. М.: Эгмонт Россия Лтд, 2003. 644 с.
    7. Боч М.С., Смагин В.А. Флора и ратительность болот Северо-запада России и Принципы их охраны. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 224с.
    8. Брусника: Морфология и анатомия. Фитоценотическая приуроченность. Урожайность. Хранение и переработка. Химический состав ягод / Юдина В.Ф., Белоногова Т.В., Колупаева С.Н. и др. М.: Наука, 1986. 73с.
    9. Бумар Г.И., Таргонский П.Н. Возрастной состав ценопопуляций Vaccinium vitis-idaea L. в Полесском государственном заповеднике (УССР) / Ратительные ресурсы. СПб.: ГУГК 1989. Т.25, вып.3. с.349-353.
    10. Викторов В.П., Гуленькова М.А., Дорохина Л.Н. и др. Практикум по анатомии и морфологии растений. М.: Академия, 2001.
    11. В краю селькупов: Красноселькупский район: природа.Люди.Экономика. экология / кол.авторов. Екатеринбург: Сред.-Урал.кн.изд-во, 2000. -200с.
    12. Ипатов В.С., Кирикова Л.А. Фитоценология. СПб.: С.-Петербургского ун-та, 1997. - 316с.
    13. Колесникова Н.А. Школьный учебно-опытный участок-лаборатория исследовательской работы учащихся. Тобольск: изд. ТГПИ, 2003. 61 с.
    14. Крылов А.Г. Жизненные формы лесных фитоценозов. СПб.: Наука, 1984. 189с.
    15. Лакин Г.Ф. Биометрия: уч.пособие. 4-е изд., перераб. И доп. М.: Высшая школа.1990. 351с.
    16. Лотова Л.И. Морфология и анатомия высших растений: Учебное пособие. Киев: Эдиториал, 2000.
    17. Мазная Е.А. Влияние промышленных выбросов на состояние и структуру ценопопуляций Vaccinium myrtillus L. И Vaccinium vitis-idaea L. (Кольский п-ов) //. Растительные ресурсы. 2001. Т.37вып.3.
    18. Медведев С.С. Физиология растений. СПб., 2004. 336 с.
    19. Минаева В.Г. Лекарственные растения Сибири. Новосибирск: Наука, 1991. 496 с.
    20. Пояркова А.И. Ericaceae // Флора СССР. Т.18 М. Л., 1952. С. 22-107.
    21. Работнов Т.А. Луговедение. М.: МГУ, 1984. 319с.
    22. Работнов Т.А. Фитоценология. М.: МГУ, 1978. 383с.
    23. Рябицев В.К., Плотников В.В., Смирнов Н.Г., Ольшванг В.Н., Богданов В.Д., Мухин В.А., Троценко Г.В., Пешкова Н.В. Природа Тюменского Севера. Свердловск: Средне-уральское книжное издательство, 1991. 432 с.
    24. Смирнова О.В. Структура травяного покрова широколиственных лесов. М.:Наука, 1987. 205с.
    25. Сокол А.П. Экологические шкалы болотных растений // Взаимосвязи компонентов лесных и болотных экосистем средней тайги Приуралья. СПб.: Наука, 1980. = С.230-240.
    26. Толмачев А.И. К истории возникновения и развития темнохвойной тайги. М.: АН СССР, 1954.
  • 6. Бактериальная система секреции белков первого типа
    Курсовые работы Биология

     

    1. H. Akatsuka, R. Binet, E. Kawai, C. Wandersman, and K. Omori. Lipase secretion by bacterial hybrid ATP-Binding Cassette Exporters: molecular recognition of the LipBCD, PrtDEF, and HasDEF exporters. // Journal of bacteriology. - 1997. Vol. 179. №15 - Р. 47544760.
    2. R. Binet, S. Le´toffe, J. M. Ghigo, P. Delepelaire, C. Wandersman. Protein secretion by Gram-negative bacterial ABC exporters a rework. // Gene. - 1997. Vol. 192. - Р. 711.
    3. W. H. Bingle, J. F. Nomellini, and J. Smit. Secretion of the Caulobacter crescentus S-Layer potein: further localization of the C-terminal secretion signal and its use for secretion of recombinant proteins. // Journal of bacteriology. - 2000. Vol. 182. №11. - Р. 32983301.
    4. P. Delepelaire, C. Wandersman. The SecB chaperone is involved in the secretion of the Serratia marcescens HasA protein through an ABC transporter. // EMBO J. - 1998. - Vol. 17. №4. - P. 936944.
    5. M. J. Fath, R. Kolter. ABC Transporters: Bacterial Exporters. // Microbiological reworks. -1993. Vol. 57. №4. - Р. 9951017.
    6. J. Hacker, J. B. Kaper. Pathogenicty islands and the evolution of microbes. // Annu. Rev. Microbiol. - 2000. Vol. 54. - Р. 64179.
    7. C. J. Hueck. Type III Protein Secretion Systems in Bacterial Pathogens of Animals and Plants. // Microbiology and molecular biology reworks. - 1998. Vol. 62. №2. - Р. 379433.
    8. S. Letoffe and C. Wandersman. Secretion of CyaA-PrtB and HlyA-PrtB Fusion Proteins in Escherichia coli: Involvement of the Glycine-rich repeat domain of Erwinia chrysanthemi protease B. // Journal of bacteriology. - 1992. Vol. 174. №15 - Р. 49204927.
    9. S. Lory. Secretion of proteins and assembly of bacterial surface organelles: shared pathways of extracellular protein targeting. // Current Opinion in Microbiology. - 1998. Vol. 1. - Р. 2735.
    10. L. M. Moreira, J. D. Becker, A. P. and A. Becker. The Sinorhizobium meliloti ExpE1 protein secreted by a type I secretion system involving ExpD1 and ExpD2 is required for biosynthesis or secretion of the exopolysaccharide galactoglucan. // Microbiology. - 2000. Vol. 146. - Р. 22372248.
    11. M. H. Saier. Families of transmembrane sugar transport proteins. // Molecular Microbiology. - 2000. - Vol. 35. №4. - P. 699710.
    12. D. G. Thanassi, S. J Hultgren. Multiple pathways allow protein secretion across the bacterial outer membrane. // Current Opinion in Cell Biology. - 2000. - Vol. 12. - Р. 420430.
  • 7. Бактериальные болезни насекомых
    Курсовые работы Биология

    Название, препаративная форма, содержание д.в., регистрант, классы опасности, номер государственной регистрации, ограничения, дата пере регистрации (число, месяц, год).Норма применения препарата (л/га, кг/га, л/т, кг/т)Культура, обрабатываемый объектВредный объектСпособ, время обработки, особенности примененияСрок ожидания (кратность обработок)Сроки выхода для руч ных (меха- низи- рова н- ны х) работ1 2 34 56 7Bacillus thuringiensis, var. kurstaki (спорово-кристаллический комплекс)Лепидоцид, П (БА-3000 ЕА/мг) ООО ПО «Сиббиофарм», ВНИИ биохиммашпроект 4/4 01- 2012- 081 7 (100)-1 12.20101Пшеница яроваяСерая зерновая совка (гусе-ницы младших возрастов)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации пр и численности не более 20 особей на 1 00 колосьев5(1)-(1)0, 5-1Капуста и другие овощныеК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог нев ки (гусеницы 1- 2 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервал ом 7-8 дней5(1- 2)5(1)1, 5-2К а пус т на я совка (гусеницы 1-2 возраста)5(2)0, 5-1Яблоня, слива, абрикос, черешня, груша, вишняЯблонная и плодовые моли (гусеницы 1- 3 возраста)5(1- 2)1Яблоня, слива, абрикос, черешня, груша, вишня, д е корт ив ные древесные породыАмериканская белая бабочка (гусеницы 1- 3 возраста)1-1,5З латогузка, пяденицы, листо-вертки весенней группы, шелкопряды (гусеницы 1-3 возраста)2-3ЯблоняЯблонная плодожоркаО п ры с к ив а н ие в пе р иод массового отрождения гусениц прот ив кажд ого поколения вредителя с интервалом 10- 14 дней5(1- 3)1-1,5Смород ина, малина, ряб ина черноплодная, крыжовник, земляникаЛистовертки, крыжовниковая ог невка (гусеницы 1- 3 воз-раста), крыж ов никовы й пи-лильщикО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней5(1- 2)0, 6-1Свекла сахарная, столовая, кормо-вая, лю це рна, капуста, подсол-нечник, морк овьЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)0, 7Картофе льКартофе ль ная мольПогружение клубней пе ре д закладкой на хранение в 1%- й рабоч ий раствор. Р асход - 100 л/ 15 т клубней-(1)-(-)2-3ВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации через 8-10 дней после на ч а ла лета ба-бочек пр от ив каждого по к о ле н ия вре-дителя с интервалом 5-7 дней5(1- 2)5(1)0, 5Шалфе й мускат-ны йШалфейная и оз имая совки, совка-гамма (гусеницы 1-2 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации1Амми зубнаяЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)5(1)Бессмертник пе с -чаныйРепейница (гусеницы 1-4 возраста)Валериана ле кар-с т ве нна яЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)1, 2Желтушник рас-кидистыйК а пус т на я моль, совки (гусе-ницы 1-3 возраста)Ноготки лекарст-венныеЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста), совки (гусени-цы 1-4 возраста)Фе нхе льЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)Стальник полевойСтальниковая и люцерновая совки (гусеницы 1- 3 возраста)Ромашка аптечнаяЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)5(2)1,5Ревень тангут-ский, паслен дольчатыйОзимая совка (гусеницы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в фазе 2-3 настоящих листьевРоза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод рас пуска ния листьев5(1- 2)2ШиповникЛистовертки, з латогуз ка, шелкопряды (гусеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации5(1)0,8-1 (А)ДубЗлатогузка (гусеницы 2- 3 возраста), зеленая дубовая листовертка (гусеницы 1-2 возраста)-(1)0,5 (А)Кольчатый шелкопряд (гусе-ницы 1-2 возраста)0,8-1 (А)Дуб, березаНепарный шелкопряд (гусе-ницы 1-2 возраста)0,8 (А)Дуб и другие ли-с т ве нныеПяденицы зимняя и обд ирало (гусеницы 1- 2 возраста)1-1,1Черемуха, яблоняГорностаевые моли (гусени-цы 1-2 возраста)1-1,2 (А)СоснаСосновый шелкопряд (гусе-ницы 1-3 возраста)1-1,5 (А)Шелкопряд м о на ше нка (гусеницы 1- 2 возраста)1 (А)Сосновая пя д е ни ца, сосновая совка (г усе ни цы 1-2 возраста)1-1,5Городск ие зеле-ные насажденияЛетне-осенний комплекс чешуекрылых вредителей (гусеницы 1- 3 возраста)20- 30 г/10 л воды (Л)Капуста, свекла, морковьК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог невки, лугов ой мотылек, к а пус т на я совкаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7-8 дней5(2)5(1)ЯблоняЯблонная плодожоркаО п ры с к ив а н ие в пе р иод массового отрождения гусениц прот ив кажд ого поколения вредителя с интервалом 10-14 дней. Расход - от 2 до 5 л на дерево (в зависимости от возраста и сорта дерева)5(1- 3)Плодовые культурыЯблонная и плодовая моли, златогузка, боярышница, листовертки, американская белая бабочка, шелк опряды, пяденицыО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на дерево (в зависимости от возрас-та и с орт а дерева)5(2)Смород ина, зем-ля ника, крыжов-ник, рябина чер-но пл од наяСмород инная листовертка, крыж ов никовая огневка, пяденицы (гусеницы 1-3 возраста), пилильщикиВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на куст (в зависимости от возраста и типа форм ировки куста)Роза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 днейЛекарственные культурыЛистовертки, моль, златогуз-ка, луговой мотылек (гусени-цы 1-3 возраста)Лепидоцид, ТАБ (БА-3000 ЕА/мг) ООО ПО «Сиббиофарм» 4/42-3 г (4-6 таб.)/ л воды (Л)Капуста, свекла столовая и кормо-вая, морковь и друг ие ов ощные культурыК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог нев ки, лугов ой мотылек, к а пус т на я совка (г усе ницы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7-8 дней. Расход -1 л/10 м25(1- 2)2(1)01- 962-0817- 1 12.2010Яблоня, слива, абрикос, черешня, груша, вишняЯблонная и плодовая моли, златогузка, боярышница, листовертки, американская белая бабочка, шелк опряды, пяденицыО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на дерево (в зависимости от возрас-та и с орт а дерева)ЯблоняЯблонная плодожоркаО п ры с к ив а н ие в пе р иод массового отрождения гусениц через 10-14 дней прот ив каждого поколения вредителя. Расход - от 2 до 5 л на дерево (в зави-симости от возраста и сорта дерева)5(2)1(1)Смород ина, мали-на, земляника, крыжовник, ряб и-на черноплоднаяЛистовертки, крыжовниковая О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации с ог невка (гусеницы 1- 3 воз- интервал ом 7-8 дней. Расход - 1 л/10 м2 раста), пяденицы, пилильщи-ки5(1- 2)2(1)ВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервал ом 7-8 дней. Расход - от 2 до 5 л на куст (в зависимости от возраста и типа форм ировки куста)Лекарственные культурыЛистовертки, моль, златогуз-ка, луговой мотылек (гусени-цы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервал ом 7-8 дней. Расход - 0,2 л/м210( 1-2)Роза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)Лепидоцид, СК (БА-2000 ЕА/мг) ООО ПО «Сиббиофарм» 4/4 01- 602-0817- 1 12.20101Пшеница яроваяСерая зерновая совка (гусе-ницы младших возрастов)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации пр и численности не более 20 особей на 1 00 колосьев5(1)-(1)0, 5-1Капуста и другие овощныеК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог нев ки (гусеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней5(1- 2)5(1)1, 5-2К а пус т на я совка (гусеницы 1-3 возраста)5(2)0, 5-1Яблоня, слива, абрикос, черешня, груша, вишняЯблонная и плодовая моли (гусеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на дерево (в зависимости от возраста и сорта дерева)5(1- 2)1Яблоня, слива, абрикос, череш-ня, груша, вишня, декоратив ные древесные породыАмериканская белая бабочка (гусеницы 1- 3 возраста)1-1,5З латогузка, пяденицы, листо-вертки весенней группы, шелкопряды (гусеницы 1-3 возраста)2-3ЯблоняЯблонная плодожоркаОпрыскивание в период массового от-рождения гусениц прот ив каждого по-коления вредителя с инт е рв а лом 10-14 дней. Р ас ход - от 2 до 5 л на де ре во (в зависимости от возраста и сорт а де ре ва )5(1- 3)1-1,5Смород ина, мали-на, ряб ина черно-плодная, крыжов-ник, земляникаЛистовертки, крыжовниковая ог невка, пяденицы (гусеницы 1-3 возраста), крыжовнико-вый п и л иль щ икО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервал ом 7-8 дней5(1- 2)1Свекла сахарная, столовая, кормо-вая, лю це рна, под-солнечник, мор-ковь, капустаЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)Картофе льКартофе ль ная мольПогружение клубней пе ре д закладкой на хранение в 1%- й рабоч ий раствор. Расход - 100 л/ 15 т клубней-(1)-(-)2-3ВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации через 8-10 дней после на ч а ла лета ба-бочек, 1- 2 обработки через 5-7 дней прот ив каждого поколения вредителя5(1- 2)5(1)0, 5Шалфе й мускат-ны йШалфейная и оз имая совки, совка-гамма (гусеницы 1-2 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервал ом 7-8 дней1Амми зубнаяЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации5(1)Бессмертник пе с-чаныйРепейница (гусеницы 1-4 возраста)Валериана ле кар-с т ве нна яЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)1,2Желтушник рас-кидистыйК а пус т на я моль, совки (гусе-ницы 1-3 возраста)Ноготки лекарст-венныеЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста), совки (гусени-цы 1-4 возраста)Фе нхе льЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)Стальник полевойСтальниковая и люцерновая совки (г ус е ницы 1-3 возраста)Ромашка аптечнаяЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)5(2)1,5Ревень тангут-ский, паслен доль-чатыйОзимая совка (гусеницы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в фазе 2-3 настоящих листьевРоза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод рас пуска ния листьев5(1- 2)2ШиповникЛистовертки, з латогуз ка, шелкопряды (гусеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации5(1)3 (А)ДубЗлатогузка, зеленая дубовая листовертка, кольчатый шел-копряд (гусеницы 1-3 возраста)-(1-2)Дуб, березаНепарный шелкопряд (гусе-ницы 1-3 возраста)Дуб и другие лиственныеПяденицы зимняя и обд ирало (гусеницы 1- 3 возраста)СоснаСосновый шелкопряд, ше л-копряд монашенка, сосновая пяденица, сосновая совка (г усе ницы 1-3 возраста)Пихта, кедр, лист-венницаСибирский шелкопряд (гусе-ницы 1-3 возраста)ПихтаПихтовая пяденица3Черемуха, яблоняГорностаевые моли (гусени-цы 1-2 возраста)Городск ие зеле-ные насажденияЛетне-осенний комплекс чешуекрылых вредителей (гусеницы 1- 3 возраста)20- 30 г/10 л воды (Л)Капуста, свекла, морковьК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог невки, лугов ой мотылек, к а пус т на я совкаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход -0,5-1,0 л/10 м25(2)5(1)ЯблоняЯблонная плодожоркаО п ры с к ив а н ие в пе р иод массового отрождения гусениц прот ив кажд ого поколения вредителя с интервалом 10- 14 дней5(1- 3)Плодовые культурыЯблонная и плодовая моли, златогузка, боярышница, листовертки, американская белая бабочка, шелк опряды, пяденицыО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на дерево (в зависимости от возрас-та и с орт а дерева)5(2)Смород ина, земляника, крыжовник, ряб и-на черноплоднаяСмород инная листовертка, крыж ов никовая огневка, пяденицы (гусеницы 1-3 возраста), пилильщикиО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход -2-10 л/ 10 м2ВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на куст (в зависимости от возраста и типа форм ировки куста)Роза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителяЛекарственные культурыЛистовертки, моль, златогуз-ка, луговой мотылек (гусени-цы 1-3 возраста)с интервалом 7- 8 дней. Расход -2-10 л/10 м2Лепидоцид СК-М, СК (БА-2000 ЕА/мг) ООО ПО «Сиббиофарм» 4/4 01- 2434- 0817-1 12.20101Пшеница яроваяСерая зерновая совка (гусе-ницы младших возрастов)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации пр и численности не более 20 особей на 1 00 колосьев5(1)-(1)0, 5-1Капуста и другие овощныеК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог нев ки (гусеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней5(1- 2)5(1)1, 5-2К а пус т на я совка (гусеницы 1-3 возраста)5(2)0, 5-1Яблоня, слива, абрикос, черешня, груша, вишняЯблонная и плодовые моли (гусеницы 1- 3 возраста)5(1- 2)1Яблоня, слива, абрикос, черешня, груша, вишня, декоратив ные древесные породыАмериканская белая бабочка (гусеницы 1- 3 возраста)1-1,5З латогузка, пяденицы, листо-вертки весенней группы, шелкопряды (гусеницы 1-3 возраста)2-3ЯблоняЯблонная плодожоркаО п ры с к ив а н ие в пе р иод массового отрождения гусениц прот ив кажд ого поколения вредителя с интервалом 10- 14 дней5(1- 3)1-1,5Смород ина, мали-на, ряб ина черно-плодная, крыжов-ник, земляникаЛистовертки, крыжовниковая ог невка, пяденицы (гусеницы 1- 3 возраста), крыжовниковый пилильщикО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней5(1- 2)1Свекла сахарная, столовая, кормо-вая, лю це рна, под-солнечник, мор-ковь, капустаЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)Картофе льКартофе ль ная мольПогружение клубней пе ре д закладкой на хранение в 1%- й рабоч ий раствор. Р асход - 100 л/ 15 т клубней-(1)-(-)2-3ВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации через 8-10 дней после на ч а ла лета ба-бочек, 1- 2 обработки через 5-7 дней прот ив каждого поколения вредителя5(1- 2)5(1)0, 5Шалфе й мускат-ны йШалфейная и оз имая совки, совка-гамма (гусеницы 1-2 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней1Амми зубнаяЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации5(1)Бессмертник пе с -чаныйРепейница (гусеницы 1-4 возраста)Валериана ле кар-с т ве нна яЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)1, 2Желтушник рас-кидистыйК а пус т на я моль, совки (гусе-ницы 1-3 возраста)Ноготки лекарст-венныеЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста), совки (гусени-цы 1-4 возраста)Фе нхе льЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)Стальник полевойСтальниковая и люцерновая совки (гусеницы 1-3 возраста)Ромашка аптечнаяЛуговой мотылек (гусеницы 1-3 возраста)5(2)1, 5Ревень тангут-ский, паслен доль-чатыйОзимая совка (гусеницы 1-3 возраста)О п ры с к ив а н ие в фазе 2-3 настоящих листьевРоза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод рас пуска ния листьев5(1- 2)2ШиповникЛистовертки, з латогуз ка, шелкопряды (гусеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации5(1)3 (А)ДубЗлатогузка, зеленая дубовая листовертка, кольчатый шел-копряд (гусеницы 1-3 возраста)-(1-2)Дуб, березаНепарный шелкопряд (гусе-ницы 1-3 возраста)Дуб и другие ли-с т ве нныеПяденицы зимняя и обд ирало (гусеницы 1- 3 возраста)СоснаСосновый шелкопряд, шелкопряд монашенка, сосновая пяденица, сосновая совка (гусеницы 1-3 возраста)Пихта, кедр, лист-венницаСибирский шелкопряд (гусе-ницы 1-3 возраста)ПихтаПихтовая пяденица3Черемуха, яблоняГорностаевые моли (гусени-цы 1-2 возраста)Городск ие зеле-ные насажденияЛетне-осенний комплекс чешуекрылых вредителей (гусеницы 1- 3 возраста)20- 30 г/10 л воды (Л)Капуста, свекла, морковьК а пус т на я и репная белянки, капустная моль, ог невки, лугов ой мотылек, к а пус т на я совкаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - 0,5-1,0 л/10 м25(2)5(1)Яблоня Яблонная плодожоркаО п ры с к ив а н ие в пе р иод массового5(1- 3)Плодовые культурыЯблонная и плодовые моли, златогузка, боярышница, листовертки, американская белая бабочка, пяденицы, шелкопрядыотрождения гусениц прот ив кажд ого поколения вредителя с интервалом 10- 14 дней. Р асход - от 2 до 5 л на дерево (в зависимости от возраста и с орт а дерева)5(2)Смород ина, зем-ля ника, крыжов-ник, рябина чер-но пл од наяСмород инная листовертка, крыж ов никовая огневка, пяденицы (гусеницы 1-3 возраста), пилильщикиО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход -2-10 л/ 10 м2ВиноградГроздевая листове рткаО п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 дней. Расход - от 2 до 5 л на куст (в зависимости от возраста и типа форм ировки куста)Роза эфиромас-личнаяПяденицы, листовертки (гу-сеницы 1- 3 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации прот ив каждого поколения вредителя с интервалом 7- 8 днейЛекарственные культурыЛистовертки, моль, златогуз-ка, луговой мотылек (гусени-цы 1-3 возраста)Лепидобактоцид, Ж (БА-2000 ЕА/г) НПП «Экосервис С» 4/4 01- 2147- 0 202-0 12.2 0142-3 (А)Лиственные и хвойные породыХв ое- и листогрыз ущие вре-дители (гусеницы младших возрастов)Авиационное о п ры с к ив а н ие в пе р и од вегетации1(1)1(1)3 (А)Аэрозольное о п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации с шириной захвата не более 0,3 км2ВиноградГроздевая листове ртка (гусе-ницы 1-2 возраста)О п ры с к ив а н ие в пе р иод вегетации8 (А)МожжевельникЮжная можжевеловая моль2-3 (А)Хв ойные породыХвоегрыз ущие вредители (гусеницы младших возрас-тов)Авиационное о п ры с к ив а н ие в пе р и од вегетацииBacill us thuringiensis, var. thuringiensis, экзотоксин (спорово-кристаллический комплекс)Битоксибацил- лин, П (БА-1500 ЕА/мг) ВНИИСМ, ООО ПО «Сиббиофарм» 2/4

  • 8. Белки клеточного цикла в отделах мозга сусликов citellus undulatus на разных стадиях гибернационного цикла
    Курсовые работы Биология

     

    1. Белоусов А.Б. Роль центральной нервной системы в контроле зимней спячки // Усп. физиол. наук. 1993. Т. 24, № 2. С. 109-126.
    2. Дарзалиа В., Хелманн У., Линдвалл О., Кокаиа З. Нейрогенез в стареющем головном мозге после инсульта // Инсульт. 2007, № 1.
    3. Демин М.М., Шортанова Т.Х., Эмирбеков Э.З. Нейрохимия зимней спячки млекопитающих. Л.: Наука, 1988. 137 с.
    4. Жегунов Г.Ф. , Микулинский Ю.Е. Активация синтеза белка в тканях сусликов при пробуждении после зимней спячки // Укр. биохим. журн. 1987. Т. 59, № 3. С. 69-73.
    5. Игнатьев Д.А., Сухова Г.С. Сухов В.П. Анализ изменений частоты сердцебиений и температуры суслика Citellus Undulatus в различных физиологических состояниях // Общая биология 2001. Т. 62, №1. С. 66-77.
    6. Калабухов Н.И. Спячка млекопитающих. М.: Наука, 1985. 259 с.
    7. Коломийцева И.К., Перепелкина Н.И., Патрушев И.В., Попов В.И. Роль липидов в сборке эндоплазматического ретикулума и диктиосом якутского суслика Сitellus undulates при гибернации // Биохимия. 2003. Т. 68, вып. 7. С. 954-967.
    8. Крепс Е.М. Липиды клеточных мембран. Л.: Наука, 1981. - С.339.
    9. Соломонов Н.Р. Основные итоги и задачи изучения зимней спячки грызунов Якутии // Эколого-физиологические характеристики природных гипометаболических состояний. Пущино, 1992. С. 29-34.
    10. Штарк М.В. Мозг зимоспящих. Новосибирск: «Наука», 1970. 240 c.
    11. Шугалей Л.С. Молекулярные основы устойчивости зимоспящих животных к неблагоприятным условиям среды // Эколого-физиологические характеристики природных гипометаболических состояний: Сб. науч. тр. / Под ред. Колаевой С.Г. Пущино, 1992. С. 70-73.
    12. Эмирбеков Э.З., Львова С.П., Кличханов Н.К. Биохимические изменения в крови при искусственной и естественной гипотермии // Пробл. криобиол. 1995. - №1. С.14-21.
    13. Эмирбеков Э.З., Львова С.П., Мусаев Б.С., Мейланов И.С., Симмалавонг Сантисук, Бутаева П.Ш., Абдулаева М.З. Роль липидов мозга при гипотермии и самосогревании гомойотермных и зимоспящих животных // Биохим. аспекты холодовых адаптаций: Сб. науч. тр. - Харьков, 1991. С. 166-175.
    14. Ames I.A. CNS energy metabolism as related to function // Brain Research Rew. 2000. V. 34. P. 42-68.
    15. Azzam N.A., Hallenbeck J.M., Kachar B. Membrane changes during hibernation // Nature. 2000. V. 407. P. 317-318.
    16. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein using the principle of protein bindong // Anal. Biochem. 1976. V. 72. P. 248-254.
    17. Clarke D.D., Sokoloff L. Circulation and energy metabolism of the brain // Basic Neurochemistry: Molecular, Cellular and Meducal Aspects. Sigel G.J., Agranoff B.W., Alberts R.W., Fisher S.K., Uhler M.D. (Eds.) Phyladelphia:Lippincott Raven. 1999. P 637-669.
    18. Christina G. von der Ohe, Craig C. Garner, Corinna Darian-Smith, H. Craig Heller. Synaptic Protein Dynamics in Hibernation. // Neurosciens. 2007.- Nov 9; 149 (3).
    19. Christina G. von der Ohe, Craig C. Garner, Corinna Darian-Smith, H. Craig Heller. Ubiquitos and Temperature - Dependent. // Neurosciens. 2008.- Apr 9; 152 (4).
    20. Copani Agata; Uberti Daniela; Sortino Maria Angela; Bruno Valeria; Nicoletti Ferdinando and Memo Mauritio. Activation of cell-cycle-associated proteins in neuronal death: a mandatory or dispensable path? Trends in Neuroscience. 2001 Jan; 24 (1): 25-31.
    21. Copani А.; Sortino M. A.; Nicoletti F. and Stella Giuffrida A. M. Alzheimers Disease Research Enters a “New Cycle”: How Significant? // Neurochemical Research. 2002 Feb; 27 (Nos. 1/2): 173-176.
    22. Drew K.L., Rice M.E., Kuhn T.B., Smith M.A. Neuroprotective adaptations in hibernation: therapentic implications for ischemia-reperfusion, traumatic brain injury and neurodegenerativedislases // Free Radic. Biol. Med. 2001. V. 31. P. 563-573.
    23. Droge W. Free Radicals in the Physiological control of cell Function // Physiol. Rev. 2002. V. 82. P. 47-95.
    24. Fang Zhou, Xiongwei Zhu, Rudy J. Castellani,Raphaela Stimmelmayr, George Perry, Mark A. Smith, and Kelly L. // Drew Hibernation, a Model of Neuroprotection // American Journal of Pathology, V. 158, No. 6, June 2001.
    25. Frerichs K.U., Kennedy C., Sokoloff L., Hallenbeck J.M. Local cerebral blood flow during hibernation, a model of natural tolerance to «cerebral ishemia» // J Cereb Blood Flow Metab. 1996. V. 14. P. 193-205.
    26. Frerichs K.U., Hallenbeck J.M. Hibernation in ground squirrels induces stats and species-specific tolerance to hypoxia and aglycemia: an in vitro study in hippocampal slices // J. Cereb. Blood Flow. Metab. 1998. V. 18. P. 168-175.
    27. Hermes-Lima M., Zentenc-Sakin T. Animal response to drastic changes in oxygen akailability and physiological oxidative stress // Comp. Biochem. Physiol. C. Toxicol. Pharmacol. 2002. V/ 133/ - P. 537-556.
    28. Jens Thorsten Stieler, Torsten Bullman, Franziska Kohl, Brian M. Barnes, Thomas Arendt. Physiological regulation of tau phosphorylation during hibernation. // J Neural Transm. 2009 (116): 345 350.
    29. Lipton Р. Ischemic cell death in brain neurons // Physiol. Rev. 1999. V. 79. P. 1431-1568.
    30. Nagy Zs. Cell cycle regulatory failure in neurones: causes and concequences. Neurobiology of Aging. 2002 (21): 761-769.
    31. Nagy Zs.; Esiri M. M.; Cato A.-M. and Smith A. D. Cell cycle markers in the hippocampus in Alzheimer's disease // Acta Neuropathol. 1997 (94): 6-15.
    32. Nurnberger F. The neuroendocrine system in hibernating mammals // Cell and Tissue. Res. 1995. V. 28. P. 391-412.
    33. Ohnuma Shin-ichi; Philpott Anna and A Harris William. Cell cycle and cell fate in the nervous system. Current Opinion in Neurobiology. 2001 (11): 66-73.
    34. Storey K.B. Turning down the fires of life: metabolic regulation of hibernation and estivation // Mol. mech. metab. Arrest. 2001. P. 1-21.
    35. Storey K.B., Storey J.M. Metabolic rate depression in animals: transcriptional and translational controls // Biol. Rev. Camp. Philos. Soc. 2004. V. 79. P. 207-233.
    36. Toien O., Drew K.L., Chao M.L., Rice M.E. Ascorbat dynamics ana oxygen consumption during arousal from hibernation in arctic ground squirrels // Am. J. Physiol. 2001. V. 281. P. 572-583.
    37. Van Brenkelen F., Martin S.L. Reversible depression of transcription during hibernation // J. Comp. Physiol. (B). 2002-V. 172. P. 355-361.
    38. Wang L.C.H. Energetic and field aspects of mammalian torpor: the Richardson groundsquirrel // Strategus in Cold: Natural Torpidity and Thermogenesis // Eds L.C.H. Wang, J.W. Hudson, N.Y.: Acad. Press. 1978. P. 109-145.
    39. Wang L.C.H., Lee T.F. Torpor and hibernation in mammals: metabolic, physiological, and biochemical adaptations // Handbook of physiology: Oxford univer. Press., 1996. - № 4. P. 507-531.
    40. Yeh J., Tam C.F., Catuirs E., Le T.T., Papa V., Pena L., Vasquez M., Vu C., Wang S., Lopez G.A. Changes in karious plasms lipid components, glucose, and insulin in spermophilus lateralis during hibernation // Comp. Biochem. Physiol. B. Biochem. Mol. Biol. 1996. V. 111. P. 651-663.
    41. Young J.S., Woodside J.V. Antioxidants in health and disease // J. Clin. Pathol. 2001. V. 54. P. 176-186.
    42. Zhou G., Zhu X., Castellani R.J., Stinnelmayr R., Perry G., Smith M.A., Drew K. Hibernation, a model of neuroprotection // Am. J. Pathol. 2001. V. 158. P. 2145-2151.
  • 9. Белый аист в мифологии европейских народов и современные представления о происхождении индоевропейцев
    Курсовые работы Биология

    У арабов и других мусульманских народов белый аист может гнездиться не только на жилых постройках, но даже на дворцах и мечетях, священность же его связана, как уже говорилось, с миграциями. У древних греков эта птица была также весьма почитаемой. По сведениям Плутарха, в Фессалии за убийство аиста даже карали смертью (Hornberger, 1967). Естественно, он также был волен в выборе мест гнездования. Впоследствии все это было прочно и надолго забыто, потому что священную птицу турков греки ненавидели не меньше, чем самих поработителей. После освобождения Греции во многих городах были уничтожены все гнезда, а численность белого аиста в стране значительно сократилась (Martens, 1966). Более того, даже в самой Турции в прошлом веке греческие поселения и кварталы в городах легко узнавались по наличию свиней и отсутствию аистов (Fellows, 1839; Gonzenbach, 1857). Синантропность (точнее возможность ее проявить), как видим, определялась отношением к птицам людей. Еще один пример белобрюхий аист (Ciconia abdimii). У ряда африканских племен он считается священной птицей, поскольку прилетает к началу сезона дождей и “приносит” так необходимые и земледельцу, и скотоводу осадки. Подобно белому аисту он часто селится на крышах хижин. Тревожить или преследовать птиц запрещается (Archer, Goodman, 1937; Kahl, 1981).

  • 10. Беспозвоночные черви
    Курсовые работы Биология

    Комментарий к выполнению модуля

    • Модуль адресован тем, кто работает по учебнику: Захаров В.Б., Сонин Н.И. Биология. 7 класс. (М.: Дрофа, 2001).
    • При такой форме урока очень важна экономия времени. Поэтому записать тему и цель на доске, а также подготовить контрольные карточки необходимо заранее.
    • Ответы на задание 2 должны быть лаконичными.
    • Для выполнения задания 3 потребуется вспомнить материал предыдущего урока.
    • Задание 5, возможно, самое трудоемкое, потребует внимательной работы с текстом, изучения рисунков, схемы цикла развития аскариды и применения полученных ранее знаний о паразитизме как экологическом явлении. Некоторые вопросы (например, вопрос о последствиях воздействия личинок на различные органы) требуют размышления, догадки. Ответы следует искать в различных пособиях. В учебнике В.Б. Захарова и Н.И. Сонина есть краткое описание цикла.
    • На 8-й вопрос тоже нет прямого ответа в учебнике. Здесь важен сам поиск ответов и наличие у учащегося собственного варианта ответов. Все ответы важно обсудить с классом, учителем. Комментарий в учебнике к схеме цикла развития аскариды (с. 125) некорректен, поэтому следует уточнить, что вначале личинки попадают с током крови в печень, а затем уже в лёгкие.
  • 11. Билатеральные комплексы бочонковых колонок первичной соматосенсорной коры мозга являются модулями восприятия пространства
    Курсовые работы Биология

    Через 10 мин после введения кофеина нейрон начинает реагировать также и на выключение стимула, приложенного в центре РП (рис.4,В). Со временем интенсивность первичного возбуждения на включение и выключение стимула уменьшается (к 20-й минуте), а затем к 40-й минуте вновь возрастает. Кроме того, постепенно восстанавливается вторичная активация, подавляемая на начальных этапах действия кофеина. Данный пример является весьма типичным для всей выборки исследованных нейронов (N=20). Нейроны бочонковых колонок, представляющих в С1 коры мозга крыс латеральные ряды вибрисс, имели во всех исследованных случаях односторонние РП, располагающиеся с существенным перекрытием по всему вибриссковому полю контралатеральной стороны мордочки крысы. Нейроны в представительстве самого медиального ряда вибрисс А, напротив, всегда имели билатеральные РП (N=20). В бочонковых колонках ряда В с равной вероятностью встречались и односторонние и двусторонние РП (N=10). Размеры билатеральных РП соответствовали односторонним. Их структура в общих чертах характеризовалась наличием более детерминированной по ответоспособности центральной части и периферии с низкой проявляемостью реакций на серию повторяющихся стимулов. Ипсилатеральная часть РП соответствовала периферии, однако, в ней также выделялась центральная вибрисса, симметричная центральной в контралатеральной части РП, которая давала более интенсивные и с большей вероятностью реализующиеся импульсные реакции. Кроме того, ипсилатеральная часть РП всегда ограничивалась лишь двумя медиальными рядами вибрисс - А и В. Структура импульсных реакций нейронов при стимуляции ипсилатеральных вибрисс также была фазной, с четкой тормозной паузой между первичным и вторичным возбуждением, свидетельствующей об участии системы ассоциативных связей в обработке ипсилатеральной специфической афферентации.

  • 12. Биогенез мембран
    Курсовые работы Биология

    Некоторые небольшие белки (<8,5 кДа) транспортируются в эндоплазматический ретикулум независимо от СРЧ. В их число входят препропептид GLa лягушки, препромелиттин (оба они являются предшественниками секретируемых белков) и пробелок оболочки фага М13. Во всех этих примерах конформация предшественника такова, что белки должны оставаться способными к переносу даже в отсутствие СРЧ и рибосом.

    1. Рецептор СРЧ, или стыковочный белок. Комплекс СРЧ/ рибосома/образующаяся полипептидная цепь транспортируется в шероховатый эндоплазматический ретикулум, преодолевая энергию сильного взаимодействия между СРЧ и мембраносвязанным рецептором СРЧ, называемым также стыковочным белком. Рецептор СРЧ содержит субъединицу с мол. массой 73 кДа, присоединенную N-концом к мембране. Вероятно, рибосома также связывается со специфическими рецепторами, присутствующими в мембране.
    2. Рецептор сигнальной последовательности. Сигнальная последовательность на образующейся полипептидной цепи перемещается от СРЧ ко второму рецептору, находящемуся в мембране и называемому рецептором сигнальной последовательности. Об этом свидетельствуют результаты опытов по фотохимическому сшиванию, в которых используется метка, связанная с сигнальной последовательностью препролактина. Предполагаемый мембраносвязанный рецептор представляет собой гликопротеин с мол. массой 35 кДа. Возможно, он образует часть канала, через который осуществляется перенос. С помощью такого же подхода с использованием поперечной сшивки и синтетического сигнального пептида был обнаружен еще один кандидат на роль рецептора сигнальной последовательности (45 кДа). Связь между этими двумя белками неизвестна и функции их до конца не установлены. Как только образовавшаяся полипептидная цепь связывается с мем-браносвязанным рецептором, СРЧ и ее рецептор могут освободиться от рибосомы и принять участие в новом цикле. О предполагаемом канале, участвующем в переносе, ничего не известно; очистка его является довольно сложной задачей.
  • 13. Биогеохимическая деятельность микроорганизмов
    Курсовые работы Биология

     

    1. Бабьев И.П., Зенова Т.М Биология почв. М.: Изд-во Моск. университета, 1989.
    2. Биология в школе 2000г. №6.
    3. Биология в школе 2000г. №7.
    4. Биология в школе 2001г. №6.
    5. Биология в школе 2002г. №7.
    6. Генкель П.А. Микробиология с основами вирусологии. М.: Просвещение, 1974.
    7. Голлербах М.М. Водоросли, их строение, жизнь и значение. М.: 1951.
    8. Гусев М.В. Микробиология. М.: Издательский центр «Академия», 2003.
    9. Добровольский В.В. География почв с основами почвоведения. М.: ВЛАДОС, 2001.
    10. Добровольский Г.В., Никитин Е.Д. Функции почв в биосфере и экосистемах. М.: Наука, 1990.
    11. Ежов Г.И. Руководство к практическим занятиям по сельскохозяйственной микробиологии. М.: Высш. школа, 1981.
    12. Ковда В.А. Биогеохимия почвенного покрова. М.: Наука,1985.
    13. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. СПб.: «Специальная литература», 1998.
    14. Красильников Н.А. Микроорганизмы почвы и высшие растения. М.: 1958.
    15. Лебедева М.Н. Микробиология. М.: «Медицина», 1969.
    16. Лукомская К.А. Микробиология с основами вирусологии. М.: Просвещение, 1987.
    17. Мишустин Е.Н., Емцев В.Т. Микробиология. М.: «Колос», 1970.
    18. Мишустин Е.Н., Шильникова В.К. Биологическая фиксация атмосферного азота. М.: «Наука», 1968.
    19. Панкратова А.Я. Микробиология. М.: «Колос», 1971.
    20. Сивоглазов В.И., Сухова Т.С., Козлова Т.А. Биология: общие закономерности: Книга для учителя. М.: Школа-Пресс,1996.
    21. Теппер Е.З., Шильникова В.К., Переверзева Г.И. Практикум по микробиологии. М.: «Колос», 1972.
    22. Шлегель Т. Общая микробиология. М.: «Мир», 1972.
  • 14. Биологическая сущность микоризы
    Курсовые работы Биология

    Всходы многих видов лесных деревьев, выращенные в стерильном питательном растворе, а затем перенесенные в луговую почву, будут плохо расти и даже погибать от недостатка пищи, хотя субстрат достаточно богат ею. Однако если добавить к почве вокруг корней сеянцев совсем немного (0,1 % по объёму) лесной почвы, содержащей соответствующие грибы, рост нормализуется. Это обусловлено микоризой ("грибокорнем"), тесным взаимовыгодным симбиозом корней и грибов. Микориза известна в большинстве групп сосудистых растений. Всего несколько семейств цветковых не образуют её или образуют очень редко, например крестоцветные и осоковые. Многие растения могут нормально развиваться и без микоризы при хорошем обеспечении незаменимыми элементами, особенно фосфором. Однако при ограниченной доступности этих минеральных веществ они растут без нее плохо или погибают. Участие микоризы в прямом транспорте фосфора из почвы в корни доказано экспериментально. В свою очередь растения снабжают симбиотические грибы углеводами. Гриб помогает растению усваивать минеральные соли и воду, а сам получает от него органические вещества, которые растения синтезируют из неорганических веществ. Микориза увеличивает способность корней поглощать вещества из почвы в тысячи (!) раз. С грибами вступают в симбиоз 80-98% (по разным источникам) наземных растений: деревья, кустарники, травы. Например, в итоге многолетней работы (Селиванов И.А. "Микосимбиотрофизм как форма консортивных связей в растительном покрове Советского Союза". М., 1981) было изучено 3449 видов (не экземпляров!) растений в разных климатических зонах.78% из них оказались микотрофными (т.е. те, которые могут образовывать микоризу): деревья, травы, кустарники. Иначе говоря, три четверти растительного мира питаются при помощи грибов!Дубы, сосны и многие другие растения без микоризы жить просто не способны. Степи, луга, леса в таком их виде, который для нас привычен, не смогли бы существовать без микоризы. Точно так же без микоризы большинство шляпочных грибов не смогло бы образовывать плодовые тела: на это просто не хватило бы сил. Редкое исключение из правила - уже упомянутые шампиньоны, которые микоризу не образуют. И всё-таки микоризные шляпочные грибы можно вырастить на выбранном месте - но не на грядке, а у подходящего дерева. Большое количество микоризных грибов могут жить не с одной, а со многими древесными породами. Например, подосиновик образует микоризу не только с осиной, но и с березой, а белый гриб сожительствует почти с пятью - десятью деревьями (рис. 5.1)

  • 15. Биологическая функция нуклеиновых кислот
    Курсовые работы Биология

    Небольшая молекулярная масса, наличие достаточно большого количества (до 10 %) минорных оснований, которые являются прекрасными маркерами, существенно облегчают проблему определения нуклеотидной последовательности тРНК. В 1965 г. Р. Холли и его сотрудники установили полную нуклеотидную последовательность аланиновой тРНК дрожжей; в 1967 г. А.А. Баев и сотрудники установили последовательность нуклеотидов валиновой тРНК дрожжей. А. Рич и др. (19751977 гг.) провели полную расшифровку пространственной структуры фенилаланиновой тРНК на основе рентгенограмм с разрешением до 0,4 нм. Вторичная структура тРНК в плоском изображении имеет вид клеверного листа (рис. 3). тРНК содержит 4 двухцепочечных спиральных участка, 3 из которых являются "шпильками", несущими петли из неспаренных нуклеотидов; 3'- и 5'-концы полинуклеотидной цепи объединены в наиболее длинный спиральный участок, образованный водородными связями между азотистыми основаниями и завершающийся неспаренным тринуклеотидом ССА, Кроме четырех основных ветвей, более длинные тРНК содержат короткую пятую, или дополнительную, ветвь. Две из основных ветвей непосредственно обеспечивают функцию тРНК как адалтора (между двадцатибуквенным кодом белков и четырехбуквенным кодом нуклеиновых кислот). Антикодоновая ветвь имеет антикодон, представляющий собой специфический триплет нуклеотидов, комплементарный кодону мРНК и способный образовывать с ним пары оснований. Акцепторная ветвь присоединяет специфическую аминокислоту за счет образования эфирной связи между ее карбоксильной группой и гидроксильной группой 3'-концевого остатка аденина в тРНК, Две другие главные ветви тРНК называются дигидроуридиловая ветвь и ТС-ветвъ. Первая содержит необычный нуклеозид дигидроуридин, а вторая нуклеозиды псевдоуридин () и риботимидин (Т), обычно не присутствующие в составе РНК.

  • 16. Биологическая характеристика окуня обыкновенного (Perca fluviatilis, l.) на реке Кочеты
    Курсовые работы Биология

     

    1. (А) Берг Л. С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран, часть 2, М.: Пищепромиздат, 1949, С. 1932 1939.
    2. (Б) Берг Л. С., Богданов А. С. Промысловые рыбы СССР, Пищепромиздат, 1949.
    3. Бровкина Е. Т. , Сивоглазов И. В. М.: Дрофа, 2004. Рыбы наших водоёмов. 105с.
    4. Емтыль М. Х. , Иваненко А. М. Рыбы Юго-запада России: Учебное пособие. Краснодар: КубГУ,2002. 340 с.
    5. Лакин Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1973. 343 с.
    6. Лотышев И. П. География Кубани. Майкоп,2006. 293с.
    7. Москул Г. А. Рыбы водоёмов бассейна Кубани: определитель. Краснодар: КубГУ, 1998, 177 с.
    8. Москул Г. А. Современное состояние и перспективы рыбохозяйственного освоения Крюковского и Варнавинского водохранилищ: Сборник научных трудов ГОСНИОРХ, №251, 1986.
    9. Москул Г. А. , Москул Н.Г. Экология размножения и развития пресноводных рыб: Методические указания. Краснодар: КубГУ, 2007, 46 с.
    10. Никольский Г.В. Частная ихтиология. М.:Высшая школа, 1971. 471 с.
    11. Правдин И. Ф. Руководство по изучению рыб. М. Пищевая промышленность, 1966. 375 с.
    12. Пряхин Ю. В. , Шкицкий В. А. Методы рыбохозяйственных исследований: Учебное пособие. Ростов-на-Дону: Издательство ЮНЦ РАН, 2008. 256 с.
    13. Плотников Г. К. Фауна позвоночных Краснодарского края. Краснодар: ООО Крайбибколлектор, 2000, 233 с.
    14. Попова О.А. Питание и пищевые взаимоотношения судака, окуня и ерша в водоёмах разных широт. //Изменчивость рыб пресноводных экосистем. М.: Наука, 1979, С. 95-112.
    15. Решетников Ю.С., Богуцкая Н.Г., Васильева Е.Д., Дорофеева Е.А., Насека А.М., Попова О.А., Савваитова К.А., Сиделева В.Г., Соколов Л.И. Список рыбообразных и рыб пресных вод России //Вопросы ихтиологии. 1997, Т. 37, вып. 6, С. 723-771.
    16. Троицкий С.К. Рыбы Краснодарского края/ С.К. Троицкий. Краснодар: Краевое книгоиздательство, 1948. 80 с.
    17. Троицкий С.К., Цуникова Е.П. Рыбы бассейнов Нижнего Дона и Кубани. Руководство по определению видов/ С.К. Троицкий, Е.П. Цуникова. - Ростов-на-Дону:Ростовское книжное изд-во, 1988. 112 с.
    18. Б.И. Черфас Рыбоводство в естественных водоемах. Москва 1956.
    19. http://jiggingsecret.ru
    20. http://world-aquarium.ru
    21. www.MaxLv.ru
    22. www.google.com
  • 17. Биологические и географические особенности миграции наземных животных
    Курсовые работы Биология

    У животных существуют периодические миграции, их еще называют выселением. К периодическим выселениям миграциям относят такие, которые представляют собой массовый уход животных из мест размножения без последующего возвращения на места прежнего обитания. Согласно данным науки, такие выселения вызываются резким ухудшением жизненных условий, а также бескормицей, которая связана с возникающей высокой плотностью населения вида, лесными и степными пожарами, сильными засухами, наводнениями, чрезмерным многоснежьем, и другими причинами. Отсюда видно, что многочисленные обстоятельства могут вызвать перемещения массы зверей на большие расстояния. Инвазии перемещения животных за пределы своей родины. Такие перемещения отличаются от истинных миграций своей нерегулярностью и большими интервалами между последовательными инвазиями. Иногда их рассматривают как начальные этапы формирования настоящих миграций, возникающих из взрывоподобных расселений "эмиграций". Инвазия подобна предохранительному клапану, срабатывающему при избыточной плотности населения. Само по себе это благоприятствует существованию вида лишь косвенным образом. В нормальных естественных условиях популяционные процессы находятся в равновесии, и рост численности популяции, влекущий за собой выселение, случается редко. Инвазия представляет собой явление, недостатки которого бросаются в глаза, но которое вместе с тем на протяжении длительного времени дает преимущество, с лихвой перевешивающее недостатки. Типичным примером этих миграций является переселение леммингов и белок. Необратимые периодические миграции свойственны обыкновенным белкам. Они (миграции) возникают быстро в ответ на появившиеся неблагоприятные условия. Миграции начинаются в июле-августе, когда белки начинают питаться семенами и орехами свежего урожая и обнаруживают их недостаток. Миграции продолжаются около 6 месяцев. Белки подчас преодолевают до 500 км и более. Белки мигрируют не кучно, а поодиночке. Странствия белок периодически повторяются через 4-5 лет и сильно влияют на выход пушнины и экономику охотников, промышляющих белку. Скорость белок во время миграций достигает 3-4 км/ч.

  • 18. Биологические основы выращивания белуги (Huso huso)
    Курсовые работы Биология

     

    1. Анисимова И.М., Лавровский В.В. Ихтиология. ? Москва. ? изд-во «Высшая школа», 1983. ? 255 с.
    2. Атлас пресноводных рыб России в двух томах. Т1 под редакцией Решетникова Ю.С. М. наука, 2002. 253 с.
    3. Бабушкин Н.Я. 1964. Биология и промысел каспийской белуги // Тр. ВНИРО. Т. 52. Сб.1. М.: с. 183-258.
    4. Бокова Л.И., Гунько А.Ф. опыт использования лиманов для выращивания заводской молоди осетровых в Азовском бассейне // Осетровое хозяйство внутренних водоемов СССР.?1979.? с. 28-29.
    5. Вернидуб М.Ф. Инструкция по определению рыбоводного качества, сбору, оплодотворению, рационализации обесклеивания и инкубации икры и выдерживанию личинок осетровых. ? рукопись, 1952.
    6. Детлаф Т.А., Гинзбург А.С. Зародышевое развитие осетровых рыб (севрюги, осетра и белуги) в связи с вопросами их разведения. ? Москва. ? изд-во Академии наук СССР, 1954.?215 с.
    7. Драгомиров Н.И. Эколого-морфологические особенности личиночного развития белуги HUSO HUSO (L.). // Труду института морфологии животных им. А. Н. Северцова. ? 1961. ? вып. 33. ? с. 72-185.
    8. Захарова Н.А., Хураськин Л.С., Полянинова А.А. 2000. Трофические связи осетровых и каспийского тюленя // Осетровые на рубеже 21 века: Тез. докл. Междунар. конф. Астрахань: Изд-во КаспНИРХа. 54 с.
    9. Иванов А.П. Рыбоводство в естественных водоемах. - М.: Агропромиздат, 1988. - 367 с.
    10. Кокоза А.А., Искусственное воспроизводство осетровых рыб. Моногр.? Астрахань. ? изд-во АГТУ, 2004. ?207 с.
    11. Курс лекций: «Осетровые мирового океана». Для студентов третьего курса специальности «Водные биоресурсы и аквакультура». Л.В. Витвицкая, А.М. Тихомиров, Н.А. Егоров; АГТУАстрахань, 2002.160 с.
    12. Легеза М.И. 1972. Роль абиотических факторов среды при распределении осетровых (сем. Acipenseridae, Pisces) в Каспийском море // Вопр. ихтиологии. Т. 121. Вып.1. С. 13-24.
    13. Методическое указание на тему: Биологические основы акклиматизации. ? Астрахань. ? изд-во АГТУ, 2002.
    14. Мильштейн В.В. Осетроводство.: М. агропромиздат 1982.
    15. Молодцова А.И. Поляникова А.А. Смирнова. А.В. Кормовая база и питание заводской молоди белуги в естественных условиях реки Волги. //Воспроизводство осетровых, лососевых и частиковых рыб: сб. научных трудов ВНИРО. М. 1992 с 100110
    16. Мухачев И.С. Биологические основы рыбоводства: учеб. пособие: Мво. образования и науки. Р. Ф. Тюмень. Гос. университет Тюмень изво. Тюмень гос. унта, 2005 300 с.
    17. Поляникова А.А. Эриксон. Е.П. Питание белуги в Каспийском море в современных условиях // Тез. докл. 6й Всероссийской конфиренции по проблемам промысла. Мурмнск 1996 с. 119120
    18. Понамарев С.В. Гамыгин Е.А., Никоноров С.И. Понамарева Е.Н. Бахарева А.А. Грозеску Ю.Н. Технологии выращивания и кормления объектов аквакультуры юга России. Астрахань: «Нова плюс», 2002
    19. Понамарева Е.Н. Бахарева А.А. Методы стимулирования половых продуктов у рыб различными способами. Астрахань 2001
    20. Понамарева Е.Н. Бахарева А.А. Методы транспортировки икры, спермы, личинок, молоди и производителей рыб. Астрахань 2002
    21. Привезенцев Ю.А. Рыбоводство: учебник для студентов вузов/ Ю.А. Привезенцев, В.А. Власов. М.: Мир, 2004. 456 с.
    22. Рыбы Казахстана.1986. Т. 1. Алма-Ата: Наука. С. 57-71.
    23. Рыбохозяйственные исследования на Каспии: Результат НИР за 2005г Романов А.А., Журавлёва О.Л., Ходоревская Р.П., Левин А.В., Лепилина И.11., Коноплёва И.В., Сафаралиев И.А. Астрахань.: Издво Капнирх. 2006 436 с
    24. Справочник рыбовода по исскуственному разведению промысловых рыб/ под ред. д. б. н. проф. Н.И. КожинаМ. Пищевая пром.1971208 с.
    25. Ходоревская Р.П., Полянинова А.А. 2000. Оценка условий нагула белуги (Huso huso L.) в северо-западной части Северного Каспия // Морские гидробиологические исследования. М.: ВНИРО. С. 205-208.
    26. Черномашенцев. А.П. Мильштейн. В.В. Учебник рыбоводства 1 часть: М. Агропромиздат 1983.
  • 19. Биологические основы выращивания рыбца
    Курсовые работы Биология

    Проходная и полупроходная стайная рыба, поднимающаяся в реки для размножения. Идёт дважды в году: весной и осенью. Рыбцы осеннего хода зимуют в пресной воде. Рыбцы, обитающие в водохранилищах, идут метать икру во впадающие реки. Половозрелыми сырть и черноморский рыбец становятся в возрасте 4-5 лет, а каспийский рыбец в 3-4 года. На нерест сырть и рыбец поднимаются в реки и мечут икру на перекатах с каменистым, обычно галечным грунтом. Глубина на нерестилищах 0,5-1 м, скорость течения 0,7-0,8 м/с. В юго-западной части Балтийского моря и дельте Терека сырть может нереститься на растительности в небольших заливах и в устье рек. Рыбец Днепровско-Бугского лимана для размножения мигрирует главным образом в Днепр и его рукава. Лучшими нерестилищами для рыбца являются россыпи мелкого камня и ракушечника, образовавшиеся при размыве берегов и заливаемые водой только в период половодья. Эти участки значительную часть лета бывают вне воды, хорошо обсыхают, проветриваются, поэтому на них мало обрастаний и они менее заиленные. Небольшая глубина, относительная прозрачность воды позволяют наблюдать за нерестом с берега или, еще лучше, с лодки. Можно видеть, что готовые или близкие к нересту рыбцы заходят на нерестилище одновременно небольшими группами. Нерест растянут с мая по июль. На севере ареала он начинается позднее, чем на юге. Икра у самок созревает 2-4 порциями. Температурный диапазон, при котором происходит размножение, очень широк- от 12 до 24 С. Самку обычно сопровождают 5-7 самцов. Самки быстро передвигаются, выбирая места, подходящие для откладки икры. В момент икрометания самка становится против течения. Ее голова наклонена вниз, а хвостовой стебель поднят несколько вверх. Двигая хвостом, она медленно продвигается вперед и при этом выпускает икру. Находящиеся по бокам самцы поливают икру молоками. Нерест рыбца наиболее активно протекает в утренние (с 5 до 12) и вечерние (с 16 до 24) часы. С наступлением ночи нерест прекращается, рыбец отходит от берегов. На нерестилищах самцов гораздо больше, нежели самок. Во время нереста рыбца на тех же местах держатся стайки уклей, пескарей, бычков. Судя по наблюдениям, они поедают только ту икру, которая задерживается на верхней стороне камней. Обычно икра заносится под камни. Часто на стороне нерестилища, обращенной к течению, икра размещается плотным слоем, наподобие дерна. Подобные мощные кладки икры образуются благодаря значительным концентрациям производителей, а также потому, что икра от нескольких самок заносится в одни и те же ямки и щели. Скопления икры лежат рыхло и хорошо промываются водой. Икра выметывается и созревает порциями, чаще наблюдается 3 порции икры, но у самок, нерестующих первый раз, бывает 2 порции. Возможно, что у старых самок число порций икры также сокращается. Так, у самок восьмилетнего возраста и старше можно обнаружить только одну порцию икры или они и вовсе пропускают нерест. В р. Дон рыбец заходит в течение круглого года, особенно заметен его ход с осени до поздней весны, но основной ход весной (Рыжов, 1987).

  • 20. Биологические основы выращивания сазана (Cyprinus carpio L)
    Курсовые работы Биология

    Посадочный материал укладывают в фанерные, жестяные ящики с поперечными планками размером 60x75x10 или 55x55x10см. Ящики устанавливают один на другой по 7-8шт. в стопке. Дно выстилают мхом, марлевыми тюфячками, матами из рогоза и камыша. Во время полета рыбу орошают охлажденной водой. Погрузка рыбы длится быстрее не более 15-20 минут, а разгрузка не более 10. При перевозке в живорыбных вагонах в течении до 12 суток в один вагон загружают до 800кг трех и четырехлетков сазана, они хуже переносят перевозку чем белые амуры. Для молоди принята норма 30 тысяч штук на каждую живорыбную машину. В этих условиях при длительности перевозки 10 часов отход не превышает 5%. Сеголетков достигнув веса 15 гр, перевозят в этих машинах при температуре воды 5 -10 0C по норме 5 тысяч штук на каждую. Во время пути необходима постоянная аэрация при помощи компрессора. Рыбы большего веса 500-700г при длительности транспортировки 25 часов перевозятся при температуре 5-8 0C и норме посадки в одну автомашину в количестве 300-400 штук. Широко используют полиэтиленовые пакеты шириной 42-44см. (при толщине пленки 0,1-0,14мм). Для перевозки производителей и вообще крупной рыбы применяют пакеты объемом 50-80л. Для рыб старшего возраста длина пакета увеличивается до 1,35-1,55м. В соответствии с возрастом и условиями перевозки транспортируемой рыбы пакеты изготавливают из разного количества слоев полиэтилена: для личинок двухслойные, для рыб старших возрастов трехслойные. Перед транспортировкой, производителей выдерживают несколько суток без пищи, отмывают в носилках от грязи и слизи и затем загружают в пакеты. Пакеты перевозят в наклонном состоянии под углом в 45 градусов. Нормы загрузки рекомендуются следующие: в автомашине ГАЗ-51-50-60 штук; в автомашине ЗИЛ-150-70-80 штук; в вертолете МИ-4-25-30 штук; в самолете АН-2-до30 штук; в самолете ИЛ-14-до 100 штук. Производителей лучше перевозить осенью при температуре 5-7 0C, весьма нежелательна их транспортировка весной. На выживаемость перевозимой рыбы влияют несколько факторов, основным из которых является содержание кислорода в воде, накопление продуктов жизнедеятельности и свободное пространство. Большое значение также придается качеству и физиологическому состоянию перевозимых объектов. Вода для перевозки рыбы должна быть чистой, прозрачной, без механических и органических примесей. Очень важно, чтобы перевозимая рыба не испытывала резких колебаний температуры. Разница температуры воды, в которой рыба находилась до погрузки и воды, в которой она будет перевозится, не должна превышать 1-2 0C, также как и при выгрузки рыбы. Личинок можно транспортировать через 2-4 суток после выклева, вскоре после заполнения плавательного пузыря воздухом. При загрузке пакетов не допускаются травмированные, слабые и не жизнестойкие личинки, их отбраковывают. Личинки плохо переносят тряску, что имеет место при перевозке их от аэропортов до рыбхозов по плохой дороге, на неприспособленном транспорте. Недопустимы во время перевозке резкие колебания температуры: повышение за пределы 300 и падение ниже 150. Пакеты укладывают в картонные коробки размером 33x60x33см. Или 40x65x40см, предварительно выстланные хлорвиниловой пленкой, завязывают все это веревкой диаметром не менее 1см. Вес коробки 20кг. При длительной перевозке и высокой температуре воду меняют и добавляют новую порцию кислорода. Кроме пакетов, для перевозки личинок сазана используют канистры, загрузка в них в 2 раза быстрее.