Авторефераты по всем темам  >>  Авторефераты по биологии  

На правах рукописи

МЕДВЕДЕВА НАТАЛИЯ БОРИСОВНА

ВЛИЯНИЕ ГИПОГЛИКЕМИИ НА СОСТОЯНИЕ ЭНЕРГЕТИЧЕСКОГО И АЗОТИСТОГО ОБМЕНА В ПЕЧЕНИ КРЫС С ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫМ САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ

03.03.01 - физиология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени

кандидата биологических наук

Ярославль - 2012

Работа выполнена на кафедре биологической и общей химии

ГБОУ ВПО Ярославская государственная медицинская академия

Научный руководитель:	Потапов Павел Петрович - доктор медицинских наук, профессор
Официальные  оппоненты:	Федорова Марина Зотовна - доктор биологических наук, профессор, зав. кафедрой биотехнологии, морфологии и физиологии живых организмов ФГАОУ ВПО Белгородский государственный национальный исследовательский университет
	Тихомирова Ирина Александровна Ц доктор биологических наук, доцент кафедры анатомии и физиологии человека и животных ФГБОУ ВПО Ярославский государственный педагогический университет им. К.Д. Ушинского
Ведущая организация:	ГБОУ ВПО Ивановская государственная медицинская академия

Защита состоится 22 марта 2012 г. в 14.00 часов на заседании диссертационного совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Да212.307.02 при ФГБОУ ВПО УЯрославский государственный педагогический университет им. К.аД. УшинскогоФ (г. Ярославль, Которосльная наб., д. 46в, ауд. 506).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГБОУ ВПО Ярославский государственный педагогический университет им.аК.Д.аУшинского (150000, г.аЯрославль, ул. Республиканская,  д. 108).

Автореферат разослан  л_____  февраля  2012 г.

Ученый секретарь диссертационного совета

кандидат биологических наук,

доцент                                                 И.А. Осетров

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы

Уровень глюкозы в крови является одним из наиболее строго  регулируемых  физиологических показателей (Cryer, 2004, 2005; Briscoe, Davis, 2006; Griffin, Ojeda, 2008). Гипогликемия приводит к нарушению функций центральной и периферической нервной системы (Балаболкин, 2000; Дедов, Шестакова, 2003; Cryer, 2007; Marty et al., 2007; Kumar, 2007; Cherrington, 2008; Телушкин и соавт., 2008 и др.) и изменяет функциональную способность миокарда  (Robinson et al., 2003; Стельмах, 2004; Lee et al., 2004; Koivikko et al., 2005).

Стратегическую позицию в обеспечении метаболического  гомеостазиса  организма занимает печень. Именно печень обеспечивает поддержание уровня глюкозы в крови путем активации гормонзависимых процессов - мобилизации гликогена и глюконеогенеза. Роль печени в регуляции гликемии при различных физиологических и патологических состояниях, сопровождающихся изменением секреции гормонов, служила предметом многочисленных исследований (Cherrington, 1999, 2008). Инсулинодефицит приводит к развитию так называемых неалкогольных расстройств метаболизма в печени (West et al., 2006). Нарушения обмена, связанные с этим состоянием, могут приводить к уменьшению функциональных возможностей органа в отношении регуляции гликемии. С другой стороны, гипогликемия вызывает увеличение уровня контринсулярных гормонов (глюкагона, катехоламинов, адренокортикотропного гормона, соматотропного гормона, глюкокортикоидов, вазопрессина), стимулирующих катаболизм аминокислот и глюконеогенез в печени (Amiel, 1996; Inouye, 2002), и способна приводить к активации окислительного стресса и повреждению клеток (Телушкин, Ноздрачев, 1999; Телушкин и соавт., 2008).

Причиной развития гипогликемии в реальных условиях часто является увеличение уровня инсулина в крови, связанное с  передозировкой гормона у пациентов с сахарным диабетом. Таким образом, гипогликемия возникает, прежде всего, в условиях  предшествующего  инсулинодефицита и гипергликемии (Генес, 1970;  Балаболкин, 2000; Дедов, Шестакова, 2003; Cryer, 2003, 2004; Bolli, 2003;  Hirsch, 2005  и др.). Дефицит эффектов инсулина приводит к изменению доступности основных субстратов пластического и энергетического обмена и активности внутриклеточных ферментов (OТBrien et al., 2001; Bell, 2003; Griffin, Ojeda, 2008). Связанная с гипергликемией активация окислительного стресса вызывает повреждение многих ферментных систем, в частности углеводного и азотистого метаболизма  (Brownlee, 2001; Du et al., 2003).

Повышение метаболической нагрузки на печень при гипогликемии может оказывать  неблагоприятное воздействие на обмен  в печени и в целом организме, особенно если это накладываются на уже имеющиеся нарушения, вызванные предшествующим инсулинодефицитом и гипергликемией (Балаболкин, 2000; Дедов, Шестакова, 2003; West et al., 2006).

Изменения метаболизма при тяжелой инсулиновой гипогликемии исследованы недостаточно. Практически не рассматривались особенности метаболического ответа печени на инсулиновую гипогликемию в условиях предшествующего дефицита инсулина. Это затрудняет разработку рациональных методов терапии такого тяжелого состояния, как гипогликемическая кома, особенно гипогликемической комы у пациентов с сахарным диабетом. Поэтому комплексное изучение субстратного обеспечения основных метаболических процессов и активности ферментов энергетического и азотистого обмена в печени при инсулиновой гипогликемии, развивающейся в условиях предшествующего инсулинодефицита, представляет  существенный интерес.

Различные экспериментальные модели в течение многих лет успешно используются для изучения метаболизма при дефиците эффектов инсулина. Такие исследования позволяют раскрыть многие  механизмы патогенеза сахарного диабета и его осложнений (Баранов и соавт., 1983; Куликов, 1994; Szkudelski, 2001; Walde et al., 2002; Волчегорский и соавт.,  2008; 2009).

Цель исследования

Выявить и оценить изменения энергетического и азотистого метаболизма в печени при  инсулиновой гипогликемии, развивающейся в условиях предшествующего инсулинодефицита.

Задачи исследования

1. Изучить изменения содержания метаболитов энергетического и азотистого обмена в крови и печени  при инсулиновой гипогликемии у первоначально здоровых животных и крыс с экспериментальным сахарным диабетом.
2. Исследовать интенсивность гликогенолиза и гликолиза, активность ферментов цикла трикарбоновых кислот и ферментов азотистого обмена в печени при гипогликемии у первоначально здоровых животных и животных с экспериментальным сахарным диабетом.
3. Исследовать указанные метаболические параметры в восстановительном периоде после купирования гипогликемической комы глюкозой у первоначально здоровых животных и крыс с предшествующим инсулинодефицитом.

Научная новизна

Впервые  получены комплексные данные об изменениях показателей углеводного и азотистого  метаболизма в печени при инсулиновой гипогликемии у животных с предшествующим инсулинодефицитом.

Состояние гипогликемической комы у животных с инсулинодефицитом развивается при сохранении высокого уровня гликогена  и в условиях снижения активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и повышения активности сукцинатдегидрогеназы и не приводит к изменениям активности никотинамидадениндинуклеодид-зависимой изоцитратдегидрогеназы в печени.

Показано, что инсулиновая гипогликемия у животных с предшествующим инсулинодефицитом развивается в условиях увеличения активности ферментов катаболизма аминокислот в печени (аланин- и аспартат-аминотрансфераз, глутаминазы, глутаматдегидрогеназы) и приводит к еще большему увеличению катаболизма аминокислот и продукции мочевины в печени, а также приводит к повышению активности аденозинмонофосфатдезаминазы в печени и уровня мочевой кислоты в крови, которые наблюдаются и через 48 часов после купирования комы глюкозой.

Инсулиновая гипогликемия, развивающаяся в условиях предшествующего инсулинодефицита, потенцирует  изменения азотистого метаболизма при этом состоянии и способна вносить вклад в биохимическую симптоматику сахарного диабета.

Практическая значимость

Оценена роль изменений уровня  метаболитов углеводного, липидного и азотистого обмена в крови  и активности ферментов окислительного и азотистого метаболизма в печени в обеспечении энергетического гомеостазиса  при инсулиновой гипогликемии. Полученные данные позволяют раскрыть существенные особенности патогенеза  нарушений метаболизма в печени и определить факторы, которые снижают  функциональные возможности органа при гипогликемии, развивающейся  в условиях предшествующего дефицита инсулина.

Результаты исследования являются основой для разработки патогенетически обоснованных мероприятий, направленных на коррекцию неблагоприятных метаболических изменений при гипогликемии у пациентов с сахарным диабетом.

Основные положения, выносимые на защиту

1. При инсулиновой гипогликемии у первоначально здоровых животных развиваются метаболические эффекты, преимущественно связанные с анаболическим действием инсулина.

2. Гипогликемия у животных с инсулинодефицитом развивается в условиях увеличения катаболизма аминокислот в печени и способна потенцировать изменения азотистого метаболизма, характерные для инсулиновой недостаточности, приводит к повышению распада пуриновых нуклеотидов в печени и увеличению уровня мочевой кислоты в крови.  Анаболические эффекты инсулина выражены слабо, преобладают эффекты гипогликемии и активации контринсулярного аппарата.

3. На 2-е сутки после купирования тяжелой инсулиновой гипогликемией глюкозой у первоначально здоровых животных происходит нормализация исследованных показателей и наблюдаются эффекты, связанные с анаболическим действием инсулина, а у крыс с инсулинодефицитом большинство метаболических показателей возвращаются к исходному (инсулинодефицит) состоянию, и сохраняются условия для активации процессов свободнорадикального окисления.

Апробация работы

Основные результаты исследования доложены и обсуждены на Всероссийской конференции УМеханизмы синаптической передачиФ, Москва, 2004; конференции УРегиональная медицинская наука: тенденции и перспективы развития. Аспирантские чтения - 2004Ф, Самара, 2004; IV Всероссийской университетской научно-практической конференции молодых ученых и студентов по медицине, Тула, 2005;  VI конгрессе молодых ученых и специалистов УНауки о человекеФ (Томск, 2005); конференции УДостижения фундаментальных наук в решении актуальных проблем медициныФ, Астрахань-Волгоград-Москва, 2006; 2-ом Международном молодежном медицинском конгрессе  УСанкт-Петербургские научные чтенияФ,  СПб.,  2007; Российской конференции УАктуальные проблемы теоретической и прикладной биохимииФ, Челябинск, 2009; Всероссийской научно-практической конференции с международным участием  УАктуальные вопросы медицинской наукиФ, Ярославль, 2011.

Публикации

По теме диссертации опубликовано 14 работ.

Связь задач исследования с проблемным планом биологических наук

Диссертационная работа выполнена в соответствии с планом научных исследований Ярославской государственной медицинской академии (номер государственной регистрации  0120.0600923).

Объем и структура диссертации

Работа представлена на 151 странице печатного текста, содержит 40  таблиц,  14  рисунков и состоит из введения, обзора литературы,  3 глав экспериментальных исследований, заключения, выводов и списка литературы. Библиографический указатель включает  226  источников литературы, из них  168  на иностранных языках.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Эксперименты выполнены с использованием 379 белых беспородных крыс-самцов массой 220-260 г.

Экспериментальные животные были разделены на 7 групп. 1-ая группа - крысы с 7-суточным диабетом; 2-ая - крысы с 15-суточным диабетом; 3-я - исходно здоровые животные, у которых вызывали состояние гипогликемической комы; 4-ая - животные с 7-суточным диабетом в состоянии гипогликемической комы; 5-ая - животные, у которых вызывали состояние гипогликемической комы на фоне 15-суточного диабета; 6-ая -  первоначально здоровые крысы, обследованные через 30 и 60 минут и через 48 часов после купирования гипогликемической комы; 7-ая - животные с 15-суточным диабетом, обследованные через 30 и 60 минут и через 48 часов после купирования гипогликемической комы. Контрольные животные были обследованы одновременно с подопытными.

Экспериментальный аллоксановый сахарный диабет (инсулинодефицит) вызывали внутрибрюшинным введением аллоксана в дозе 135 мг/кг массы животного. Аллоксан вводили после 12-14-часового лишения крыс пищи.  Развитие  сахарного диабета сопровождалось  полиурией, глюкозурией и снижением массы тела.

Гипогликемическую кому вызывали внутримышечным введением инсулина в дозе 40 ЕД на 1 кг массы тела. Крысы впадали в кому через несколько часов после инъекции инсулина. Наступление комы фиксировали на основании  неврологических симптомов (утрата постуральных рефлексов и болевой чувствительности при сохранении корнеальных рефлексов). Эти признаки четко корреллируют с данными электроэнцефалографии и уровнем глюкозы в крови, притекающей к мозгу (Agardh et al., 1978; Butterworth et al., 1982). У животных 6-ой и 7-ой  групп купирование гипогликемической комы производили внутрижелудочным введением 3 мл 40% раствора глюкозы.

В ходе работы проведено изучение динамики ряда биохимических показателей после инъекции инсулина вплоть до развития гипогликемической комы у крыс 3-ей и 5-ой группы. В этом случае животных  забивали через каждые 15 минут. Полученные динамические ряды сглаживали методом Ускользящих среднихФ  по 5 точкам  (Гублер, 1978; Катинас, Быков, 1976; Павлов и соавт., 1986; Потапов, 1989).  В остальных случаях статистическую обработку проводили с использованием t-критерия Стьюдента.

Крыс забивали декапитацией под легким эфирным наркозом. Материалом для исследования служили сыворотка крови и печень животных.

В сыворотке крови определяли содержание глюкозы, кетоновых тел, свободных жирных кислот,  свободных аминокислот (аминоазот), а также конечных продуктов азотистого обмена: мочевины и мочевой кислоты (Тодоров, 1961; Покровский, 1969; Прохорова, 1982; Меньшиков, 1987; Никушкин и соавт., 1989).

В печени определяли концентрацию гликогена (Прохорова, 1982) и интенсивность  дихотомического распада углеводов с использованием в качестве субстратов глюкозы, глюкозо-6-фосфата и гликогена (Панин и соавт., 1982); активность окислительных ферментов: лактатдегидрогеназы (КФ 1.1.1.27), НАД-изоцитратдегидрогеназы (КФ 1.1.1.41)  и сукцинатдегидрогеназы (СДГ, КФ 1.3.99.1); НАДФ-зависимых дегидрогеназ:  глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (КФ  1.1.1.49) и глутатионредуктазы (КФ 1.6.4.2); активность ферментов азотистого обмена: аланинаминотрансферазы (КФ 2.6.1.2), аспартатаминотрансферазы (КФ 2.6.1.1),  тирозинаминотрансферазы (КФ 2.6.1.5),  глутаматдегидрогеназы (КФ 1.4.1.3), глутаминазы (КФ 3.5.1.2) и АМФ-дезаминазы (КФ 3.5.4.6) (Левин, 1969; Кравченкова, 1977; Прохорова, 1982;  Телушкин и соавт.,  2001). 

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Введение высокой дозы инсулина первоначально здоровым животным приводило к развитию выраженной гипогликемии (уровень глюкозы в крови 1.0-2.0 ммоль/л, рис.1), гиполактатемии, снижению уровня СЖК  и кетоновых тел в крови (табл. 1). Это обычные инсулиновые эффекты - инсулин увеличивает потребление глюкозы мышечной и жировой тканями и угнетает липолиз в жировой ткани и синтез кетоновых тел в печени (Timothy, 1996; Дедов, Шестакова, 2003; Holm, 2003; Griffin, Ojeda, 2008).

Уменьшение концентрации мочевины и свободных аминокислот в крови у первоначально здоровых животных при инсулиновой гипогликемии (табл. 2) является, по-видимому, результатом действия инсулина - гормон стимулирует потребление аминокислот клетками и протеиносинтез во многих тканях, в том числе и в печени (Charlton,  Nair,  1998). Снижение катаболизма аминокислот приводит к редукции синтеза мочевины. Уменьшение концентрации мочевой кислоты  в крови  (табл. 2)  также можно отнести  к  анаболическим  эффектам

Таблица 1. Уровень энергетических субстратов в  крови и печени экспериментальных животных (Mm)

Показатель			Группа 1	Группа 2	Группа 3	Группа 4	Группа 5
Глюкоза, ммоль/л		К	6.000.16	5.280.5	5.280.15	6.000.16	5.280.15
		О	10.200.94***	10.101.33**	1.780.13***	2.030.15***	2.100.17***
актат, ммоль/л		К	2.100.13	2.140.11	2.140.11	2.100.13	2.140.11
		О	2.150.25	2.100.18	1.300.10***	1.150.11***	1.900.16
СЖК, мкмоль/л		К	42028	44227	44227	42028	44227
		О	46654	20518***	28531***	22123***	26617***
Кетонов. тела, мг %		К	20.92.4	35.42.3	35.42.3	38.53.3	35.42.3
		О	37.09.8	12.73.6***	19.42.2***	17.92.8***	17.32.8***
Гликоген печени мг/г ткани		К	22.01.2	24.52.7	24.52.7	22.01.2	24.52.7
		О	12015***	99.014.0***	3.40.3***	17.11.6*	15.01.4**

Примечание. Здесь и в таблицах 2-7 статистически достоверные по сравнению с контролем изменения обозначены: * - P < 0.05, ** - P < 0.01, *** - P < 0.001; в каждой группе 6-8 животных.

инсулина, т.е. это связано с увеличением синтеза пуриновых нуклеотидов и торможением их распада (Borza et al., 2005).

Наиболее вероятной причиной снижения интенсивности гликогенолиза (табл. 5) в печени при инсулиновой гипогликемии у первоначально здоровых животных  является  действие инсулина, поскольку гормон приводит к уменьшению активности гликогенфосфорилазы в печени (Adkins et al., 2003). Вместе с тем содержание гликогена в печени исходно здоровых крыс, находящихся в состоянии гипогликемической комы,  значительно снижено (табл.1), т.е. у этих животных инсулин не препятствует мобилизации гликогена печени при гипогликемии. Существенное повышение активность Г6Ф-ДГ в печени крыс при инсулиновой гипогликемии и через 48 часов после купирования гипогликемической комы глюкозой (табл. 5,7)  может быть связано с эффектами инсулина, который  стимулирует экспрессию гена этого фермента в печени (Wagle  et al., 1998).

Умеренное, но статистически достоверное уменьшение активности ААТ и АсАТ и увеличение активности ТАТ у животных 3-ей группы (табл. 5)  также следует отнести к эффектам инсулина (Vozarova et al., 2002; Roesler, 2001; Norrelund et al., 2003; Desvergne et al., 2006). Колебаний активности других исследованных ферментов азотистого метаболизма, а также ЛДГ и СДГ не выявлено. Таким образом, изменения показателей углеводного и азотистого обмена при инсулиновой гипогликемии у исходно здоровых животных в значительной степени связаны с действием собственно инсулина.

У животных с развившимся  сахарным (аллоксановым) диабетом  были обнаружены типичные для дефицита  инсулина изменения - гипергликемия, гиперкетонемия, кетонурия, увеличение уровня мочевины в крови (табл. 1,2). Снижение концентрации СЖК и кетоновых тел, обнаруженное у животных на 15-е сутки после введения аллоксана,  обусловлено, по-видимому, уменьшением запасов триацилглицеролов в жировой ткани (Баранов и соавт., 1983).

Развитие инсулинодефицита сопровождалось значительным повышением содержания гликогена в печени экспериментальных животных, вместе с тем изменений интенсивности гликогенолиза не наблюдалось (табл.1,5). Такие результаты оказались до некоторой степени неожиданными, поскольку увеличение мобилизации гликогена печени рассматривается как одна из причин развития гипергликемии при сахарном диабете (Балаболкин, 2000). Повышение интенсивности гликолиза при внесении в среду инкубации глюкозы и глюкозо-6- фосфата (табл. 5), отражающее увеличение активности гексокиназы и фосфофруктокиназы, обусловлено, по-видимому,  развитием гипергликемии у этих животных. Инсулин увеличивает  активность Г6Ф-ДГ в печени и выявленное в работе снижение активности фермента у животных с экспериментальным диабетом обусловлено дефицитом эффектов инсулина.

Развитие инсулинодефицита сопровождалось  повышением активности ААТ, АсАТ и ТАТ, глутаматдегидрогеназы и глутаминазы в печени экспериментальных животных (табл. 6), что в совокупности с ростом уровня мочевины в крови свидетельствует о значительном  катаболизме аминокислот. Увеличение распада аминокислот в печени характерно для инсулинодефицита.

Изменения уровня субстратов и активности ферментов энергетического и азотистого обмена типичные для дефицита эффектов инсулина наблюдались в большей степени на 15-е сутки после инъекции аллоксана.

  К  60 120 180  мин 

Рис. 1. Изменение концентрации глюкозы в крови первоначально здоровых  крыс в течение времени после введения инсулина. По оси абсцисс - промежутки времени (шаг 15 мин), по оси ординат - концентрация глюкозы в ммоль/л. УКФ - уровень глюкозы в крови контрольных животных.

        К 60 120 180  мин 

Рис. 2.  Изменение концентрации глюкозы в крови диабетических  крыс в течение времени после введения инсулина. По оси абсцисс - промежутки времени (шаг 15 мин), по оси ординат - концентрация глюкозы в ммоль/л. УКФ - уровень глюкозы в крови контрольных животных.

Таблица 2. Уровень  субстратов азотистого обмена в  крови экспериментальных животных  (Mm)

Показатель		Группа 1	Группа 2	Группа 3	Группа 4	Группа 5
Аминоазот, мг %	К	5.60.3	6.10.4	6.10.4	5.60.3	6.10.4
	О	5.90.2	6.70.3	3.00.1***	4.10.4*	4.50.3**
Мочевина, ммоль/л	К	8.9 0.6	6.80.3	6.80.3	8.90.6	6.80.3
	О	9.80.9	13.63.2*	2.30.2***	9.61.1	22.03.8***
Мочевая кислота, мкмоль/л	К	2317	2147	22711	2317	2137
	О	19510**	2298	15913**	17816**	27016**

Таблица 3. Показатели энергетического обмена в  крови и печени крыс в восстановительном периоде  после  купирования  гипогликемической  комы

(M m)

Показатель		Группа 6			Группа 7
		30 мин	60 мин	48 часов	30 мин	60 мин	48 часов
Глюкоза, ммоль/л	К	5.490.17	5.490.17	5.490.17	5.540.21	5.540.21	5.540.21
	О	8.572.43	3.650.26**	5.510.27	9.001.0**	13.941.8**	7.840.83*
актат, моль/л	К	2.000.14	2.000.14	2.000.14	2.200.15	2.200.15	2.200.15
	О	2.160.17	2.310.19	2.200.17	2.350.20	2.400.19	2.300.22
СЖК, мкмоль/л	К	47119	47119	47119	47326	47326	47326
	О	35035**	31929***	1469***	28631***	21634***	23927***
Кетон. тела, мг/л	К	36.21.8	36.21.8	36.21.8	37.81.9	37.81.9	37.81.9
	О	15.12.5***	17.32.8***	12.21.9***	11.22.9***	15.83.3***	17.33.1***
Гликоген печени, мг/г ткани	К	27.85.8	27.85.8	20.61.4	16.02.8	16.02.8	18.33.2
	О	10.01.0**	42.76.5	41.52.8***	16.84.0	27.32.8*	16932***

  К 60 120 180 240  мин

Рис. 3.  Изменение концентрации мочевины в крови первоначально здоровых  крыс в течение времени после введения инсулина. По оси абсцисс - промежутки времени (шаг 15 мин), по оси ординат - концентрация мочевины в ммоль/л. УКФ - уровень мочевины в крови контрольных животных.

  К  60 120  180 240 мин

Рис. 4.  Изменение концентрации мочевины в крови диабетических  крыс в течение времени после введения инсулина. По оси абсцисс - промежутки времени (шаг 15 мин), по оси ординат - концентрация мочевины в ммоль/л.  УКФ - уровень мочевины в крови контрольных животных.

Введение высокой дозы инсулина животным с экспериментальным сахарным диабетом  вызывало развитие гипогликемической комы при достижении уровня глюкозы в крови 1.0-2.0 ммоль/л и сопровождалось снижением количества лактата в крови (табл.1, рис.2). Содержание СЖК у крыс этой группы было также ниже уровня контроля (интактные животные), однако превышало величину  показателя в исходном состоянии (крысы с развившимся инсулинодефицитом). Другими словами,  инсулиновая гипогликемия в данном случае  приводила к увеличению уровня СЖК в крови. Вероятными причинами таких изменений являются снижение антилиполитического действия инсулина и больший эффект контринсулярных гормонов при гипогликемии - все контринсулярные гормоны стимулируют липолиз в жировой ткани (Timothy, 1996; Matthaei et al., 2000; Fruhbeck et al., 2001; Holm, 2003).

Таблица 4. Показатели азотистого обмена в  крови крыс в восстановительном периоде после купирования гипогликемической комы (M m)

Показатель		Группа 6			Группа 7
		30 мин	60 мин	48 часов	30 мин	60 мин	48 часов
Аминоазот, мг %	К	6.70.2	6.70.2	5.70.4	6.10.2	6.10.2	4.40.1
	О	5.30.3**	5.20.4**	5.20.5	4.30.3***	3.50.2***	5.00.2*
Мочевина, моль/л	К	4.80.4	4.80.4	4.80.4	6.50.3	6.50.3	6.50.3
	О	6.30.3**	6.10.6	2.90.3**	12.91.4***	15.81.6***	14.42.4**
Мочевая кислота, мкмоль/л	О	2147	2147	2147	20713	20713	20713
	К	18315	16117**	2459*	23841	14712**	22042

Тяжелая гипогликемия у животных с инсулинодефицитом, как и у первоначально здоровых животных, приводила к снижению уровня гликогена в печени (табл. 1). Однако количество полисахарида в печени диабетических крыс на момент развития гипогликемической комы  значительно (в 5 раз) превышало величину показателя у исходно  здоровых животных в состоянии комы. Таким образом, гипогликемия, приводящая к развитию гипогликемической комы, у крыс с сахарным диабетом возникает при сохранении относительно высокого  уровня гликогена в печени. Вместе с тем у этих животных существенно увеличивалась скорость накопления лактата при использовании в качестве субстрата гликогена (табл. 5). Обнаруженные изменения могут быть связаны с сохранением ингибирующего действия инсулина на активность глюкозо-6-фосфатазы у животных с инсулинодефицитом  и отражать замыкание холостого, футильного цикла: гликоген глюкозо-6-фосфат   гликоген (Collier, Scott, 2004; Azzout-Marniche et al. 2007).

Таблица 5. Интенсивность дихотомического распада и активность окислительных ферментов в печени экспериментальных животных (M m)

Показатель		Группа 1	Группа 2	Группа 3	Группа 4	Группа 5
Дихотом. распад глюкозы	К	12.60.6	12.40.5	12.40.5	12.60.6	12.40.5
	О	12.51.2	15.61.0**	12.31.1	12.61.3	15.80.7***
Дихотом. распад гликогена	К	18.30.8	19.10.6	19.10.6	18.30.8	19.10.6
	О	19.50.7	20.00.9	11.61.1***	18.12.2	24.91.7**
Дихотом. распад Г6Ф-та	К	25.41.2	27.41.1	27.41.1	25.41.2	27.41.1
	О	26.01.9	34.41.9**	23.71.1*	25.61.7	35.72.5**
ДГ	К	58922	61126	61126	58922	61126
	О	73237**	60154	58250	58524	39262**
Г6Ф-ДГ	К	12.11.1	10.10.4	10.10.4	12.11.1	10.10.4
	О	11.30.7	4.30.2***	21.81.2***	13.21.0	6.20.3***
ГР	К	46.00.8	47.10.8	47.10.8	46.00.8	47.10.8
	О	49.21.0*	46.91.8	50.50.7*	52.41.3***	45.71.1
СДГ	К	1.470.03	1.550.05	1.550.05	1.470.03	1.550.05
	О	1.730.07**	1.580.05	1.510.08	1.630.06*	1.940.07***

Примечание. Здесь и в таблице 7: Скорость дихотомического распада глюкозы, гликогена и Г6Ф, активности ЛДГ, Г6Ф-ДГ и ГР выражены в нмоль мин -1 мг белка -1, активность СДГ - в мкмоль мин -1 г ткани -1.

У животных с развившимся инсулинодефицитом в состоянии гипогликемической комы и через 48 часов после купирования ее глюкозой активность Г6Ф-ДГ  в печени увеличивалась по сравнению с исходным состоянием (крысы  на  15-е  сутки  после  введения  аллоксана).  Однако  показатель  оставался

Таблица 6. Активность ферментов азотистого обмена в печени экспериментальных животных (M m)

Показатель		Группа 1	Группа 2	Группа 3	Группа 4	Группа 5
ААТ	К	23.71.2	24.30.6	24.30.6	23.71.2	24.30.6
	О	31.80.6***	28.50.6***	22.50.6*	31.21.7**	30.51.5***
АсАТ	К	16.30.3	15.70.4	15.70.4	16.30.3	15.70.4
	О	21.80.3***	18.70.6***	14.20.3*	18.90.9**	21.31.4***
ТАТ	К	1642	1713	1713	1642	1713
	О	1752**	1823*	2579***	1685	1703
ГДГ	К	0.560.01	0.610.02	0.610.02	0.560.01	0.610.02
	О	0.640.02**	0.800.05**	0.580.03	0.550.01	0.660.02
АМФ-Д	К	--	927	927	--	927
	О	--	798	8314	--	16115***
ГЛТ	К	--	41520	41520	--	41520
	О	--	64353***	45913	--	67354***

Примечание. Здесь и в таблице 7 активности ААТ, АсАТ и ГДГ выражены в мкмоль мин -1 г ткани -1,  ТАТ, АМФ-Д  и ГЛТ  -  в нмоль мин -1 г ткани -1 .

пониженным относительно уровня контроля  (интактные животные), т.е. анаболические эффекты инсулина у животных с предшествующим инсулинодефицитом  в полной мере  не проявляются. Таким образом, активность фермента, регулирующего скорость пентозофосфатного пути и продукцию НАДФН2 в печени у животных с сахарным диабетом во всех условиях настоящего эксперимента оставалась сниженной. Такие изменения следует считать явно неблагоприятными, поскольку  уменьшение производства НАДФН2 способно снижать резистентность гепатоцитов к окислительному повреждению (West, 2000).

С активацией окислительного стресса может быть связано и обнаруженное в настоящем исследовании увеличение  активности СДГ в состоянии гипогликемической комы у крыс с развившимся инсулинодефицитом (табл. 5).  Инсулин  способен увеличивать активность СДГ и связанную с этим  и  продукцию  перекиси водорода в митохондриях печени  (Pomytkin, Kolesova, 2002; 2003; Zoccarato et al., 2004; Grivennikova, Vinogradov, 2006). Следует отметить, что увеличения активности СДГ у исходно здоровых животных при инсулиновой гипогликемии не наблюдалось.

Таблица 7. Активность  ферментов энергетического и азотистого обмена в печени крыс через 48 часов после купирования гипогликемической комы (M m)

Показатель		Группа 6	Группа 7
ДГ	К	58327	58327
	О	64429	61534
Г6Ф-ДГ	К	10.00.4	10.00.4
	О	13.50.8**	5.70.4***
ГР	К	45.31.1	45.31.1
	О	47.11.5	45.91.2
СДГ	К	1.510.06	1.510.06
	О	1.380.21	1.480.07
ААТ	К	24.60.6	24.60.6
	О	23.10.6	32.41.7***
АсАТ	К	16.60.6	16.60.6
	О	18.10.6	21.31.2**
ТАТ	К	167.22	1672
	О	1341***	1686
ГДГ	К	0.550.02	0.550.02
	О	0.500.03	0.770.04***
АМФ-Д	К	1049	1049
	О	11215	13416
ГЛТ	К	42724	42724
	О	20529***	69159***

Введение высокой дозы инсулина крысам с развившимся инсулинодефицитом, в отличие от первоначально здоровых животных, не сопровождалось уменьшением содержания мочевины в крови, напротив,  показатель имел явную тенденцию к увеличению по отношению к уровню животных с 15-ти суточным диабетом (рис.3,4, табл. 2).  Выявленные изменения, по-видимому,  отражают активацию глюконеогенеза из аминокислот в печени диабетических животных в исходном состоянии и при инсулиновой гипогликемии. Иными словами, инсулин не препятствует катаболизму аминокислот и глюконеогенезу в печени крыс с предшествующим инсулинодефицитом. Свидетельством этого является также и поддержание относительно высокого количества гликогена в печени крыс с диабетом в состоянии гипогликемической комы (табл. 1). Решающее значение имеют, по-видимому, гипогликемия и связанная с нею активация контринсулярного аппарата. Известно, что все контринсулярные гормоны стимулируют катаболизм аминокислот и продукцию мочевины в печени (Battezzati et al., 2000;  Krishna et al., 2000; Norrelund et al., 2003).

У крыс с развившимся инсулинодефицитом после введения высокой дозы инсулина (5-ая группа) активности ААТ, АсАТ  и глутаминазы оставались повышенными,  и наблюдалось значительное увеличение активности АМФ-Д (табл. 6). Такие изменения активности ферментов азотистого обмена в печени вместе со значительным ростом уровней мочевины и мочевой кислоты в сыворотке крови (табл. 2)  свидетельствуют об увеличении катаболизма аминокислот и пуриновых нуклеотидов у крыс с сахарным диабетом при инсулиновой гипогликемии. Увеличение активности АМФ-Д тем более интересно, что у крыс с инсулинодефицитом величина этого показателя не изменялась, увеличение наблюдалось только в состоянии гипогликемической комы  у животных с экспериментальным диабетом и сохранялось через 48 часов после купирования комы (табл. 7).

Катализируемая АМФ-Д  реакция является  лимитирующим этапом катаболизма адениловых нуклеотидов, поскольку не весь инозинмонофосфат регенерирует в цикле пуриновых нуклеотидов в АМФ (Schultz, Lowenstein, 1976; Borza et al., 2003). Катаболизм инозинмонофосфата и последующее окисление гипоксантина и ксантина в ксантиноксидазной реакции до мочевой кислоты сопровождаются образованием супероксиданионрадикала, инициирующего процессы перекисного окисления (Desco et al., 2002).  Окисление SH-групп остатков цистеина в молекуле фермента, в свою очередь,  увеличивает активность АМФ-Д (Tavazzi et al., 2001). Таким образом, повышение активности АМФ-Д может быть и одной из причин и, одновременно, следствием активации окислительного стресса у крыс с инсулинодефицитом при гипогликемии.

Результатом активации АМФ-Д и катаболизма пуриновых азотистых оснований является увеличение продукции мочевой кислоты. Содержание ее в сыворотке крови крыс с развившимся  инсулинодефицитом в условиях тяжелой гипогликемии  возрастало и оставалось повышенным через 48 часов после купирования комы глюкозой (табл. 7). Рост уровня мочевой кислоты в крови является  свидетельством серьезных нарушений метаболизма, поскольку может быть не только следствием катаболизма  свободных  пуриновых нуклеотидов и нуклеотидсодержащих коферментов, но и результатом распада  нуклеиновых кислот и гибели  клеток (Зайчик, Чурилов,  2000).

Динамика гликемии после купирования комы у первоначально здоровых животных и у крыс с сахарным  диабетом  имела существенные различия. У исходно здоровых животных уровень глюкозы в крови через 60 мин после купирования комы  находился на  нижней границе физиологической нормы (табл. 3).  У животных с развившимся  инсулинодефицитом после купирования гипогликемической комы концентрация глюкозы в крови быстро повышалась и через 60 мин превышала величину показателя у контрольных крыс в 2.5 раза. Относительно низкий уровень глюкозы в крови у первоначально здоровых животных через 60 мин после введения глюкозы является, по-видимому, результатом выделения эндогенного инсулина в ответ на увеличение содержания глюкозы в крови. Уровни СЖК и кетоновых тел через 30 мин и 60 мин у животных 6-й и 7-й  групп оставались сниженными (табл. 3), что является результатом действия инсулина в условиях увеличения гликемии.

Купирование гипогликемической комы у исходно здоровых животных и у крыс с дефицитом инсулина приводило к увеличению уровня гликогена в печени во все сроки исследования (табл. 3). Однако через 48 часов после купирования комы у  первоначально здоровых животных количество гликогена в печени увеличивалось в 2 раза, а у крыс с сахарным диабетом - более чем в 9 раз, т.е. возвращалось к высокому исходному уровню. Вероятной причиной выявленных изменений является активация глюконеогенеза в печени крыс с инсулинодефицитом:  каждая вторая молекула глюкозы, произведенной в ходе глюконеогенеза,  используется в синтезе гликогена (Gomis  et al., 2003; Azzout-Marniche et al., 2007). С активацией глюконеогенеза, по-видимому, связано и накопление гликогена у диабетических животных, и сохранение высокого уровня гликогена в печени крыс с сахарным диабетом в состоянии гипогликемической комы (табл. 1).

Значительное  накопление гликогена в печени крыс с инсулинодефицитом через 48 часов после купирования комы (табл. 3) свидетельствует также о том, что активность ферментных систем синтеза гликогена у этих животных сохраняется на достаточно высоком уровне. Инсулин увеличивает активность гликогенсинтетазы и уменьшает активность гликогенфосфорилазы в печени (Ferre et al., 2001;  O`Brien et al., 2001;Cohen, 2002; Pap, Cooper, 2002; Halse et al., 2003; Bouch et al., 2004 и др.). Однако,  накопление гликогена в печени этих животных связано скорее не с действием инсулина, но с исходно высокой интенсивностью глюконеогенеза. В отличие от первоначально здоровых животных у крыс с сахарным диабетом повышался уровень СЖК в крови через 48 часов после купирования гипогликемической комы (табл. 3). Увеличение окисления СЖК необходимо для осуществления глюконеогенеза в печени (Bergman, Ader, 2000;  Shah et al., 2002; Roef et al., 2003; Staehr et al., 2003).

  У исходно здоровых животных и у крыс с дефицитом инсулина активности ЛДГ, глутатионредуктазы, СДГ и НАД-ИЦДГ через 48 часов после купирования гипогликемической комы не отличались от уровня контроля (табл. 7). В этот период активность Г6Ф-ДГ у первоначально здоровых животных была увеличена по сравнению с уровнем контроля, а у крыс с инсулинодефицитом оставалась существенно сниженной. Такие изменения активности Г6Ф-ДГ свидетельствуют о стойком снижении мощности антиоксидантных систем в печени  животных с дефицитом  инсулина.

Выраженные различия между первоначально здоровыми животными и крысами с развившимся инсулинодефицитом были выявлены и при определении ферментов азотистого метаболизма через 48 часов после купирования комы (табл. 7). У исходно здоровых животных изменений активности ААТ и глутаматдегидрогеназы в печени не наблюдалось,  и обнаруживалось снижение активности глутаминазы, тогда как у крыс с инсулиндефицитом активность этих ферментов была существенно повышена. Следует отметить также явную тенденцию к увеличению  активности АМФ-Д на 2-е сутки после купирования гипогликемической комы  у крыс с инсулинодефицитом.

Через 48 часов после купирования комы содержание мочевины в крови у исходно здоровых животных снижалось наполовину, а у крыс с  дефицитом инсулина, напротив, было значительно увеличено (в 2 раза по отношению к уровню контроля) (табл. 4). Количество свободных аминокислот в крови на 2-е сутки после перенесенного воздействия у животных с инсулинодефицитом  также было повышено. Такие изменения в совокупности с существенным повышением активности ферментов катаболизма аминокислот в печени  могут свидетельствовать уже об увеличении распада тканевых белков у крыс, перенесших гипогликемическую кому.

Таким образом, гипогликемия, развивающаяся на фоне предшествующего инсулинодефицита, приводит к  увеличению катаболизма аминокислот в печени и может нарушать субстратное обеспечение протеиносинтеза в масштабе целого организма. Также крайне неблагоприятными является стойкие, сохраняющиеся у этих крыс и после купирования гипогликемии нарушения, способствующие активации процессов свободнорадикального окисления в печени.

Результаты проведенного исследования показывают, что инсулиновая гипогликемия способна отягощать метаболические изменения, характерные для сахарного диабета и вносить вклад в биохимическую симптоматику  заболевания. Это имеет практическое значение, тем более что инсулиновая гипогликемия в ходе лечения пациентов с сахарным диабетом наблюдается неоднократно (Cryer, 2004, 2005; Briscoe, Davis, 2006; Телушкин и соавт., 2008).

ВЫВОДЫ

1. Тяжелая инсулиновая гипогликемия у исходно здоровых животных вызывает изменения метаболизма, связанные преимущественно с действием инсулина: уменьшается уровень свободных жирных кислот, аминокислот и мочевины в крови, увеличивается активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы  и умеренно уменьшается активность аланин- и аспартатаминотрансфераз в печени.

2. Инсулин не препятствует катаболизму аминокислот в печени крыс с предшествующим инсулинодефицитом - активность ферментов катаболизма аминокислот (аланин- и аспартат- аминотрансфераз, глутаминазы глутаматдегидрогеназы) в печени при инсулиновой гипогликемии  значительно увеличена, в крови повышается уровень мочевины.

3. Инсулиновая гипогликемия у животных с сахарным диабетом, в отличие от первоначально здоровых крыс, приводит к увеличению активности аденозинмонофосфатдезаминазы в печени и концентрации мочевой кислоты в крови, что является свидетельством увеличения катаболизма пуриновых нуклеотидов.

4. Инсулиновая гипогликемия приводит к уменьшению интенсивности гликогенолиза в печени и не препятствует мобилизации гликогена печени у первоначально здоровых крыс. Гипогликемическая кома у животных с инсулинодефицитом развивается при сохранении высокого уровня гликогена в печени и сопровождается увеличением скорости гликогенолиза. Значительное  накопление гликогена в печени крыс с инсулинодефицитом через 48 часов после купирования комы свидетельствует о сохранении  активности ферментных систем синтеза гликогена у этих животных.

5. Инсулиновая гипогликемия у животных с инсулинодефицитом создает условия для активации перекисного окисления в печени: активность глюкозо-6-фосфатазы снижена и увеличивается активность аденозин-монофосфатдезаминазы. Такие изменения сохраняются через 48 часов после купирования  комы глюкозой.

6. Инсулин не угнетает липолиз в жировой ткани у животных с предшествующим инсулинодефицитом -  в отличие от первоначально здоровых крыс количество свободных жирных кислот в крови у этих животных в состоянии инсулиновой гипогликемии увеличивается и остается повышенным через 48 часов после купирования гипогликемической комы.

7. Купирование тяжелой инсулиновой гипогликемии глюкозой через 48 часов сопровождается полной нормализацией метаболических показателей у исходно здоровых животных, а у крыс с инсулинодефицитом приводит к метаболическому состоянию, характерному для инсулиновой недостаточности.

Всего по материалам диссертационного исследования опубликовано 14 работ.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ ДИССЕРТАЦИИ ОТРАЖЕНО В СЛЕДУЮЩИХ ПУБЛИКАЦИЯХ АВТОРА:

1. Медведева, Н. Б. Показатели метаболизма у крыс при многократной инсулиновой гипогликемии / П. К. Телушкин, А. Д. Ноздрачев, П. П. Потапов, Н. Б. Медведева  //  Проблемы эндокринологии. - 2006. - Т.52, № 5. - С. 45-47. (авторских - 0,1 п.л.) (Журнал включен в перечень изданий рекомендованных ВАК РФ).

2. Медведева, Н. Б. Изменения показателей энергетического обмена в сердце крыс при аллоксановом диабете и инсулиновой гипогликемии / П. П. Потапов, А. Ю. Стельмах, П. К. Телушкин, Н. Б.  Медведева // Вопросы биологической, медицинской и фармармацевтической химии. - 2007. - № 1. - С. 24-26. (авторских - 0,1 п.л.) (Журнал включен в перечень изданий рекомендованных ВАК РФ).

3. Медведева, Н. Б. Показатели азотистого обмена при инсулиновой гипогликемии у крыс с аллоксановым диабетом / Н. Б. Медведева, П. К. Телушкин, А. Ю. Стельмах // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2008. - Т. 146, № 8. - С. 168-170. (авторских - 0,2 п.л.) (Журнал включен в перечень изданий рекомендованных ВАК РФ).

4.  Медведева, Н. Б. Ферменты энергетического обмена и пероксидное окисление липидов в печени крыс при инсулиновой гипогликемии / Н. Б. Медведева // Сборник научных работ студентов и молодых ученых ЯГМА. - Ярославль, 2003. - С. 13. (авторских-0,06 п.л.)

5.  Медведева, Н. Б. Интенсивность гликолиза в головном мозге и сердечной мышце крыс при гипогликемии / Н. Б. Медведева,  А. Ю. Стельмах // Сборник научных работ студентов и молодых ученых ЯГМА. - Ярославль, 2004. - С. 19-20. (авторских-0,03 п.л.)

6. Медведева, Н. Б. Интенсивность гликолиза и активность ферментов энерге-тического обмена  в печени крыс при гипогликемии на фоне аллоксанового диабета / Н. Б. Медведева // Сборник материалов докладов V научной конференции молодых ученых УРегиональная медицинская наука: тенденции и перспективы развития. Аспирантские чтенияФ - 2004. - Самара, 2004. - С. 433-434. (авторских-0,06 п.л.)

7. Медведева, Н. Б.  Интенсивность гликолиза и активность некоторых окислительных  ферментов  в головном  мозге крыс при инсулиновой гипо-гликемии на фоне аллоксанового диабета / П. К. Телушкин, П. П. Потапов, Н. Б. Медведева, А. Ю. Стельмах // Материалы Всероссийской конференции  УМеханизмы синаптической передачиФ. -  М., 2004. - C. 92. (авторских-0,01 п.л.)

8. Медведева, Н. Б. Активность ферментов азотистого обмена в печени крыс при инсулиновой гипогликемии / Н. Б.  Медведева // Сборник материалов IV Всероссийская университетская научно-практическая конференция молодых ученых и студентов по медицине.  - Тула, 2005. -  С. 213-214. (авторских-0,06 п.л.)

9. Медведева, Н. Б. Изменения азотистого обмена при гипогликемии у крыс с экспериментальным сахарным диабетом / Н. Б.  Медведева // Сборник научных работ студентов и молодых ученых ЯГМА. - Ярославль, 2006. - С. 22-23. (авторских-0,06 п.л.)

10. Медведева, Н. Б. Уровень метаболитов в крови и активность ферментов азотистого обмена в сердце при гипогликемии / А. Ю. Стельмах, Н. Б. Медведева, П. П. Потапов, П. К. Телушкин, Т. Е. Шидловская //  Материалы 5-й научно-практической конференции с международным участием УДостижения фундаментальных наук в решении актуальных проблем медициныФ - Астрахань-Волгоград-Москва.: Изд-во АГМА, 2006.  - С. 151-155. (авторских-0,01 п.л.)

11. Медведева, Н. Б. Показатели азотистого обмена у крыс при инсулиновой гипогликемии  / Н. Б.  Медведева // Сборник 2-й Международный молодежный медицинский конгресс. Санкт-Петербургские научные чтения. - СПб.: Изд-во СПб. Педиатрического университета им. И.П.Павлова,  2007. - С. 192. (авторских-0,06 п.л.)

12. Медведева, Н. Б. Инсулиновая гипогликемия потенцирует нарушения азотистого метаболизма при сахарном диабете / Н. Б. Медведева, П.П. Потапов, П.К. Телушкин // Актуальные вопросы медицинской науки: Сборник научных работ сотрудников Ярославской государственной медицинской академии, посвященный 65-летию ЯГМА. -  Ярославль: Изд-во  ООО ФЯрМедиаГрупФ, 2009. - С.98-99. (авторских-0,02 п.л.)

13. Медведева, Н. Б. Изменения азотистого обмена при гипогликемии / П. П. Потапов, Н. Б. Медведева, П. К. Телушкин, А. Ю.  Стельмах // УАктуальные проблемы теоретической и прикладной биохимииФ. Российская конференция, посвященная 80-летию со дня рождения Р.И. Лившица, приуроченная к 65-летию Челябинской государственной медицинской академии.- Челябинск: Изд-во ЧГМА,  2009.- С. 70-72. (авторских-0,01 п.л.)

14. Медведева, Н. Б. Активность НАДФ-зависимых дегидрогеназ в печени крыс с экспериментальным сахарным диабетом при инсулиновой гипогликемии / Н. Б.  Медведева // Актуальные вопросы медицинской науки: Сборник научных работ студентов и молодых ученых Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 65-летию Студенческого научного общества Ярославской государственной медицинской академии. - Ярославль: Изд-во  ООО ФЯрМедиаГрупФ, 2011. - С.17. (авторских-0,06 п.л.)

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ААТ - аланинаминотрансфераза

АМФ - аденозинмонофосфат

АМФ-Д - аденозинмонофосфатдезаминаза

АсАТ - аспартатаминотрансфераза

ГДГ - глутаматдегидрогеназа

ГЛТ - глутаминаза

ГР - глутатионредуктаза

Г6Ф - глюкозо-6-фосфат

Г6Ф-ДГ - глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназа

ДГ - лактатдегидрогеназа

НАД - никотинамидадениндинуклеотид

НАДН2 - никотинамидадениндинуклеотид восстановленный

НАД-ИЦДГ - НАД-зависимая изоцитратдегидрогеназа

НАДФ - никотинамидадениндинуклеотид фосфат

НАДФН2 - никотинамидадениндинуклеотид фосфат восстановленный

СДГ- сукцинатдегидрогеназа

СЖК - свободные жирные кислоты

ТАТ - тирозинаминотрансфераза

  Авторефераты по всем темам  >>  Авторефераты по биологии