
Выделение и характеристика поверхностных белков галотолерантного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z
Автореферат кандидатской диссертации
На правах рукописи
ЩУКИН ВЛАДИМИР НИКОЛАЕВИЧ
ВЫДЕЛЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА ПОВЕРХНОСТНЫХ БЕЛКОВ ГАЛОТОЛЕРАИТИОГО МЕТАИОТРОФА
METHYLOMICROBIUM ALCALIPHILUM 20Z
03.01.04 Биохимия
Автореферат
диссертации на соискание ученой степени
кандидата биологических наук
Пущино -2012
Работа выполнена в лаборатории радиоактивных изотопов Федерального государственного бюджетного учреждения науки Института биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г.К. Скрябина РАН.
Научный руководитель:а доктор биологических наук, профессор
Троценко Юрий Александрович
Официальные оппоненты:а Дедыш Светлана Николаевна
доктор биологических наук ФГБУН Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН, зав. лабораторией
Соляникова Инна Петровна
доктор биологических наук
ФГБУН Институт биохимии и физиологии
микроорганизмов им. Г.К. Скрябина РАН,
старший научный сотрудник
Ведущая организация: ФГБУН Институт фундаментальных проблем биологии РАН, г. Пущино
Защита состоится л ____ 2012 г. в _j_ ч. на заседании Диссертационного совета
Д 002.121.01 при Институте биохимии и физиологии микроорганизмов
им. Г.К. Скрябина РАН по адресу: 142290, г. Пущино Московской области, проспект
Науки, д. 5.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института биохимии и физиологии
микроорганизмов им. Г.К. Скрябина РАН.
Автореферат размещен на сайтах Ученый секретарь Диссертационного совета
доктор биологических наук с~-% oLov^^_^_^_Н.В.Доронина
2
Актуальность проблемы. Клеточная оболочка бактерий является важным фактором их адаптации к изменяющимся условиям окружающей среды. У аэробных метанотрофов, использующих метан в качестве источника углерода и энергии, клеточная оболочка имеет типичное для грамотрицательных бактерий строение и включает цитоплазматическую мембрану, периплазму, слой пептидогликана и наружную мембрану (Гальченко, 2001; Троценко, Хмеленина, 2008). Вместе с тем наружная мембрана метанотрофов несколько отличается по химическому составу от таковой других грамотрицательных бактерий, поскольку существенной частью ее липидов являются редко встречающиеся у прокариот стеролы и гопаноиды, что может быть связано с использованием предельно восстановленного газообразного субстрата -метана. Так, в наружной мембране термотолерантного метанотрофа Methylococcus capsulatus Bath обнаружены специфические белки, в том числе мультигемовые цитохромы с типа, что указывает на окислительно-восстановительные процессы, происходящие на клеточной поверхности (Karlsen et al. 2008, 2011).
Интригующей особенностью ряда метанотрофов является наличие на внешней поверхности клеточной стенки упорядоченных гликопротеиновых S-слоев. У метанотрофов рода Methylomicrobium, включая галоалкалофилов Mm. alcaliphilum 20Z и Mm. buryatense (штаммы 5В, 5G, 6G и 7G), а также негалофильного нейтрофила Mm. album BG8, S-слои представлены монослоем чашевидных структур, уложенных в гексагональной (рв) симметрии (Jeffries et al., 1987; Khmelenina et al., 1999; Kalyuzhnaya et al., 2001). Напротив, у Mc. capsulatus (штаммы 874 и Texas) S-слои имеют тетрагональную (рА) симметрию расположения белковых субъединиц (Тюрин с соавт., 1985; Сузина, Фихте, 1986). Однако функции этих структур у метанотрофов остаются не понятными. Уровень понимания истинной роли S-слоев у различных микроорганизмов в значительной степени зависит от расшифровки соответствующих генетических детерминант белковых компонентов и выяснении связи S-слоев с другими поверхностными белками микроорганизма.
Цель и задачи исследования. Основная цель данной работы - идентификация и первичная характеристика доминирующих поверхностных белков у галотолерантного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z. Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:
- Выделить основные поверхностные белки у Mm. alcaliphilum 20Z и определить нуклеотидные последовательности кодирующих их генов.
- Изучить возможнуюа связьа основных поверхностных белкова са S-слоями или другими структурами клеточной оболочки.
- Выделить и охарактеризовать инсерционные мутанты Mm. alcaliphilum 20Z по поверхностным белкам, изучить основные свойства полученных мутантов.
3
Научная новизна. У Mm. alcaliphilum 20Z в составе ассоциированных с клеточной поверхностью белков найдены белки с м.м. 27 и 80 кДа, проявлявшие высокую гомологию (>50% идентичности) с поверхностными белками 'СогА' и 'СогВ' Methylomicrobium album BG8. Обнаружена локализация белка 'СогА' в основании чашевидных структур S-слоев и периплазматическая локализация 80-кДа белка, отнесенного к новому классу дигемовых цитохром с пероксидаз. Сконструированы инсерционные мутанты по генам 'согА' и 'согВ'. Постулирована роль 'СогА' в прикреплении S-слоев к клеточной поверхности метанотрофа. Мутант по гену 'согВ' рос на метане с высокой скоростью и имел более высокие активности ферментов окисления С-соединений по сравнению с родительским штаммом. Показана коэкспрессия белков 'СогА' и 'СогВ' при низком содержании меди в ростовой среде. Кроме 'СогА' и 'СогВ' при биотинилировании целых клеток метились а-субъединица метанолдегидрогеназы (МДГ) и 59-кДа белок, указывая на экспонирование на наружной поверхности клеточной стенки по крайней мере фрагментов этих белков. Полученные приоритетные данные по идентификации и характеристике поверхностных белков Mm. alcaliphilum 20Z создают предпосылки дальнейших исследований их роли у галоалкалофильных метанотрофов.
Научно-практическое значение. Результаты изучения поверхностных белков и кодирующих их генов у галоалкалофила 20Z представляют интерес для продукции целевых белков посредством гетерологичной экспрессии ввиду непатогенности метанотрофов, низкой протеазной активности и способности достигать высокой плотности клеток при культивировании на простых минеральных средах. Кроме того, определение поверхностных белков и их функций у метанотрофов с различными физиолого-биохимическими особенностями может привести к лучшему пониманию роли клеточной оболочки в адаптации этих бактерий к флуктуациям природных условий. Разработанный метод получения мутантов Mm. alcaliphilum 20Z перспективен в качестве эффективного инструмента при изучении функциональных генов/ферментов у метанотрофов.
Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на ежегодных отчетных конференциях ИБФМ РАН (2007-2011гг), на I школе-конференции Биология: традиции и инновации в 21 веке (Казань, 2008), на XIV международной школе-конференции молодых ученых Биология - наука XXI века (Пущино, 2010), на V и VII молодёжных школах-конференциях с международным участием Актуальные аспекты современной микробиологии (Москва, 2009, 2011).
Место проведения работы. Экспериментальная часть работы выполнена в лаборатории радиоактивных изотопов ГФУ ИБФМ им. Г.К. Скрябина РАН в рамках темыа Экстремофильныеа иа экстремотолерантныеаа аэробныеа метилотрофы
4
(№ Госрегистрации 01.20.0403398), поддержана грантами РФФИ (08-04-01732-а, 10-04-01224-а) и госконрактами № 4.749.11.0111, № 02.740.11.0296.
Публикации. По материалам диссертации опубликованы 2 статьи и 4 тезисов.
Благодарности. Автор искренне благодарен сотрудникам ИБФМ РАН, способствовавшим выполнению данной диссертационной работы: д.б.н., проф. Дуде В.И., к.б.н. Сузиной Н.Е., к.б.н. Серебряковой М.Е., к.б.н. Зиганшину Р.А., к.б.н. Решетникову А.С., к.б.н. Бесчастному А.П., к.б.н. Ешинимаеву Б.Ц. Особую признательность автор выражает своим научным руководителям Ч д.б.н., проф. Троценко Ю.А. и д.б.н. Хмелениной В.Н.
Структура и объем работы. Диссертация изложена на _ стр. и состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, заключения, выводов и списка литературы, включающего _ ссылки, из них _ на русском и _ на английском языках, содержит _ таблиц и _ рисунка.
ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Объектами исследований служили чистые культуры облигатных метанотрофов Mm. alcaliphilum 20Z иМс. capsulatus Bath из коллекции ВКМ (№ В-2133, № В-2116). Метанотрофные бактерии выращивали на минеральной среде П в атмосфере СН4 и воздуха (1:1) (Гальченко и др., 1986). Для выращивания Mm. alcaliphilum 20Z в среду дополнительно вносили Na-карбонатный буфер и 3% NaCl (Хмеленина с соавт., 1997). Escherichia coli S17-1, Top Stab 10, BL21(DE3) выращивали при 37C на жидкой или агаризованной средах "LB", добавляя при необходимости хлорамфеникол, канамицин, гентамицин и/или ампициллин.
Молекулярно-биологические методы. ДНК выделяли модифицированным методом (Marmur, 1961). Выделение плазмид, рестрикцию, лигирование, получение компетентных клеток и их трансформацию проводили согласно протоколам (Sambrook, Russell, 2001). Тотальную РНК выделяли модифицированным методом (Chomczynski, Sacchi, 1987). Последовательности ДНК и белков анализировали с помощью программы PSI-BLAST, доступной с сервера ( Идентификация и выделение основных поверхностных белков. Клетки штамма 20Z обрабатывали флуоресцентным реагентом дансилхлоридом, который реагирует со свободными аминогруппами аминокислот и не проникает через внешнюю мембрануаа (Walker,аа 1994).аа Поверхностныеаа белкиаа идентифицировалиа ваа УФаа после
5
разделения тотальных клеточных белков ДСН-ПААГ электрофорезом. Для дополнительной идентификации и препаративной наработки поверхностных белков клетки обрабатывали биотиновым зондом, биотинилированные полипептиды собирали на магнитные частицы, покрытые стрептавидином (Karlsen et al., 2005). Масс-спектрометрический анализ полипептидов выполнен к.б.н. Р.А. Зиганшиным (ФГУ Институт биоорганической химии РАН, г. Москва).
Получение инсерционных мутантов по генам 'согА' и 'согВ'. Процедура включала амплификацию нуклеотидных последовательностей двух плеч инактивируемого гена, клонирование полученных ПНР-продуктов в плазмиду pK18mob, содержащую ген устойчивости к канамицину (Schafer, 1994), и клонирование в эту плазмиду гена устойчивости к гентамицину aaCl между клонированными плечами. Для конъюгации со штаммом 20Z использовали штамм-донор Е. coli S17-l/pK18mob:L7-L2.aaC7. Конъюганты отбирали по устойчивости к гентамицину и чувствительности к канамицину.
Цитобиохимические исследования. Ультраструктуру клеток метанотрофов изучали с помощью электронного микроскопа JEOL JEM 100В (Япония). Приготовление ультратонких срезов и просмотр препаратов в электронном микроскопе проводили в лаборатории структурно-функциональной адаптации микроорганизмов ИБФМ РАН совместно с к.б.н. Сузиной Н.Е.
Клонирование и экспрессия генов. Ген 'согВ' амплифицировали из геномной ДНК Mm. alcaliphilum 20Z, клонировали в вектор рЕТ22Ь и экспрессировали в клетках Е. coli BL21(DE3). Рекомбинантный 'CorB'-His6-tag выделяли и очищали из клеток Е. coli с помощью металл-хелатной хроматографии на колонке с Ni -NTA-агарозой, согласно протоколу фирмы "Quiagen" (Германия). Чистоту белковых препаратов и молекулярную массу белка определяли электрофорезом в ДСН-ПААГ (Laemmli, 1970).
Включение СН4аа суспензиямиаа клетокаа измерялиаа н жидкостном
сцинтилляционном спектрометре LS-30 Beckman (США) в смеси, содержащей 2,5-дифенилоксазола и 1, 2-бис-(5-фенилоксазолил-2)бензола в 1 л толуола (Sokolov, Trotsenko, 1995).
Выделение и анализ осмопротекторов. Низкомолекулярные органические соединения - потенциальные осмопротекторы, экстрагировали из клеток метанолом. Количество сахарозы оценивали с антроновым реактивом в модификации (Hendel, 1968). Для количественного определения эктоина использовали модифицированный метод ВЭЖХ (лLKB, Швеция) (Ешинимаев с соавт., 2007).
6
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
1. Детекция и выделение основных поверхностных белков Mm. alcaliphilum 20Z
Для идентификации основных поверхностных белков Mm. alcaliphilum 20Z клетки обрабатывали флуоресцентным реагентом дансилхлоридом (Walker, 1994). После разрушения клеток нагреванием в денатурирующем буфере проводили ДСН-ПААГ электрофорез тотальных белков. В УФ были выявлены четыре белковые полосы м.м. 27, 59, 67 и 80 кДа (рис. 1а). Окрашивание гелей Кумасси G-250 подтвердило, что эти белки являются мажорными в спектре тотальных клеточных белков (рис. 16).
Дляа выделенияа и идентификации поверхностныха белкова использовалиа метод
биотинилирования.а Клетки обрабатывали биотиновым зондом,а затем белки
Для подтверждения поверхностной локализации 59-кДа белка суспензии клеток обрабатывали трипсином. В течение первых 30 мин после добавления трипсина относительное количество 59-кДа белка значительно снижалось, при этом количество остальных белков не изменялось. Через 2 ч содержание 59-кДа белка достигало исходного уровня (рис. 29). Следовательно 59-кДа белок доминирует в спектре тотальных клеточных белков штамма 20Z и локализован на поверхности клетки, что согласуется с возможным участием данного белка в формировании стенок чашевидных структур.
59кЛа
Рис. 29. Белковые профили клеток штамма 20Z до и после обработки трипсином клеток. Время обработки: 1-контроль, без обработки; 2-30 мин; 3 - 1 ч; 4 - 2 ч.
23
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Необходимой предпосылкой успешного выяснения функций S-слоев у микроорганизмов является идентификация основных поверхностных белков и кодирующих их генов. В данной работе идентификацию и выделение поверхностных белков у галотолерантного метанотрофа Mm. alcaliphilum 20Z проводили с использованием дансилирования и биотинилирования. Благодаря этим подходам нам удалось определить и наработать в препаративных количествах белки, экспонированные на наружной поверхности клеточной стенки, в числе которых доминируют белки S-слоев. В итоге были обнаружены четыре мажорных, ассоциированных с клеточной поверхностью белка: 27, 59, 67 и 80 кДа.
Нами установлено, что поверхностный 27-кДа белок полностью идентичный белку 'СогА', ранее обнаруженному у нейтрофильного негалофильного метанотрофа Mm. album BG8, кодируется у Mm. alcaliphilum 20Z геном MEALZv4_2831. Методами иммунно-цитобиохимии с использованием антител к очищенному белку впервые продемонстрировано, что 'СогА' локализован в основании чашевидных структур S-слоев и ответственен за связывание S-слоев с наружной мембраной метанотрофа. С помощью полученного инсерционного мутанта доказана необходимость белка 'СогА' для роста клеток на метане, но не на метаноле, что, наряду с экспрессией этого белка при понижении содержания меди в среде, указывает на его важную роль в процессе окисления СН4 с участием медь-зависимой ММО. Проведенный нами Blast анализ выявил уникальность белка 'СогА' для метанотрофов, образующих S-слои, что косвенно подтверждает гипотезу о возможной функции 'СогА' в качестве элемента специфической транспортной системы ионов меди, например, в случае экранирования S-слоями доставки и транспортировки этого катиона посредством других переносчиков (например, сидерофором - метанобактином).
80-кДа белок (ОРС MEALZv4_2832), обладающий перекись-разлагающей активностью, идентифицирован нами как дигемовая цитохром с пероксидаза нового класса. Наибольшую гомологию этот белок проявлял с поверхностным белком 'СогВ' Mm. album BG8(Karlsen et al., 2010). Нами доказана периплазматическая локализация дигемовой цитохром с пероксидазы у Mm. alcaliphilum 20Z. Пространственная близость 'СогА' и 'СогВ' на клеточной поверхности, наряду с коэкспрессией данного тандема белков, подразумевает их совместное участие в гомеостазе ионов меди у Mm. alcaliphilum 20Z. Не исключено, что цитохром с пероксидаза окисляет ключевую аминокислоту белка 'СогА' (триптофан), от модификации которой зависит связывание ионов меди, как в случае гомолога этого белка (МорЕ) из Мс. capsulatus Bath (Karlsen et al., 2011). Данное предположение основано на присутствии в 'СогА' Mm. alcaliphilum 20Z и Mm. album BG8 консервативных аминокислот - аналогов, формирующих сайты связывания меди (гистидин-132, гистидин-203 и триптофан-130) у Мс. capsulatus Bath.
24
Кроме того, постулировано, что в формировании S-слоев Mm. alcaliphilum 20Z участвует 59-кДа белок, доминирующий в спектре поверхностных белков. В геноме Mm. alcaliphilum 20Z идентифицирован ген данного белка, который предварительно аннотирован как секретируемый белок внешней мембраны (outer membrane protein, ОМР) I типа, гомологичный представителям семейства TolC. Белки этого семейства участвуют в адаптации бактерий к различным стрессам и неблагоприятным условиям. В частности, о возможном участии TolC в формировании S-слоев косвенно свидетельствует присутствие соответствующего гомолога у Mm. album BG8 (ZP08486741.1).
Таким образом, определение у метанотрофов первичной аминокислотной последовательности интегральных поверхностных белков, а также белковые компоненты S-слоев, идентификация соответствующих генов и выяснение условий их экспрессии позволит уточнить представление о белковом комплексе наружной клеточной мембраны - сурфацеоме (Karlsen et al., 2011). Дальнейшие исследования белков сурфацеома метанотрофов представляют несомненный интерес для конструирования новых систем гетерологичной экспрессии целевых пептидов, экспонируемых на поверхности рекомбинантных бактерий.
ВЫВОДЫ
- Из клеточных оболочек галотолерантного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z впервые выделены поверхностные белки с молекулярными массами 27, 59, 67 и 80 кДа, определены нуклеотидные последовательности кодирующих их генов. Установлено, что белок с м.м. 67 кДа является большой субъединицей метанолдегидрогеназы. Поверхностный белок с м.м. 59-кДа предварительно аннотирован как секретируемый белок внешней мембраны I типа.
- Иммуноцитохимическими и электронно-микроскопическими методами доказана локализация белка 'СогА' с м.м. 27 кДа в основании чашевидных структур S-слоёв. Показано, что 80-кДа белок локализован в периплазме и идентифицирован как дигемовая цитохром с пероксидаза нового семейства 'СогВ'.
- Впервые получен мутант с инактивированным геном 'согА', не способный расти на метане и лишенный S-слоёв при росте на метаноле. Мутация в гене 'согВ', кодирующем цитохром с пероксидазу, сопровождалась повышенной скоростью роста клеток на метане и высокими активностями ферментов С- окисления.
- Обнаружена котранскрипция генов, кодирующих 'СогА' и 'СогВ', в виде одной бицистронной мРНК в условиях низкого содержания меди в среде культивирования.
25
Список публикаций по теме диссертации Статьи:
- Хмеленина В.Н., Щукин В.Н., Решетников А.С., Мустахимов И.П., Сузина Н.Е., Ешинимаев Б.Ц., Троценко Ю.А. Структурно-функциональные особенности метанотрофов гиперсоленых и щелочных водоемов. Микробиология. 2010. Т. 79. № 4. С. 498-508.
- Щукин В.Н., Хмеленина В.Н., Ешинимаев Б.Ц., Сузина Н.Е., Троценко Ю.А. Первичная характеристика поверхностных белков галотолерантного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z. Микробиология. 2011. Т. 80. №5. С. 595-605.
Тезисы докладов:
1.а Щукин В.Н. Поверхностные белки гало(алкало)фильного метанотрофа
Methylomicrobium alcaliphilum20Z: выделение и характеристика. I
Всероссийский, с международным участием, конгресс студентов и аспирантов-
биологов "Симбиоз Россия 2008". 6-10 июля 2008 г., Казань.
- Щукин В.Н., Ешинимаев Б.Ц. Мутант гало(алкало)фильного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z, дефектный по синтезу поверхностного перекись-разлагающего белка. V Молодежная школа-конференция с международным участием Актуальные аспекты современной микробиологии. Москва, ИНМИ РАН, 26-27 октября 2009г.
- Щукин В.Н. Первичная характеристика мутанта по синтезу поверхностного перекись-разлагающего белка у гало(алкало)фильного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z. 14 международная Пущинская школа-конференция молодых ученых. Пущине 2010г.
- Щукин В.Н. Первичная характеристика поверхностных белков галотолерантного метанотрофа Methylomicrobium alcaliphilum 20Z. VII Молодежная школа-конференция с международным участием Актуальные аспекты современной микробиологии. Москва, ИНМИ РАН, 24-26 октября 2011г.
26
