Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации
Вид материала | Документы |
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 794.61kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 410.45kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 861.79kb.
- Проект Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 3649.85kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 1424.69kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации Государственные, 626.44kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 642.07kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 575.15kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование Российской Федерации, 348.1kb.
- Государственное санитарно-эпидемиологическое нормирование, 413.52kb.
6.5. Оценка безопасности наноматериалов по интегральным показателям системы детоксикации ксенобиотиков6.5.1. Метод гексеналовой пробы6.5.1.1. Принцип метода По продолжительности сна мышей и крыс после внутрибрюшинного введения гексеналового наркоза можно оценить скорость метаболизма гексенала, осуществляемого цитохромом P-450-зависимой монооксигеназной системой гепатоцитов, которая характеризует состояние антитоксической функции печени. 6.5.1.2. Животные, оборудование и материалы 6.5.1.2.1. Животные Мелкие лабораторные животные (крысы и мыши) линейные (крысы линий Wistar, Sprague-Dawley и др.; мыши линий СВА, С57В1/6 и др.), так и нелинейные. В случае использования линейных животных необходимо указать линию животных. Количество животных в группе зависит от целей исследования, но не должно быть менее 10 особей в группе. Разброс по исходной массе тела животных в группе не должен превышать ± 10 %. В течение всего эксперимента животные должны иметь свободный доступ к корму и питьевой воде (за исключением времени измерения физиологических параметров). Для унификации исследований животные на протяжении всего эксперимента получают полусинтетический рацион согласно МУ 1.2.2520-09 «Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов». 6.5.1.2.2. Оборудование Нагревательный столик ML-1.5-4 (OOO. Мила-Форм, Россия, ссылка скрыта аналогичный). Компьютер IBM PC-совместимый по ГОСТ 27201-87 с установленным программным обеспечением SPSS 12 (SPSS Inc., США). 6.5.1.2.3. Материалы и реактивы Одноразовые пластиковые шприцы по ГОСТ 24861-91. Гексенал (кат. № W256102, Sigma-Aldrich) 6.5.1.3. Метод введения наноматериалов животным Наноматериалы можно вводить: парентерально (внутривенно, внутримышечно, внутрибрюшинно), ингаляционно и перорально (в составе корма, питьевой воды или через зонд). Рекомендуется проводить подострое (ежедневное введение в течение 3 месяцев) и хроническое введение (ежедневное введение в течение 6 месяцев и более) наноматериала. Ведение наноматериала проводят за 1 час до проведения наркоза. При подостром и хроническом введении наноматериала гексеналовую пробу осуществляют на 10, 30, 60 и 90 сут. и на 30 и 180 сут. и более, соответственно. Дозы введения наноматериала при подостром воздействии - от минимальной токсической дозы до 1/5 LD50, при хроническом воздействии - от 1/3 до 1/10 части минимальной токсической дозы. 6.5.1.4. Проведение измерений Осуществляют наркотизирование лабораторных животных с помощью гексеналового наркоза. Гексенал вводят мышам - в дозе 80 мг/кг, крысам - в дозе 60 мг/кг внутрибрюшинно. Животных помещают на столик, нагретый до 37°С и измеряют продолжительность состояния наркоза. 6.5.1.5. Анализ и интерпретация полученных данных Статистический анализ данных проводят, как указано в п. 6.2.1.5. Расчёт LD50, минимальной токсической дозы производят при предварительной оценке острой токсичности наноматериала согласно МУ 1.2.2520-09 «Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов». Наноматериал признаётся безопасным по результатам тестирования, если продолжительность наркоза в опытных группах животных, подвергшихся воздействию наноматериала, не отличаются достоверно от контроля. 6.5.2. Метод пробы с бромсульфалеином6.5.2.1. Принцип метода Бромсульфалеиновая проба относится к числу наиболее информативных и чувствительных методов исследования поглотительно-выделительной функции печени. Скорость элиминации бромсульфалеина (БСФ) (в виде конъюгатов с цистеином и глутатионом) является показателем состояния экскреторной и антитоксической функции печени. БСФ-проба становится положительной при любых поражениях паренхимы органа (острые и хронические гепатиты, жировой гепатоз, цирроз печени, доброкачественная гипербилирубинемия и др.) даже на самых ранних стадиях развития заболевания и хорошо коррелирует с тяжестью патологического процесса. 6.5.2.2. Животные, оборудование и материалы 6.5.2.2.1. Животные Мелкие лабораторные животные (крысы и мыши) линейные (крысы линий Wistar, Sprague-Dawley и др.; мыши линий СВА, С57В1/6 и др.), так и нелинейные. В случае использования линейных животных необходимо указать линию животных. Количество животных в группе зависит от целей исследования, но не должно быть менее 10 особей в группе. Разброс по исходной массе тела животных в группе не должен превышать ± 10 %. В течение всего эксперимента животные должны иметь свободный доступ к корму и питьевой воде (за исключением времени измерения физиологических параметров). Для унификации исследований животные на протяжении всего эксперимента получают полусинтетический рацион согласно МУ 1.2.2520-09 «Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов». 6.5.2.2.2. Оборудование Нагревательный столик ML-1.5-4 (OOO. Мила-Форм, Россия, ссылка скрыта аналогичный). Лабораторная центрифуга с охлаждением, рассчитанная на ускорение до 10000g. СМ 6.03 ELMI (Латвия) или аналогичная; Клетки для содержания животных «плексигласовый домик» (ООО "СПИ", Россия, или аналогичный). Палочка (лопаточка) глазная (Апекслаб, Россия, или аналогичная). Компьютер IBM PC-совместимый по ГОСТ 27201-87 с установленным программным обеспечением SPSS 12 (SPSS Inc., США) или с аналогичными параметрами. 6.5.1.2.3. Материалы и реактивы Одноразовые пластиковые пробирки по ТУ 64-2-30-80. Дозаторы пипеточные по ТУ 64-16-55-90 с диапазоном объема доз 20-200 мм3 и 200-1000 мм3 и дискретностью установки доз 1 и 5 мм3, соответственно, с наконечниками. Одноразовые пластиковые шприцы по ГОСТ 24861-91. Бромсульфалеин фирмы «Sigma», США или аналогичный. 6.5.1.3. Метод введения наноматериалов животным Наноматериалы можно вводить: парентерально (внутривенно, внутримышечно, внутрибрюшинно), ингаляционно и перорально (в составе корма, питьевой воды или через зонд). Рекомендуется проводить подострое (ежедневное введение в течение 3 месяцев) и хроническое введение (ежедневное введение в течение 6 месяцев) наноматериала. Ведение наноматериала проводят за 1 час до проведения анализа. При подостром и хроническом введении наноматериала анализ проводят на 10, 30, 60 и 90 сут. и на 30 и 180 сут., соответственно. Дозы введения наноматериала при подостром воздействии - от минимальной токсической дозы до 1/5 LD50, при хроническом воздействии - от 1/3 до 1/10 части минимальной токсической дозы. 6.5.1.4. Проведение измерений БСФ вводят в хвостовую вену животного в дозе 1-5 мг/кг. Через 1, 5, 15 и 45 минут после введения красителя спектрофотометрическим методом определяют содержание БСФ в крови животного. Вычисляют коэффициент ретенции БСФ, элиминируемого в виде конъюгатов с цистеином и глутатионом. Кровь у мелких лабораторных животных (мыши, крысы) можно отбирать из хвоста или из сердца (в случае вскрытия животных). Оптимальный объём сыворотки крови - не менее 30 мм3. Забор крови производят в одноразовые пластиковые пробирки. После забора крови пластиковые пробирки закрывают крышками и центрифугируют от 10 сек до 1 мин при скорости до 2000 g чтобы сбросить капельки крови, осевшие на стенки пробирок не дав им высохнуть. Для получения плазмы кровь отбирают в пробирки, куда предварительно внесен раствор гепарина (10 ед/см3). Пробирки центрифугируют в течение 10 мин на скорости 2000 g. Отбирают плазму, не задевая клеток, в отдельную пробирку, которую маркируют (например, П – плазма). 6.5.1.5. Анализ и интерпретация полученных данных Статистический анализ данных проводят, как указано в п. 6.2.1.5. Расчёт LD50, минимальной токсической дозы производят при предварительной оценке острой токсичности наноматериала согласно МУ 1.2.2520-09 «Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов». Наноматериал признаётся безопасным по результатам тестирования, если через 45 мин содержание БСФ не превышает 5% от первоначального уровня в крови, взятой через 3 минуты после введения красителя. |